孫 赫,馬井喜,趙大芳,陳慧真
(長(zhǎng)春大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,吉林 長(zhǎng)春 130022)
黃秋葵含有豐富的功能活性物質(zhì),其中包括對(duì)人體有益的黏性多糖、果膠、纖維素等成分。傳統(tǒng)多糖提取方法耗時(shí)長(zhǎng)、效率低,無(wú)法滿足生產(chǎn)生活需要,因此對(duì)多糖提取工藝進(jìn)行優(yōu)化十分必要。本研究采用堿提法、水提醇沉法、超聲波提取法對(duì)黃秋葵多糖提取進(jìn)行研究,以期為黃秋葵多糖提取工藝的優(yōu)化提供理論依據(jù)。
原料:黃秋葵,購(gòu)于吉林省長(zhǎng)春市沃爾瑪超市。
試劑:苯酚、濃硫酸、無(wú)水乙醇、鹽酸、氯仿,均為分析純,西安化學(xué)試劑廠;正丁醇、乙醚、丙酮、氨水,均為分析純,天津天泰精細(xì)化學(xué)品有限公司。
全能粉碎機(jī):天津市泰斯特儀器有限公司;分析天平:上海天平儀器有限公司;恒溫水浴鍋:上海樹(shù)立;臺(tái)式離心機(jī):美國(guó)貝克曼公司;真空干燥箱:天津市泰斯特儀器有限公司;紫外可見(jiàn)光分光光度計(jì):天津市泰斯特儀器有限公司;酸度計(jì):廣州深華生物有限公司;超聲波清洗器:上海易凈超聲波儀器有限公司;循環(huán)水式真空泵:天津市泰斯特儀器有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器:上海樹(shù)立。
1.3.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
稱取10 mg葡萄糖(分析純),加入蒸餾水溶解,而后轉(zhuǎn)移到容量瓶中定容并搖勻,配制成的葡萄糖樣液即為標(biāo)準(zhǔn)品。用微量吸取器分別吸取0.2、0.4、0.6、0.8 mL標(biāo)準(zhǔn)品,在每個(gè)比色皿中加入蒸餾水,總?cè)芤簽?.0 mL,以此配比溶液梯度進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。加入5%苯酚1 mL及濃硫酸5.0 mL,輕微震蕩以加速反應(yīng),放置20 min后進(jìn)行測(cè)定??瞻讓?duì)照組為1.0 mL蒸餾水,按同樣操作流程加入苯酚及濃硫酸。記錄所測(cè)數(shù)據(jù),進(jìn)行線性擬合。
1.3.2 黃秋葵多糖的提取方法
1.3.2.1 主要提取方法
(1)堿提法。準(zhǔn)確稱取2.0 g黃秋葵粉末置于燒杯中,加入600 mL無(wú)水乙醇,充分混合均勻以除去部分色素;而后進(jìn)行抽濾,在濾渣中加入堿液進(jìn)行溶解浸提;取上清液離心并冷凍干燥,最后提取得到的即為黃秋葵粗多糖。
(2)水提醇沉法。準(zhǔn)確稱取2.0 g黃秋葵粉末,加入適量蒸餾水?dāng)嚢杌靹?,防止結(jié)塊沉淀;100 ℃熱水條件下浸提2次,將浸提液蒸發(fā)濃縮;在蒸發(fā)濃縮后的液體中加入無(wú)水乙醇浸提多糖,觀察實(shí)驗(yàn)現(xiàn)象可知最后會(huì)產(chǎn)生部分沉淀物質(zhì),將該浸提液加速離心,得到部分固態(tài)沉淀物;將沉淀物加入少量蒸餾水進(jìn)行溶解并且再次加入3倍體積的無(wú)水乙醇進(jìn)行沉淀,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,在最后一次沉淀實(shí)驗(yàn)中所得到的沉淀物即為黃秋葵粗多糖。
(3)超聲波提取法。準(zhǔn)確稱取2.0 g黃秋葵粉末,加入蒸餾水混合均勻;再用飽和Ca(OH)調(diào)節(jié)pH值,置于超聲波儀器中進(jìn)行提取;將上清液通過(guò)乙醇沉淀后再次進(jìn)行離心,放置一段時(shí)間使乙醇揮發(fā)完全,最后提取得到的即為黃秋葵粗多糖。
1.3.2.2 穩(wěn)定性試驗(yàn)
稱取2.0 g黃秋葵粉末,按照上述多糖提取工藝步驟提取粗多糖。將提取到的黃秋葵粗多糖放置于100 mL 燒杯中,加入蒸餾水?dāng)嚢枞芙猓俎D(zhuǎn)移到1000 mL容量瓶中定容并搖勻。用微量吸取器分別吸取1.0 mL樣液于試管中,并且同時(shí)以1.0 mL水按同樣操作流程作為空白對(duì)照組,于 485 nm 處測(cè)定吸光值。記錄所測(cè)數(shù)據(jù),并且考察3 h內(nèi)吸光值的穩(wěn)定性(每30 min測(cè)1次)。
1.3.2.3 多糖溶解性實(shí)驗(yàn)
取適量三種提取法制得的黃秋葵粗多糖,分別溶于熱水、冷水、乙醇、丙醇、正丁醇、氯仿等有機(jī)溶劑中,觀察其溶解性。
1.3.2.4 精密度試驗(yàn)
將三種提取法制得的黃秋葵粗多糖分別放置于燒杯中,加入蒸餾水混合均勻,分別取6份2 mL樣液進(jìn)行實(shí)驗(yàn)(每種提取法2份樣液)。利用苯酚-硫酸法測(cè)定樣液,通過(guò)顯色反應(yīng)測(cè)定每個(gè)時(shí)間段的吸光度。通過(guò)比較6份樣液的RSD值,可以考察三種提取方法的精密度。
