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魷魚眼中透明質(zhì)酸的提取工藝

2021-09-10 01:45:25沈蘭王婷婷
科學與生活 2021年10期
關(guān)鍵詞:透明質(zhì)酸提取工藝鑒定

沈蘭 王婷婷

摘要:透明質(zhì)酸是一種存在于生物體內(nèi)的大分子聚合物,化學成分為粘多糖,廣泛存在于動物和人體結(jié)締組織及細胞外基質(zhì)中,具有特殊的生理作用和極強的保濕能力。可廣泛應用于醫(yī)藥、臨床醫(yī)學等領(lǐng)域。本文對魷魚眼透明質(zhì)酸的提取方法進行了研究,實驗采用水提醇沉、等電點法脫蛋白質(zhì)與超濾相結(jié)合的加工工藝,運用正交試驗法對提取工藝參數(shù)進行了優(yōu)化,并對產(chǎn)品的質(zhì)量指標進行了檢驗。

關(guān)鍵詞:透明質(zhì)酸;魷魚眼;提取工藝;鑒定

1 前言

透明質(zhì)酸(Hyaluranic acid,簡稱HA),廣泛存在于動物結(jié)締組織,是一種由β-D-N-乙酰基葡萄糖和β-D-葡萄糖醛酸為結(jié)構(gòu)單元以β-1,4-糖苷鍵縮合而成的一種酸性粘多糖,屬于糖胺聚糖。1934年,Meyer 和Palmer [1]從牛眼中最先分離出此種物質(zhì),發(fā)現(xiàn)透明質(zhì)酸是由相同的二糖單體重復排列而形成的無支鏈的直鏈多聚物,無定型固體,無臭、無味,溶于水而不溶于有機溶劑,水溶液比旋度為-70°~80°[2]。

透明質(zhì)酸兼具有高分子和大分子體積的特性,由葡萄糖醛酸-乙酞氨基葡萄糖為雙糖單位組成的直鏈高分子多糖,除了親水性外,透明質(zhì)酸較強的保濕性和粘彈性,在眼科、外科手術(shù)中有特殊的功效和較高的醫(yī)學臨床價值,。經(jīng)過半個多世紀的研究,人們對透明質(zhì)酸的結(jié)構(gòu)、理化性質(zhì)和生理功能已有了明確的認識,其研究領(lǐng)域不斷擴展,透明質(zhì)酸已成為細胞生物、病理、免疫學等領(lǐng)域的研究熱點[3]。

本研究以魷魚(illex argentinus)加工下腳料--魚眼為原料,研究了魷魚眼透明質(zhì)酸的提取工藝,并對產(chǎn)品的理化性質(zhì)進行了初步分析鑒定,使魷魚資源得以合理開發(fā)利用,利于提高其加工的綜合效益及經(jīng)濟附加值,變廢為寶。

2 實驗方法

2.1 工藝流程

魷魚眼→預處理→浸提→鹽析→脫蛋白質(zhì)→離心→濃縮→乙醇沉淀→超濾→干燥→成品

2.2 操作要點

魷魚眼預處理

將冷凍著的魷魚眼睛放置在實驗容器中溶解。

浸提

準確稱取50 g魷魚眼置于DS-1型高速組織搗碎機中進行組織搗碎,用去離子水浸提1-3次,將浸提液合并貯存于容器內(nèi)待用。

鹽析

向浸提液中加入去離子水配制成500 mL溶液,再加入5.85 g氯化鈉攪拌至溶解,使其溶液最終NaCl濃度為0.2 mol/L,靜置半小時。

脫蛋白質(zhì)

根據(jù)等電點法除蛋白質(zhì)法,用1:10的稀鹽酸加入溶液中,并輕微攪拌,使溶液pH調(diào)節(jié)至4.0左右,達到沉淀量最大。

脫蛋白工藝確定:等電點法、三氯乙酸法[4]、Sevage法[4]

