盧昌華 鄧文靜 曾建榮 劉鍵鍾 張宏意 何夢玲 嚴寒靜

摘 要： 法尼基焦磷酸合酶（farnesyl diphosphate synthase， FPPS）是廣藿香甲羥戊酸途徑中萜類物質生物合成的關鍵酶，其催化異戊二烯焦磷酸（IPP） 和二甲基烯丙基焦磷酸（DMAPP）合成萜類物質前體法尼基焦磷酸。為了進一步研究廣藿香萜類合成途徑的分子機制，該文通過逆轉錄聚合酶鏈式反應獲得FPPS基因的cDNA序列，利用生物信息學軟件預測FPPS編碼蛋白的理化性質、結構和功能。結果表明：（1）該序列的開放閱讀框全長1 050 bp，編碼349個氨基酸，預測分子量為40 KD，等電點為5.43，存在一個結構域，參與異戊二烯化合物的合成，不存在信號肽，亞細胞定位于細胞質;系統(tǒng)發(fā)育分析結果顯示，廣藿香FPPS氨基酸序列和丹參（Salvia miltiorrhiza）、撒爾維亞（S. officinalis）的氨基酸序列親緣關系最近。（2）使用無縫克隆技術構建pET-32b-FPPS原核表達載體，并導入菌株BL21（DE3）中，考察不同濃度異丙基-β-D-硫代半乳糖苷（IPTG）對誘導融合蛋白的表達量的影響。結果發(fā)現融合表達蛋白以包涵體形式存在沉淀中，4個濃度的IPTG誘導蛋白表達效果差異不明顯。（3）采用熒光定量技術分析0.10、0.25 mmol·L-1 MeJA對FPPS基因表達水平的影響，發(fā)現0.10 mmol·L-1MeJA誘導后FPPS基因的表達量趨勢是先升高后降低再升高再降低;0.25 mmol·L-1 MeJA誘導后FPPS基因的表達量趨勢是先降低后升高再降低。因此，推測植物體內MeJA濃度的變化能影響FPPS基因的表達，高濃度具抑制作用，低濃度具促進作用。本研究為廣藿香萜類合成途徑的研究奠定基礎，以及為后續(xù)基因功能驗證提供理論參考。

關鍵詞： 廣藿香， 法尼基二磷酸， 無縫克隆， 茉莉酸甲酯， 熒光定量PCR

中圖分類號： Q943 ?文獻標識碼： A ?文章編號： 1000-3142（2021）07-1155-10

Abstract： Farnesyl diphosphate synthase （FPPS）， a key enzyme for terpene biosynthesis in patchouli mevalonate pathway， catalyzes isoprene pyrophosphate （IPP） and dimethylallyl diphosphate pyrophosphate （DMAPP） into farnesyl pyrophosphate. In order to study the molecular mechanism of terpenoid synthesis pathway in patchouli， this study obtained the cDNA sequence of the FPPS gene by reverse transcription， and used bioinformatics softwares to predict the physicochemical properties， structure and function of the protein encoded by FPPS. The results were as follows： （1） The open reading frame of the sequence is 1 050 bp in length and encodes 349 amino acids. The predicted molecular weight of the expressed protein is 40 KD. The isoelectric point of the protein is 5.43. And there is a domain involved in the synthesis of isoprene compounds. There is no signal peptide in the protein， and its subcellular localization is in the cytoplasm. Phylogenetic analysis showed that the amino acid sequence of patchouli FPPS is closest to the amino acid sequence of Salvia miltiorrhiza and S. japonica. （2） In order to study the expression of FPPS protein， the effects of different concentrations of isopropyl-β-D-thiogalactoside on the expression of the fusion protein were examined. The results indicated that fusion-expressed protein was present in the form of inclusion bodies. And there was no significant differences in the expression of protein induced by four concentrations of IPTG. （3） In order to study the effects of methyl jasmonate （MeJA） on the expression of FPPS， this experiment used fluorescence quantitative technology to analyze the effects of 0.10 and 0.25 mmol·L-1 MeJA on the expression level of FPPS gene. The results found that the expression of FPPS gene after 0.10 mmol·L-1 MeJA induction was first increased， then decreased， then increased and then decreased. However， after 0.25 mmol·L-1 MeJA induction， the expression of FPPS gene tended to decrease first， then increase and then decrease. It is speculated that high concentrations of MeJA have an inhibitory effect， and low concentrations of MeJA have a promoting effect. This study lays the foundation for the research on terpenoid synthesis pathways of patchouli and provides a theoretical reference for subsequent gene function verification.