1.4.1 超聲波法單因素實(shí)驗(yàn)
(1)實(shí)驗(yàn)溫度。稱取4.0 g黃秋葵粉末,在料液比為1∶30的情況下,加入蒸餾水混合均勻,再用飽和Ca(OH)堿液將溶液的pH值調(diào)節(jié)為9。然后將樣液平均分成4份,分別在50、60、70、80 ℃條件下提取20 min。為減小實(shí)驗(yàn)誤差,重復(fù)實(shí)驗(yàn)3次,記錄實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)。
(2)浸提時(shí)間。稱取4.0 g黃秋葵粉末,在料液比為1∶30的情況下,加入蒸餾水混合均勻,再用飽和Ca(OH)堿液將溶液的pH值調(diào)節(jié)為9。然后將樣液平均分成4份,在相同實(shí)驗(yàn)溫度下分別浸提15、20、25、30 min。
(3)料液比。稱取4.0 g黃秋葵粉末,平均分成4份,每份1.0 g。分別按照料液比為1∶20、1∶30、1∶40、1∶50加入蒸餾水混合均勻,再用飽和Ca(OH)堿液將溶液的pH值調(diào)節(jié)為9,然后在60 ℃條件下提取20 min。為減小實(shí)驗(yàn)誤差,重復(fù)實(shí)驗(yàn)3次,記錄實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)。
(4)實(shí)驗(yàn)pH值。稱取4.0 g黃秋葵粉末,在料液比為1∶30的情況下,加入蒸餾水混合均勻,然后將樣液平均分成4份,用飽和Ca(OH)堿液將溶液的pH值分別調(diào)節(jié)為7、8、9、10,并在60 ℃條件下提取20 min。為減小實(shí)驗(yàn)誤差,重復(fù)實(shí)驗(yàn)3次,記錄實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)。
1.4.2 超聲波法正交試驗(yàn)
選取超聲波提取法的實(shí)驗(yàn)溫度、浸提時(shí)間、料液比、實(shí)驗(yàn)pH值為影響因素,設(shè)計(jì)正交試驗(yàn),以確定超聲波法提取黃秋葵多糖的最佳工藝條件。正交試驗(yàn)因素水平見(jiàn)表1。
表1 超聲波法正交試驗(yàn)因素水平
如圖1所示,葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的回歸方程為y=0.222x-0.2153,相關(guān)系數(shù)為R2=0.9995,可達(dá)到小數(shù)點(diǎn)后3個(gè)9,說(shuō)明結(jié)果良好。
圖1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線
2.2.1 穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
堿提法穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2。數(shù)據(jù)顯示,吸光度在3 h內(nèi)變化范圍較小,因此本實(shí)驗(yàn)利用苯酚-硫酸法進(jìn)行黃秋葵多糖的定性和定量測(cè)定是有理論及實(shí)踐依據(jù)的。
表2 堿提法穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
2.2.2 多糖溶解性實(shí)驗(yàn)結(jié)果
實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),堿提法提取的粗多糖易溶于極性有機(jī)溶劑,在熱水、冷水中都有較好的溶解效果,但不溶于高濃度的非極性有機(jī)溶劑,如丙酮、氯仿、正丁醇、乙醚等。
2.2.3 精密度試驗(yàn)結(jié)果
堿提法精密度試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表3。根據(jù)相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)的計(jì)算公式得出RSD為0.0783%,說(shuō)明試驗(yàn)結(jié)果精密度較好。
表3 堿提法精密度試驗(yàn)結(jié)果
2.3.1 穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
水提醇沉法穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表4。數(shù)據(jù)顯示,吸光度在3 h內(nèi)變化范圍較小,因此本實(shí)驗(yàn)利用苯酚-硫酸法進(jìn)行黃秋葵多糖的定性和定量測(cè)定是有理論及實(shí)踐依據(jù)的。
表4 水提醇沉法穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
2.3.2 多糖溶解性實(shí)驗(yàn)結(jié)果