離心

脫蛋白的溶液通過DL-5低速大容量離心機離心,轉(zhuǎn)速5000 r/min,離心時間為45 min,去沉淀取上清液。

濃縮

上清液通過A-1000S水循環(huán)真空泵進行真空濃縮,溫度控制在40~50℃最后使溶液濃縮到適宜濃度即可。

乙醇沉淀

在濃縮后的溶液中加入其3倍體積的無水乙醇進行醇沉,然后離心取沉淀,復溶置于容器中。

超濾

用截留分子量為10000 Da的millipore labscale TFF system 超濾膜裝置超濾。

干燥

將超濾后的溶液進行冷凍后,通過LGJ-10冷凍干燥機進行真空冷凍干燥得到的白色粉末即為透明質(zhì)酸粉末。

3 透明質(zhì)酸的分析

3.1 理化分析

3.1.1葡萄糖醛酸含量的測定[5]

實驗步驟:

標準曲線繪制:精確吸取0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、0.9、1 mL葡萄糖醛酸標準溶液于帶塞試管中,各管加水至1 mL,在冰水浴中各管加入3 mL試劑A,搖勻后,于沸水浴中保持10 min,取出后冷至室溫,各管加0.2 mL試劑B,于沸水浴中保持15 min,取出冰水浴中冷卻。在室溫下,測定光吸收值(530 nm),以濃度對光吸收作標準曲線。

樣品測定:準確稱取15.0mg的樣品,定量于50 mL的容量瓶中,取1 mL樣品溶液于帶塞試管中,在冰水浴中各管加入3 mL試劑A,其余步驟同標準曲線制備操作。由所測得的光吸收值通過標準曲線求出相應葡萄糖醛酸量。

3.1.2 氨基葡萄糖含量的測定[6,7,8]

實驗步驟:

氨基葡萄糖的鑒定

精取樣品加適量4 moL/L鹽酸使成為8 mg/mL封安瓶中于100℃烘箱中水解14 h。取0.75 mL稀釋至10 mL。

低溫乙酰丙酮反應:測光吸收(530 nm)為AL。

高溫乙酰丙酮反應:測吸光度(530 nm)為AH。

AH/AL≈1,為半乳糖胺 AH/AL﹥1,為葡糖糖胺

標準曲線繪制:分取鹽酸葡萄糖胺0、0.5、1.0、1.5、2.0 mL于帶塞試管中,各加水至5mL,加1 mL乙酰丙酮試液(B),置沸水中25 min,用迅速冷卻后,各管加無水乙醇3 mL及對二氨基苯甲醛試液1 mL,強力振搖,20~25 ℃下放置1 h,以0 mL為空白,測吸光度(530 nm)。

樣品測定:取樣品2 mg左右,置50 mL容量瓶中,加6 moL/L鹽酸1.5 mL,沸水浴中水解1 h,冷卻后用NaOH中和至中性,用水稀釋至刻度,取2 mL樣液,加水至5 mL其他操作同上。

3.2 光譜分析

3.2.1紫外光譜分析[9]

樣品配成1 mg/mL透明質(zhì)酸溶液,UV-240紫外可見分光光度計掃描,掃描范圍為190~300 nm。

3.2.2紅外光譜分析[10]

透明質(zhì)酸微量樣品KBr壓片后,用Nicolet Nexus 5DXC FT-IR紅外光譜儀在4000-500 cm-1區(qū)域內(nèi)進行紅外掃描。

3.3 透明質(zhì)酸提取率和得率的計算

透明質(zhì)酸提取率=透明質(zhì)酸含量(g)/魷魚眼睛質(zhì)量(g)×100%,以干基(扣除魷魚眼睛原料水含量)計。葡萄糖醛酸測量值除以46.32%[13],即可得到HA的含量。

透明質(zhì)酸得率=提取的透明質(zhì)酸質(zhì)量(g)/魷魚眼睛質(zhì)量(g)×100%,以干基計。

4 結(jié)果與分析

4.1透明質(zhì)酸提取的正交實驗及結(jié)果

根據(jù)上述單因素實驗結(jié)果,選擇浸提次數(shù)、浸提時間、料液比三因素,采用L9(33)正交表進行正交實驗,結(jié)果見表1。

在實驗設定的范圍內(nèi),最佳方案為A2B3C2,即提取3次,浸提時間3 h,料水比1:6。

在以上得到的優(yōu)化工藝參數(shù)條件下,重復多次,透明質(zhì)酸的平均提取率為3.58%,。

4.2脫蛋白工藝的確定

實驗中發(fā)現(xiàn),從魷魚眼睛中提取的透明質(zhì)酸溶液含有較多的蛋白質(zhì)雜質(zhì),因此,脫蛋白成為整個提取工藝的關(guān)鍵之處。當pH值為4時脫蛋白效果最好,同時,在實驗過程中,也發(fā)現(xiàn)pH值=4時上清液澄清。所以,用等電點法除蛋白質(zhì),適宜pH值應取4。