Key words： Pogostemon cablin， farnesyl pyrophosphate， seamless cloning， methyl jasmonate， qPCR

廣藿香來源于唇形科（Lamiaceae）刺蕊草屬（Pogostemon Desf.）植物廣藿香（Pogostemon cablin）的干燥地上部分，在我國海南地區(qū)和嶺南地區(qū)均有栽培，常用于治療暑濕導致的各種表證，也用于濕濁導致的胃脘不適。目前，廣藿香不僅作為一種藥用植物，同時也作為一種香料植物。廣藿香油含有140多種生物活性物質，其中包括萜類化合物和類黃酮（Mallappa & Uma，2015），常用于緩解抑郁和壓力，鎮(zhèn)靜神經，控制食欲，改善性欲;同時還具有殺蟲，抗菌和抗真菌的特性（Albuquerque et al.， 2013;Rocha et al.， 2018）。廣藿香醇作為廣藿香油的主要成分之一，是一種廣泛用于香水和化妝品的三環(huán)倍半萜化合物（Paul et al.， 2010），可作為紫杉醇的化學合成起始化合物（Blowman et al.， 2018）。近年來隨著廣藿香藥用價值不斷被挖掘，醫(yī)藥和香料行業(yè)對廣藿香的需求日益增加，因此，研究廣藿香中重要化合物合成的分子機制，提高廣藿香藥材中揮發(fā)油的含量，特別是廣藿香醇含量，具有重要意義。

異戊二烯基二磷酸合酶有兩種立體結構，分別屬于E家族和Z家族，在E家族中，異戊二烯鏈中的碳原子在雙鍵的相反側（反式），其家族主要合成短鏈類異戊二烯;而對于Z家族，異戊二烯鏈中的碳原子在雙鍵的同一側（順式），主要合成長鏈類異戊二烯。法尼基焦磷酸合酶是類異戊二烯途徑的主鏈延伸酶，屬于異戊二烯基二磷酸合酶的E家族。催化二甲基烯丙基（DMAPP）二磷酸（C5）的連續(xù)縮合和香葉基二磷酸（C10）的烴基加成到異戊烯基（IPP）二磷酸（C5）中，生成法尼基焦磷酸（FPP）的E-異構體（C15）（Kellogg & Poulter，1998;Thulasiram & Poulter，2006） 。FPPS是類異戊二烯途徑合成化合物的分支點，相當于化合物合成的發(fā)散點。因此，一旦FPPS活性或結構的改變會使下游類異戊二烯化合物產生較大差異，使流向各個化合物分支的碳通量產生變化，從而影響到下游萜類物質表達，所以FPPS在類異戊二烯代謝的調節(jié)中起著至關重要的作用。FPPS除了是合成類異戊二烯的關鍵酶外，還在成纖維細胞生長因子介導的信號轉導中起作用。FPPS在成纖維細胞中的過表達也增加了Ras信號蛋白的法尼基化作用，并激活細胞外Ras/ERK信號的級聯反應（John et al.， 2002）。在藥物研究方面， FPPS酶可充當藥物開發(fā)的分子靶標。Beek et al.（1999）通過在牛腦上使用C14標記甲羥戊酸，異戊烯基焦磷酸和二甲基烯丙基焦磷酸，證明了FPPS是含氮的雙膦酸酯NBps的細胞內靶標。隨著對FPPS酶功能的深入研究，越來越多功能被挖掘，將有望提高其在藥品研發(fā)和生產中的作用，為前沿醫(yī)學研究做貢獻。

