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弱精子癥與健康可育男性精子miRNA 表達譜差異分析

2021-09-25 09:35梁高照張國暉通訊作者
醫(yī)藥前沿 2021年21期
關(guān)鍵詞:精液精子測序

梁高照,張國暉,李 春,汪 清(通訊作者)

(1 深圳市寶安人民醫(yī)院<集團>泌尿疾病中心 廣東 深圳 518000)

(2 廣東醫(yī)科大學 廣東 湛江 524000)

弱精子癥(asthenozoospermia, AZS)是指精子前向運動(a 級+b 級)小于32%的病理狀態(tài),是男性不育的主要原因之一[1]。健康可育男性精子microRNA,(miRNA)是一類小的、單鏈的非編碼RNA 分子,是基因表達中的一類調(diào)控因子。在精子發(fā)生過程中,miRNA 以細胞特異性方式表達,參與男性生殖細胞分化的每個步驟[2]。研究表明,miRNA 表達失調(diào)會導(dǎo)致AZS,是AZS形成的重要原因[3-5]。然而,由于實驗對象、年齡、實驗方法或miRNA 參考范圍存在差異,各個研究中心之間關(guān)于AZS 的miRNA 的研究數(shù)據(jù)及表達譜仍然存在很大差異。鑒于miRNA 調(diào)控在AZS 發(fā)生中的重要作用及各研究中心之間關(guān)于miRNA 表達譜的參差不齊,旨在鑒定和表征AZS 不育男性和健康可育男性精子中的miRNA 表達譜,并進一步探討miRNA 靶基因的功能聚類及控制通路,預(yù)測miRNA 在AZS 發(fā)生中的分子機制。

1.資料與方法

1.1 一般資料

于2018 年12 月—2019 年11 月,選取因不孕不育到深圳市寶安區(qū)人民醫(yī)院泌尿外科就診的年輕男性。(1)AZS 不育組納入標準:25 ~40 歲男性;精液實驗室檢查符合AZS 世界衛(wèi)生組織(World Health Organization WHO)診斷標準:活力PR 級(a+b 級)<32%、精子濃度≥15×106/mL、正常精子形態(tài)≥4%;未育;性激素水平正常;生殖系統(tǒng)體格檢查正常。(2)正常對照組納入標準:25 ~40 歲男性;精液實驗室檢查正常:PR 級(a+b 級)≥32%、精子濃度≥15×106/mL、正常精子形態(tài)≥4%;具有健康子代。(3)排除標準:精液異常(顏色、體積、液化異常)、精漿果糖異常、α-葡糖糖苷酶異常、泌尿生殖道感染。納入的所有男性均簽署知情同意書。

1.2 實驗方法

1.2.1 樣本收集 所有男性禁欲5 d 后收集精液,常溫下液化。采用SCA 全自動精液質(zhì)量分析儀對樣本進行常規(guī)分析。分析所有精液樣本的參數(shù),包括體積、液化時間、pH、精子數(shù)量、精子活力、精子密度和形態(tài)。液化后立即在-80℃冰箱下保存。

1.2.2 樣本總RNA 提取及質(zhì)量檢測 精液樣品解凍,分離精漿,純化精子??俁NA 提取方法參照RNA 提取試劑盒(invitrogen,美國)使用說明。采用Nanodrop 超微量核酸蛋白檢測儀測定所提取的總RNA 濃度。1%的瓊脂凝膠電泳檢測RNA 樣本質(zhì)量。篩選滿足條件的RNA 樣本保存于-80℃冰箱。

1.2.3 MiRNA 文庫構(gòu)建 按照QIAseqTM miRNA Library Kit 說明書進行文庫制備,文庫制備完成后,對文庫質(zhì)量進行檢測,確保文庫有效濃度>2 nmol/L。在HiSeq-2000 系統(tǒng)上進行測序。通過HiSeq 控制軟件進行實時分析和堿基識別。

1.2.4 小RNA 序列分析

測序下機后,分析原始數(shù)據(jù),并刪除低質(zhì)量的reads。修剪3'銜接子序列后,使用miRDeep2 以默認參數(shù)從所有文庫中提取長度大于17 nt 的小RNA 讀數(shù),以識別已知的和新穎的miRNA[6]。每個庫分別處理。

1.2.5 靶基因預(yù)測和信息深度分析 通過miRTarBase 數(shù)據(jù)庫預(yù)測差異表達miRNA 的靶基因。為了全面描述基因和基因產(chǎn)物的特性,我們采用topGO(version 2.18.0)從分子功能、生物過程和細胞組成三個方面進行了基因本體(gene ontology, GO)注釋和富集分析,采用KOBAS(kobas2.0-20150126)[7]對篩選到的差異基因進行KEGG PATHWAY 富集分析,挖掘差異表達miRNA 靶基因參與的主要功能及生化代謝途徑。