4.3透明質(zhì)酸的質(zhì)量指標

根據(jù)上述工藝,所制備的產(chǎn)品主要為透明質(zhì)酸,每千克魷魚眼睛干原料可獲29.6g產(chǎn)品,產(chǎn)品的總得率達2.96%,產(chǎn)品純度為72.21%。

4.4紫外光譜分析

從紫外吸收光譜(見圖1)分析得,樣品在201~207 nm有很強的多糖吸收峰,而在280、260 nm處無強烈的吸收峰,說明制品透明質(zhì)酸中蛋白質(zhì)和核酸含量極少。

4.5紅外光譜分析

如圖2的紅外光譜圖譜所示,3407.95 cm-1出現(xiàn)強烈的O-H伸縮振動,表明存在多羥基結(jié)構(gòu);在2922.72 cm-1處出現(xiàn)的-CH伸縮振動,1613.19 cm-1和1409.33 cm-1強銳峰為羧基的反對稱及對稱伸縮振動峰;1409.33 cm-1和1322.42 cm-1有-C-O-的伸縮振動和-OH的彎曲振動偶合產(chǎn)生的兩個吸收峰,表明存在著糖醛酸上解離羧基和多羥基結(jié)構(gòu);1148.79 cm-1、1043.86 cm-1、945.52 cm-1左右的吸收峰為糖的特征吸收峰。以上情況與文獻[11]報道的標準品譜圖相吻合,表明產(chǎn)品樣呈較典型的透明質(zhì)酸紅外光吸收。

5 結(jié)論

魷魚眼睛中透明質(zhì)酸的最佳提取工藝參數(shù):浸提次數(shù)為3次,浸提時間為3 h,料液比為1:6;等電點除蛋白質(zhì)的最佳pH值為4。在此提取條件下,產(chǎn)品的總得率為2.96%,純度為72.21%。

本實驗采用等電點法脫雜蛋白,操作簡單,污染較少,成本較低,效果較佳。

參考文獻:

[1] Meyer K, Palmer J W. The polysaccharide of the vitreous houmor[J].J Biol Chem,1934,107: 629~633.

[2] 潘紅梅.透明質(zhì)酸的研究現(xiàn)狀綜述[J].四川食品與發(fā)酵,2003,2(1):5~9.

[3] 閻家麒,賈定武,趙敏.透明質(zhì)酸生產(chǎn)菌菌種誘變選育及發(fā)酵工藝研究[J].中國醫(yī)藥工業(yè)志,1994,25(4):145~147.

[4] 虞菊萍,高向東.透明質(zhì)酸精制方法的比較[J].藥學與臨床研究,2007,15(4):300~302.

[5] 李薇,佟愛東,鄧兆勇.透明質(zhì)酸化學定量分析方法的研究[J].中國生化藥物雜志,1994,15(2):96~99.

[6] 張惟杰.復合多糖生化研究技術(shù)[M].上海:上海科學技術(shù)出版社,1987:283~290.

[7] 肖凱軍,李琳.鯊魚軟骨粘多糖及其分離純化和應用[J].上海水產(chǎn)大學學報, 1999,11(2):163~169.

[8] 李建武.生物化學實驗原理和方法[M].第二版.北京:北京大學出版社,1994:125~165.

[9] 羅曼,蔣立科,奚俊.牛眼透明質(zhì)酸的分離及性質(zhì)測定[J].生物化學與生物物理進展,1999,26(6):596~600.

[10] 樊東輝,吳蓓蓓,徐政,等.透明質(zhì)酸鈉的光譜學分析[J].中國生化藥物雜志,2006,27(01):22~25.

[11] 史鵬. 發(fā)酵法生產(chǎn)透明質(zhì)酸下游提取工藝方法的研究[D].西北大學,2005.

杭州市余杭區(qū)食品藥品監(jiān)測中心 浙江杭州 311199

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