茉莉酸甲酯的母體結構為環(huán)戊酮，是茉莉酸經過甲酯化產生的化合物，作為植物體內的內源信號分子，在植物的新陳代謝、次生產物合成、抗病蟲害和抗逆性方面發(fā)揮重要作用（Fung et al.， 2004）。一般情況下，茉莉酸甲酯因為其揮發(fā)性和分子特性，可以從植物的氣孔進入植物體內，從而實現長距離的信號傳導和植物間的信息交流（徐偉和嚴善春，2004）。茉莉酸甲酯進入植物體后進一步被水解成茉莉酸，茉莉酸的產生會刺激不同種類的次生代謝產物的生物合成，比如生物堿尼古丁、異喹啉、硫代葡萄糖苷、花青素、倍半萜化合物青蒿素和萜類吲哚生物堿等。當昆蟲啃食植物時，植物通過釋放特異性的應激子，從而產生揮發(fā)性物質參與到防御中，在這一系列的信號傳導中，茉莉酸被認為是這一過程的核心物質（Kessler et al.， 2004）。Thaler（1999）發(fā)現用茉莉酸處理過的煙草植株揮發(fā)性物質的量會增加，在一定程度上提高了煙草害蟲被寄生蜂寄生的概率。Ozawa et al.（2009）和Zhou et al.（2009）研究發(fā)現利馬豆植株在經過茉莉酸處理后能夠釋放萜類揮發(fā)物，從而引誘捕食性螨蟲來捕食葉螨、細須螨、跗線螨和癭螨等有害螨。

茉莉酸甲酯的信號傳導會使植物揮發(fā)性物質的增加，倍半萜類化合物是揮發(fā)性物質的重要組成成分，而法尼基焦磷酸又是合成倍半萜化合物的重要前體物質，因此，研究茉莉酸甲酯對法尼基焦磷酸基因的表達調控，對于揭示茉莉酸甲酯在植物之間的信號傳導及植物發(fā)揮抗病蟲害的機制具有重要作用。

本研究對廣藿香的FPPS基因進行克隆，采用無縫克隆構建pET-32b-FPPS原核表達載體，進行原核蛋白小量表達，并對FPPS進行生物信息學分析;與此同時利用熒光定量PCR技術研究茉莉酸甲酯對FPPS基因表達量的影響，以期對進一步研究廣藿香的倍半萜生物合成途徑及茉莉酸甲酯對FPPS的調控表達機制奠定基礎。

1 材料、儀器與試劑

1.1 廣藿香葉片

廣藿香植株種源來自海南省儋州市，移栽至廣東藥科大學中藥學院種植，經劉基柱副教授鑒定為唇形科刺蕊草屬植物廣藿香（Pogostemon cablin）。

1.2 菌株

大腸桿菌感受態(tài)DH5α、蛋白表達菌株BL21（DE3）均購自北京莊盟國際生物基因科技有限公司。

1.3 儀器和試劑

儀器：電子天平CP214（奧豪斯儀器有限公司）;紫外微分光光度計（K5500Plus，北京凱奧科技發(fā)展有限公司）;PCR儀T100（Bio-Rad Laboratories， Inc）;電泳儀DYCP-31CN（北京六一生物科技有限公司）;凝膠成像儀Tocan320（上海領成生物科技有限公司）;藍光切膠儀BD-BGC1（無錫博弗瑞德生物科技有限公司）;冷凍離心機3K15（SIGMA）;恒溫搖床QYC-200（上海?，攲嶒炘O備有限公司）;熒光定量PCR儀（Biorad CFX96）;細胞破碎儀（SONICS VCX750）。

試劑：TRIpure Reagent（北京艾德萊生物科技有限公司）;FastKing一步法RT-PCR試劑盒;瓊脂糖（Biowest 公司）;DNA純化回收試劑盒、質粒小提試劑盒;pGM-T Fast ligation kit（天根生化科技有限公司）;SYBR Green Pro Taq HS預混型qPCR試劑盒、Evo M-ML V RT試劑盒（艾科瑞生物）;6×protein loading buffer、Blue Plus Protein Marker（北京全式金生物技術有限公司）;pET-32b質粒、SE無縫克隆和組裝試劑盒、DL2000 Marker、ExRed核酸電泳染料（北京莊盟國際生物基因科技有限公司）。

2 方法

2.1 廣藿香總RNA的提取

按照TRIpure Reagent試劑盒說明書提取RNA，根據FastKing一步法RT-PCR試劑盒得到cDNA，將產物進行1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定，切膠回收目的片段，并測定cDNA的濃度和純度，-20 ℃保存。