實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),水提醇沉法提取的粗多糖易溶于極性有機(jī)溶劑,在熱水、冷水中都有較好的溶解效果,但不溶于高濃度的非極性有機(jī)溶劑,如丙酮、氯仿、正丁醇、乙醚等。
2.3.3 精密度試驗(yàn)結(jié)果
水提醇沉法精密度試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表5。計(jì)算6份樣品的吸光度的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差,得出RSD為0.0194%,說(shuō)明試驗(yàn)結(jié)果精密度較好。
表5 水提醇沉法精密度試驗(yàn)結(jié)果
2.4.1 穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
超聲波法穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表6。數(shù)據(jù)顯示,吸光度在3 h內(nèi)變化范圍較小,因此本實(shí)驗(yàn)利用苯酚-硫酸法進(jìn)行黃秋葵多糖的定性和定量測(cè)定是有理論及實(shí)踐依據(jù)的。
表6 超聲波法穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果
2.4.2 多糖溶解性實(shí)驗(yàn)結(jié)果
實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),超聲波法提取的粗多糖易溶于極性有機(jī)溶劑,在熱水、冷水中都有較好的溶解效果,但不溶于高濃度的非極性有機(jī)溶劑,如丙酮、氯仿、正丁醇、乙醚等。
2.4.3 精密度試驗(yàn)結(jié)果
超聲波法精密度試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表7。計(jì)算6份樣品的吸光度的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差,得出RSD為0.0074%,說(shuō)明試驗(yàn)結(jié)果精密度好。
表7 超聲波法精密度試驗(yàn)結(jié)果
2.5.1 實(shí)驗(yàn)溫度對(duì)多糖得率的影響
由圖2可以看出,多糖得率隨著實(shí)驗(yàn)溫度上升而提高,當(dāng)實(shí)驗(yàn)溫度為60 ℃時(shí),多糖得率最高。
圖2 實(shí)驗(yàn)溫度對(duì)多糖提取率的影響
2.5.2 浸提時(shí)間對(duì)多糖得率的影響
由圖3可以看出,多糖得率隨著浸提時(shí)間的延長(zhǎng)而提高。但是時(shí)間過(guò)長(zhǎng)可能造成超聲波空化作用太久,長(zhǎng)時(shí)間的超聲波作用可能使多糖鏈斷裂,破壞多糖結(jié)構(gòu),從而導(dǎo)致提取率降低。
圖3 浸提時(shí)間對(duì)多糖提取率的影響
2.5.3 料液比對(duì)多糖得率的影響
由圖4可以看出,加大料液比可以在一定程度上提高多糖提取率。當(dāng)料液比較大時(shí),溶液中的多糖濃度低,使得溶液和黃秋葵之間形成了另一個(gè)濃度差,從而加快分子的擴(kuò)散速率。同時(shí),料液比加大可以使膠質(zhì)多糖的分解速率加快,促使多糖分子從黃秋葵中加速分離。
圖4 料液比對(duì)多糖提取率的影響
2.5.4 實(shí)驗(yàn)pH值對(duì)多糖得率的影響
由圖5可以看出,多糖得率隨著pH值增大而提高,當(dāng)pH值為9時(shí),提取效果最佳。多糖在酸性或者堿性條件下會(huì)發(fā)生水解反應(yīng),最后生成單糖,因此在pH值很低或者很高的情況下多糖均會(huì)發(fā)生水解反應(yīng),并且過(guò)酸或過(guò)堿的條件也會(huì)使得黃秋葵中纖維素等物質(zhì)發(fā)生水解反應(yīng)。
圖5 實(shí)驗(yàn)pH值對(duì)多糖提取率的影響
超聲波法正交試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表8。各因素的影響程度為B>A>D>C,即浸提時(shí)間>實(shí)驗(yàn)溫度>實(shí)驗(yàn)pH值>料液比。最優(yōu)組合為A3B2C1D3,即實(shí)驗(yàn)溫度70 ℃、浸提時(shí)間20 min、料液比1∶30、實(shí)驗(yàn)pH值10,在此條件下,黃秋葵多糖得率為6.79%。
表8 超聲波法正交試驗(yàn)結(jié)果
本文以黃秋葵為原料,比較堿提法、水提醇沉法、超聲波提取法三種方法的多糖提取效果,探究黃秋葵多糖的最佳提取工藝。通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)及正交試驗(yàn)得出,利用超聲波提取黃秋葵多糖的最佳提取工藝為實(shí)驗(yàn)溫度70 ℃、浸提時(shí)間20 min、料液比1∶30、實(shí)驗(yàn)pH值10。在此條件下,黃秋葵多糖得率達(dá)到最大值,為6.79%。