1.3 統(tǒng)計學方法

2.結(jié)果

2.1 一般資料

使用SCA 全自動精液質(zhì)量分析儀對不育組35 例AZS不育患者精液樣本和36 例健康對照組精液樣本進行精液常規(guī)分析。收集并分析組間樣本參數(shù),發(fā)現(xiàn)組間樣本在年齡、精液體積、pH、液化時間、精子密度、精子畸形率方面無統(tǒng)計學差異(P>0.05)。但弱精癥組精子前向運動率明顯低于正常對照組,具有統(tǒng)計學差異(P<0.05),見表1。

表1 兩組精液樣本參數(shù)比較( ± s)

表1 兩組精液樣本參數(shù)比較( ± s)

注:aP >0.05,bP <0.05。

項目 不育組(n=35) 對照組(n=36)年齡/歲 33.48±1.716a 30.33±1.871體積/mL 4.33±0.943a 4.33±0.471 pH 7.59±0.162a 7.49±0.067液化時間/min 25.00±2.454a 26.67±2.491密度/(106?mL-1) 87.82±4.451a 86.27±2.658活力/%(a+b) 24.05±1.232b 69.42±5.977畸形率/% 73.90±4.374a 75.63±3.027

2.2 RNA 純度和濃度

使用Nanodrop 超微量核酸蛋白檢測儀檢測RNA 純度和濃度,結(jié)果顯示大部分樣本所提取的RNA 濃度均處于較低水平;瓊脂凝膠電泳檢測RNA 質(zhì)量發(fā)現(xiàn)RNA條帶不清晰。RNA 樣本篩選閾值設(shè)定為:RNA 濃度大于80 ng/μL、1.8 <OD260/OD280 <2.0 且RNA 電泳圖條帶清晰。僅有7 個樣本(不育組4 例和對照組3 例)滿足上述篩選標準,納入測序?qū)嶒?,見?。

表2 兩組樣本RNA 濃度和純度比較

2.3 基因表達豐度統(tǒng)計

基因表達定量用TPM 作為單位,即每百萬reads 中來自某一基因的reads 數(shù)[10]。對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計后得到如下的TPM 分布箱式圖,見圖1。

圖1 TPM 分布箱式圖

2.4 miRNA 差異表達譜

采用二代測序平臺對樣本進行測序,然后采用edgeR分析miRNA 的表達水平。本次分析中差異基因的篩選主要從差異倍數(shù)和顯著水平兩方面進行評估,篩選閾值設(shè)定為:|log2(FoldChange)|>1 且FDR <0.01。結(jié)果表明,共有16 個miRNA 的表達改變具有統(tǒng)計學意義,其中10 個miRNA 表達下調(diào),6 個miRNA 表達上調(diào),見表3。MiR-34c 在弱精癥組中表達水平明顯下調(diào),具有最顯著的表達差異(FDR=9.15×10-5);miR-34b表達水平同樣下調(diào),且表現(xiàn)出了最大倍數(shù)變化(|log2(FoldChange)|>4)。我們對不育組和對照組差異表達的16 個miRNA 的相互關(guān)系進行分層聚類。觀察到2 個不同的簇團,弱精癥組與正常對照組差異表達的miRNA 分別聚類。通過對差異表達的16 個miRNA 的靶基因進行預(yù)測,發(fā)現(xiàn)了這些miRNA參與了9 744 個靶基因的調(diào)節(jié),見表3。

表3 符合篩選標準的miRNA

2.5 miRNA 靶基因信息學分析

為了更好地了解這些miRNA 的潛在含義,對目標基因進行了GO 富集分析和KEGG Pathway 富集分析,以評估其潛在功能。GO 分析結(jié)果表明,miRNA 靶基因顯著富集于不同功能組(P<0.05)。這些差異表達的miRNA靶基因參與細胞代謝過程、RNA 生物合成過程的調(diào)控、RNA 代謝過程的調(diào)控、生物合成過程的調(diào)控等生物過程,參與了細胞器、細胞質(zhì)、細胞核等細胞成分;參與蛋白質(zhì)結(jié)合、DNA 結(jié)合、轉(zhuǎn)移酶活性、酶結(jié)合等分子功能調(diào)節(jié)。我們分別對上調(diào)的6 個miRNA 的靶基因和下調(diào)的10 個miRNA 的靶基因進行GO 富集分析,也得出和上訴基本一樣的結(jié)論。KEGG Pathway 富集分析結(jié)果表明miRNA 靶基因明顯富集于90 個KEGG 途徑(P<0.05),涉及的代謝通路非常廣泛。MiRNA 調(diào)節(jié)的最活躍的代謝途徑包括癌癥中的microRNA、EGFR 酪氨酸激酶抑制劑耐藥、慢性粒細胞白血病、膠質(zhì)瘤、大腸癌、內(nèi)分泌抵抗、前列腺癌、細胞衰老、乙型肝炎、癌癥中的蛋白聚糖,見圖2。