2.2 FPPS基因的T-A克隆

按pGM-T Fast ligation 試劑盒說明書進行T-A克隆。導入DH5α感受態(tài)細胞后，用引物FPPS-F：ATGGCGAATCCGAACGGAGC，FPPS-R：TTATTTCT

GTCTCTTGTAAATCTTGCC進行菌液PCR鑒定。取陽性克隆菌液過夜培養(yǎng)，使用質粒提取試劑盒提取質粒，檢測濃度及純度，取適量質粒送擎科生物科技有限公司測序，剩余質粒-20 ℃保存，測序結果使用contigeexpress軟件進行序列拼接，并用Blastn進行序列比對。

2.3 無縫克隆構建pET-32b-FPPS原核表達載體

2.3.1 FPPS基因和pET-32b載體同源臂的引入 FPPS基因PCR反應體系：pGM-T-FPPS重組質粒（100 ng·μL-1）1 μL，引物FPPS-pET-F（10 μmol·L-1）1.25 μL，引物FPPS-pET-R（10 μmol·L-1）1.25 μL，PrimeSTAR Max DNA Polymerase 25 μL，ddH2O補足至50 μL。（引物FPPS-pET-F： ACGACGACG

ACAAGGCGAATCCGAACGGAG，引物FPPS-pET-R：AGGGGTTATGCTAGTTATTTCTGTCTCTTG）

pET-32b載體PCR反應體系：pET-32b載體（60 ng·μL-1）1 μL，引物pET-F（10 μmol·L-1）1.25 μL，引物pET-R（10 μmol·L-1）1.25 μL，PrimeSTAR Max DNA Polymerase 25 μL，ddH2O補足至50 μL。（引物pET-F：GAGACAGAAATAACT

AGCATAACCCCTTGG，pET-R：CGTTCGGATTCGCC

TTGTCGTCGTCGTCGGTAC）

FPPS基因和pET-32b載體PCR反應條件：95 ℃預變性3 min，98 ℃變性10 s，55 ℃退火5 s，72 ℃延伸6 s，共35個循環(huán);72 ℃終延伸5 min。產物經1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定后切膠回收，并檢測濃度及純度，-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

2.3.2 FPPS基因與pET-32b線性化載體的環(huán)化 按照無縫克隆試劑盒說明書對FPPS基因和pET-32b線性化載體進行環(huán)化，環(huán)化后導入DH5α感受態(tài)細胞進行克隆，挑取單菌落小量培養(yǎng)后進行菌液PCR驗證，陽性克隆菌株培養(yǎng)后提取質粒后送測序。測序結果拼接后與T-A克隆測序結果比對，同時確認目的條帶插入位點是否準確。

2.4 廣藿香FPPS蛋白的小量表達

分別考察20 ℃不同濃度的IPTG（1.0、0.75、0.5、0.25 mmol·L-1）誘導下蛋白的表達情況。

分別取50 μL各濃度IPTG誘導得到的上清、沉淀和對照空白菌液，加入10 μL 6×蛋白上樣緩沖液，100 ℃加熱10 min，取10 μL樣品進行電泳。電泳條件為80 V， 20 min;120 V，80 min?？傠娪緯r長100 min。

電泳結束后使用考馬斯亮藍染色過夜，脫色后進行拍照。

2.5 廣藿香FPPS基因的生物信息學分析

采用Expasy在線分析平臺對FPPS編碼的蛋白進行一級結構和理化性質進行分析;采用TMHMM 2.0預測蛋白跨膜結構;使用SignalP 5.0在線預測蛋白是否含有信號肽;使用ProtComp 9預測蛋白的亞細胞定位;使用SOPMA預測蛋白結構域;使用SWISS-MODEL在線軟件，基于同源建模的方法，構建FPPS的三級結構模型。

利用MEGA 7.0軟件將本實驗獲得的FPPS基因編碼的氨基酸序列和GenBank上收錄的其他植物61種植物的FPPS基因編碼的氨基酸序列進行多序列比對，并構建系統(tǒng)發(fā)育樹。

2.6 MeJA對廣藿香FPPS表達量的影響

2.6.1 材料的選取及處理 取30株扦插半年、生長狀態(tài)良好的廣藿香，搬至恒溫室中培養(yǎng)數天以使植物適應實驗環(huán)境，配制好0.10、0.25 mmol·L-1茉莉酸甲酯溶液，均勻噴灑在植物葉片上，覆上保溫膜1 h，于2019年8月26號9點開始取樣，分別于0、2、6、12、24、48、72 h采摘成熟的葉片，迅速置于液氮中速凍后放于-80 ℃冰箱保存。

2.6.2 RNA的提取及cDNA第一鏈的合成 RNA提取和2.1方法一致，cDNA第一鏈合成根據Evo M-ML V RT試劑盒說明書進行。

2.6.3 引物設計及驗證 根據廣藿香FPPS基因和內參基因18S rRNA 的mRNA序列，采用CmSuite8軟件設計PCR引物，引物由擎科新業(yè)生物技術有限公司合成。QFPPS-F：AGGTCCCTAAGGTTGGTA

TG;QFPPS-R： GGAACTCCACCTCATTGAAC。內參基因18S引物18S-F： TCAACCATAAACGATGC

CGACC;18S-R：TTTCAGCCTTGCGACCATACTCC。驗證FPPS及內參基因使用10 μL體系，RT-PCR程序為預變性98 ℃，30 s;變性98 ℃，10 s;復性53 ℃，30 s;延伸72 ℃，1 min;終延伸72 ℃，7 min;中間3步進行40個循環(huán)。反應結束后使用1%瓊脂糖電泳進行檢測。

2.6.4 熒光定量PCR反應 熒光定量PCR反應按SYBR Green Pro Taq HS預混型qPCR試劑盒的說明書進行，樣本和內參都設置了3個平行，在96孔板中進行，以1 mL無水乙醇稀釋同樣倍數后噴灑于廣藿香作為對照組。

2.6.5 數據統(tǒng)計與分析 每個樣品設置3個重復，使用2-ΔΔCT法對熒光定量的數據進行處理，基因的表達量為2-ΔΔCT，處理組和對照組的ΔCT=目標基因的CT值-同一樣本內參基因的CT值，ΔΔCT=處理組的ΔCT-對照組的ΔCT，最后利用統(tǒng)計學軟件SPSS對數據進行顯著性分析。

3 結果與分析

3.1 廣藿香總RNA的提取與FPPS的cDNA的合成

提取到3個平行組的總RNA完整性都較好，OD260/280為1.8，1%瓊脂糖凝膠電泳顯示18 S、28 S條帶清晰，能滿足后續(xù)實驗需要，具體如圖1所示。使用一步法逆轉錄試劑盒得到的cDNA進行電泳顯示在1 000～1 500 bp之間有清晰明亮的條帶，如圖2所示。

3.2 廣藿香FPPS基因的T-A克隆

構建完T載體后，進行菌液PCR驗證陽性克隆，將陽性克隆菌株培養(yǎng)后提取質粒后送擎科生物有限公司測序，測序結果進行BLAST，結果顯示與NCBI上其他植物的FPPS基因有很高匹配度，上傳到GenBank，登錄號為MN326318。

3.3 無縫克隆構建原核表達載體

FPPS基因和pET-32b載體引入同源臂后，使用1%瓊脂糖電泳檢測，結果顯示FPPS基因在1 000～1 500 bp有明顯條帶，pET-32b載體片段在5 500處有一清晰明亮條帶，具體如圖3所示。無縫克隆后再轉入DH5α，挑取8個菌落進行菌液PCR驗證，8個菌落全部轉化成功，具體如圖4所示。

3.4 FPPS蛋白的表達

控制20 ℃、130 r·min-1，分別對含有0、0.25、0.5、0.75、1.0 mmol·L-1 IPTG的菌液誘導6 h進行考察，結果發(fā)現，pET-32b-FPPS菌株表達的蛋白為硫氧還蛋白-FPPS融合蛋白，分子量為50 KD左右，從圖5可明顯看出，融合蛋白沒有在上清表達，而是以包涵體形式存在于沉淀。在20 ℃不同濃度IPTG誘導下可看出，融合蛋白在的表達量沒有顯著差異。