圖2 差異表達基因KEGG 富集散點圖

3.討論

24%的不育男性因各種因素(精索靜脈曲張、感染或遺傳原因)而出現(xiàn)孤立的AZS[11-13]。然而,許多AZS病例在本質(zhì)上是特發(fā)性的,并且不能將具體原因歸因于該病癥[14]。因此,需要進一步研究以更好地了解影響精子前向運動力的因素,以治療/管理此類病例。精子發(fā)生是一個復(fù)雜過程,涉及眾多miRNA 的精細調(diào)控。既往已經(jīng)有部分文獻表明miRNA 失調(diào)與AZS 相關(guān)[3-5]。

共收集了35 例AZS 不育男性精液樣本和36 例健康可育男性精液樣本。然而,在檢測RNA 質(zhì)量時,結(jié)果顯示,絕大部分樣本(64 例)RNA 濃度偏低,無法建庫進行測序。經(jīng)過分析,我們認為原因可能包括以下幾點:(1)精子細胞RNA 含量極低,約為體細胞RNA 的1/100[15];(2)精子RNA 主要存在于致密的細胞核及核周圍[16],大大增加提取難度;(3)RNA 自身結(jié)構(gòu)中尚存在2 個游離的羥基,容易進攻自身的肽鍵;(4)RNA 是單鏈結(jié)構(gòu),極不穩(wěn)定,在樣本液化、儲存、及實驗過程中非常容易受外界環(huán)境(溫度、RNA 酶、儲存時間)影響,導(dǎo)致發(fā)生不同程度的降解,降低RNA 含量。由此可見,提取精子RNA 的難度相對較大,對實驗設(shè)計及環(huán)境要求比較嚴格。從以上原因,我們認識到在涉及精子RNA 的實驗中,我們應(yīng)該優(yōu)化實驗方案,改善實驗條件,避免儲存過長時間,嚴格在低溫條件下進行操作,盡量減少RNA降解[17]。

通過下一代測序平臺評估了AZS 不育男性和正常可育男性的精子差異表達的miRNA 譜。我們的實驗數(shù)據(jù)和Abu-Halima 等[17]以及Salas-Huetos 等[3]的研究結(jié)果吻合,比如miR-34b 和miR-143 在AZS 患者中均存在表達失調(diào)。更重要的是,我們還發(fā)現(xiàn)了很多之前未曾報道與AZS 相關(guān)的miRNA,極大地豐富AZS 中的miRNA 差異表達庫,為后續(xù)研究miRNA 調(diào)控AZS 發(fā)生的生物學機制提供了新的方向。相較于健康對照組,AZS 不育患者中miR-34c 表達明顯下降,表現(xiàn)出較大的表達倍數(shù)變化,且具有最顯著的統(tǒng)計學差異。我們認為miR-34c 在AZS中具有巨大的潛在作用,有希望成為AZS 的診斷性生物標志物和治療的生物靶點。

為了進一步了解和提供一些分子信息,以了解AZS 涉及這些miRNA 的生理功能和生物學過程,基于miRNA/mRNA 的相互作用原理預(yù)測了靶基因。GO 和KEGG功能注釋結(jié)果表明,miRNA 靶基因的代謝途徑涉及范圍十分廣泛。由此可見,在參與AZS 發(fā)生過程中,miRNA的生物學調(diào)節(jié)機制被整合于多個途徑中,通過多種信號傳導(dǎo)途徑調(diào)節(jié)多種基因表達。廣泛的靶標范圍及作用途徑充分表明這些miRNA 可能在AZS 發(fā)生的生物學調(diào)控中起著至關(guān)重要的作用。

本文對象是青壯年不育男性,文中尚未明確不同年齡組的miRNA 表達譜是否存在差異,有待進一步明確。

綜上所述,AZS 不育男性和健康可育男性的精子miRNA 存在著不同的表達譜,同時也豐富了AZS 的miRNA表達譜,miR-34c 有望成為AZS 的生物標志物和治療靶點。miRNA 靶基因顯著富集于多個生物學通路中,通過多種信號通路影響精子的發(fā)生,導(dǎo)致AZS。

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