3.5 生物信息學分析

FPPS基因的開放閱讀框全長為1 050 bp，編碼349個氨基酸。與其他61種植物的FPPS氨基酸序列的系統(tǒng)發(fā)育樹表明，廣藿香的FPPS氨基酸序列與同為唇形科的丹參和撒爾維亞氨基酸序列的親緣關系最近，聚為一支，可信度為84%，它們與杜仲科、毛茛科、龍膽科、蘭科植物聚為一大類;其他植物大都以同科屬聚為一類。具體如圖6所示。

FPPS基因編碼的蛋白質的分子量為40 KD，等電點為5.43。氨基酸組成中，酸性氨基酸（Asp，Glu）占14.1%，堿性氨基酸（Lys，Arg）占11.7%，極性氨基酸（Asn，Cys，Gln， Ser，Thr，Tyr）占26%，疏水氨基酸占35.2%，負電荷殘基占49%，正電荷殘基占41%。脂肪系數為91.89，不穩(wěn)定系數為34.47，在酵母體內半衰期大于20 h，在大腸桿菌體內大于10 h，推測其蛋白質比較穩(wěn)定。TMHMM 2.0預測蛋白全部位于膜外，無跨膜區(qū)域。使用PSORTⅡ在線軟件預測亞細胞定位于細胞質。

SOPMA預測FPPS氨基酸序列共有4種二級結構。其中：α螺旋氨基酸有214個，占氨基酸總數的61.32%;參與鏈延伸的氨基酸，有25個，占7.16%;β轉角氨基酸有9個，占氨基酸總數的2.58%;無規(guī)則卷曲有101個氨基酸參與，占氨基酸總數的28.94 %。具體如圖7所示。

使用SMART在線軟件預測FPPS基因編碼蛋白的結構域，結果發(fā)現FPPS有一個結構域，包含266個氨基酸殘基，從39至304（aa序列），可能參與異戊二烯化合物的合成。

使用SignalP 5.0預測FPPS蛋白不具有脂蛋白信號肽（Sec/SPⅡ）、Tat信號肽（Tat/SPI）或其他信號肽。

采用SWISS-MODEL軟件對FPPS蛋白進行同源建模，以單萜合酶FDS-5和葉綠體-法尼基焦磷酸合酶1的嵌合體（SMTL ID ： 4kk2.1，相識度：75.66%）為模板蛋白，構建FPPS蛋白三級結構模型。GMQE值（Global Model Quality Estimation）為0.86（GMQE評分區(qū)間為0～1，越靠近1表示模型越可靠）;QMEAN值（Qualitative Model Energy Analysis）為-0.35（QMEAN 值在0附近，表明模型結構與相似尺寸的實驗結構具有良好的一致性。-4.0或以下的分數表示模型質量較差），從兩個值可以看出構建的3D模型比較可靠，可以較好預測FPPS蛋白結構。具體如圖8所示。

3.6 茉莉酸甲酯對FPPS基因表達量的影響

以對照組的FPPS基因的表達量為1。0.10 mmol·L-1茉莉酸甲酯誘導下48、72 h FPPS的表達量與對照組有極顯著性差異;0.25 mmol·L-1茉莉酸甲酯誘導下48 h FPPS的表達量與對照組有極顯著性差異。兩個濃度的茉莉酸甲酯誘導下的FPPS基因的表達量均在48 h達到最高。0.10 mmol·L-1茉莉酸甲酯誘導下的FPPS基因表達量的趨勢隨著誘導時間先升高后降低再升高后降低;0.25 mmol·L-1茉莉酸甲酯誘導下的FPPS基因表達量的趨勢隨著誘導時間先降低后升高再降低。具體如圖9所示。

4 討論與結論

4.1 FPPS蛋白的結構和功能預測

FPPS基因預測編碼的蛋白質的等電點為5.43，本實驗做小量表達發(fā)現蛋白在沉淀中以包涵體存在，因此，如果后續(xù)做包涵體的復性和純化實驗，復性溶液配制時pH要盡量高于等電點，避免復性后出現沉淀;蛋白的亞細胞定位和跨膜預測結果表明FPPS基因只存在于細胞質中，這與馬轉轉等（2015）的報道結果相吻合，這有利于后續(xù)學者研究廣藿香相關萜類合成部位和進行定向轉基因，比如，使用葉綠體轉運肽將FPPS基因和下游基因導入葉綠體中，實現目標萜類化合物在葉綠體的大量表達。SMART預測結果表明FPPS有一個參與異戊二烯化合物合成的結構域，從結構上看，底物二甲丙稀基焦磷酸和異戊稀基焦磷酸均為C5結構，而法尼基焦磷酸為C15結構，并且為直鏈產物，所以該結構域可能參與碳鏈的連接，先催化底物生成10個C的牻牛兒基焦磷酸后再生成C15的法尼基焦磷酸。

4.2 茉莉酸甲酯對FPPS基因的調控效果

植物體內關鍵酶基因的表達量往往受到時間、空間和溫度的影響，并且同一植物的不同部位其表達量也有一定的差異性，劉璐等（2016）通過實時熒光定量分析1 d中8個不同時間段的廣藿香醇合酶基因的表達情況，發(fā)現不同時間段基因的表達量有很大差異，并且在3點時廣藿香醇合酶基因表達量最高。吳耀生等（2007）發(fā)現在一年生的三七中，鯊烯合酶基因的表達量是根>蘆頭>莖。本次實驗只針對茉莉酸甲酯對成熟葉片中FPPS基因表達量的影響，并在實驗過程中對同一時間同一樣品都提取多個RNA后進行混合，減少實驗過程中葉片個體差異。后續(xù)實驗將對不同成熟度的葉片（老葉、嫩葉、成熟葉）進行研究，以期進一步了解MeJA對植物萜類合成的作用機制。

外源施加的MeJA對FPPS基因的表達量密切相關。FPPS基因的表達量在施噴0.10 mmol·L-1 MeJA后先升高后降低再升高再降低，而在施噴0.25 mmol·L-1 MeJA后FPPS基因的表達量是先降低后升高再降低。

在0.25 mmol·L-1 MeJA誘導下，植物吸收大量MeJA后，在0、2、6 h階段FPPS基因表達量出現抑制情況，MeJA在植物體內降解后FPPS表達量在12、24、48 h階段是升高的，說明這一階段的茉莉酸甲酯濃度能促進FPPS基因的表達，進一步降解后FPPS表達量降低，植物慢慢恢復原有水平。

在0.10 mmol·L-1 MeJA誘導下，植物吸收MeJA的量比較少，在2 h時還未出現抑制狀態(tài)，因此，在2 h時FPPS基因表達量在是先升高的，植株逐漸吸收MeJA后濃度達到一定水平，出現了抑制，FPPS基因表達量在6、12、24 h階段是逐步降低的，植物對茉莉酸甲酯降解后達到適宜濃度，MeJA濃度對FPPS表達量又出現了促進作用，在48 h時FPPS基因表達量升高，進一步降解后，72 h時表達量降低。

茉莉酸甲酯濃度越高，植物富集的越快，更快出現抑制情況。綜合兩個濃度的MeJA對FPPS基因表達量的影響可以推測在植物體內高濃度的茉莉酸甲酯會抑制FPPS基因的表達，低濃度茉莉酸甲酯能促進FPPS基因的表達。

在萜類生物合成的途徑中，轉錄因子通過與相關的合成酶基因5′端上游的啟動子元件相互結合，從而抑制或增強相關萜類的合成。此外，轉錄因子還可以對代謝通路上多個其他靶點進行同時調控，使其他基因的表達也受到影響并使基因表達趨向于產生相類似的代謝產物，從而達到多個靶點調控的作用（Aharoni & Galili，2011）。雖然，隨著醫(yī)藥行業(yè)的高速發(fā)展，萜類物質在臨床上的作用不斷被挖掘，使萜類化合物的需求量逐漸增加，但是，由于萜類化合物結構的復雜性使化學合成遇到極大阻礙，目前大部分萜類化合物只能依靠從原植物中提取獲得。因此，從分子水平上來調控原植物中萜類的代謝從而提高萜類化合物產量成為科研工作者的研究熱點，而從關鍵酶基因的轉錄水平上進行調控更是研究的必然趨勢。

參考文獻：

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（責任編輯 周翠鳴）