方丹丹 張婷 文曉鵬
(1. 貴州大學(xué)農(nóng)業(yè)生物工程研究院 生命科學(xué)學(xué)院 山地植物資源保護(hù)與保護(hù)種質(zhì)創(chuàng)新教育部重點實驗室 貴陽 550025;2. 貴陽學(xué)院生物與環(huán)境工程學(xué)院 貴州省山地珍稀動物與經(jīng)濟(jì)昆蟲重點實驗室,貴陽 550005)
磷元素是植物生長發(fā)育過程中不可或缺的營養(yǎng)元素之一,是促進(jìn)植物生長發(fā)育的重要元素,但土壤對磷元素有著強烈的吸附作用。土壤溶液中的無機磷酸鹽作為植物磷的主要來源,大多是以沉淀的形式存在于土壤環(huán)境中;同時可以與土壤溶液中的陽離子形成絡(luò)合物,導(dǎo)致土壤環(huán)境中的有機磷不能直接被植物吸收利用[1]。植株在低磷脅迫環(huán)境中會通過根系向土壤中排放其分泌物,進(jìn)而活化土壤中的無機、有機磷,以及接收缺磷的信號來誘導(dǎo)表達(dá)磷轉(zhuǎn)運蛋白基因[2-4]。多項研究表明,植物在響應(yīng)低磷脅迫的過程中,磷轉(zhuǎn)運蛋白(Phosphorus Transporter,PT)會被高效誘導(dǎo)表達(dá),而正常供磷環(huán)境下該蛋白反被抑制[5-9]。在低磷脅迫條件下,蒺藜苜蓿(Medicago truncatula)PT1家族中的磷轉(zhuǎn)運蛋白基因MtPT5和MtPT6下可以促進(jìn)有效磷向根瘤運輸,使根瘤中保持磷平衡[10]。Xu等[11]從玉米(Zea Mays)中分離出ZmPt9,過表達(dá)擬南芥后發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)基因擬南芥具有小葉子和早開花的現(xiàn)象。Naureen等[12]借助VIGS介導(dǎo)的基因瞬時沉默的技術(shù)方法,對番茄(Solanum lycopersicum)中的SlPT1基因的沉默導(dǎo)致番茄植株在低磷脅迫的條件下保護(hù)酶類活性顯著下降。在磷素吸收與轉(zhuǎn)運分配過程中,對杉木(Cunninghamia lanceolata)中的磷酸轉(zhuǎn)運蛋白PHT1家族中的ClPht1基因進(jìn)行同源轉(zhuǎn)化發(fā)現(xiàn),該基因參與杉木地下部分和地上部分磷素的運輸和分配[13]。雙子葉植物紫云英(Astragalus sinicus)中磷轉(zhuǎn)運蛋白AsPT5基因?qū)υ鰪娖渲仓瓯旧砀祵α姿猁}的吸收起著關(guān)鍵性的作用[14]。由此可知,磷轉(zhuǎn)運蛋白(PHT)在植物吸收磷酸鹽中具有重要作用。然而,木本植物中的PHT家族基因在其他植物中賦予植物生長的作用還有待探索。馬尾松(Pinus massoniana)是我國松屬類分布最廣的針葉樹種,是擁有多方面用途的用材林,同時支撐著我國森林文化、醫(yī)療保健和化工業(yè)等多個行業(yè),被冠名為“高附加值林產(chǎn)品的經(jīng)濟(jì)樹種”[15]。在我國部分缺磷嚴(yán)重的地區(qū),馬尾松經(jīng)歷長期的地理隔離、生殖隔離和自然選擇,致使其種內(nèi)產(chǎn)生遺傳變異現(xiàn)象,在低磷環(huán)境下展現(xiàn)出良好的適應(yīng)生存能力。前期研究發(fā)現(xiàn)通過對馬尾松在低磷脅迫下的磷轉(zhuǎn)運蛋白基因的效應(yīng),其中磷轉(zhuǎn)運蛋白基因在低磷脅迫環(huán)境下具有良好的作用機制[5]。因此,進(jìn)行相關(guān)植株遺傳轉(zhuǎn)化可以分析其潛在的應(yīng)用價值。本研究通過采用花序浸染法遺傳轉(zhuǎn)化擬南芥,探討在低磷脅迫條件下馬尾松高親和磷轉(zhuǎn)運蛋白PmPT3基因在草本植物擬南芥中耐低磷脅迫的能力,可為林木優(yōu)良基因的利用及創(chuàng)制耐低磷新種質(zhì)提供一定的科學(xué)依據(jù)。
生態(tài)型哥倫比亞擬南芥(Arabidopsis thaliana)種子,馬尾松PmPT3基因(GenBank注冊號為KT390744)由本實驗前期克隆并注冊,農(nóng)桿菌(Agrobacterium tumefaciens)GV3101菌株、植物表達(dá)載體pBWA(V)HS由貴州大學(xué)農(nóng)業(yè)生物工程研究院保存。
1.2.1 PmPT3基因擴(kuò)增及純化 根據(jù)馬尾松PmPT3基因序列與pBWA(V)HS質(zhì)粒上原有的限制性內(nèi)切酶酶切位點,利用軟件Primer5設(shè)計特異性正反引物,并在引物5′端插入Ase I和Bsa I的酶切位點及保護(hù)堿基,所獲得的克隆正反引物序列見表1,用該引物對馬尾松cDNA模板進(jìn)行擴(kuò)增,反應(yīng)總體系為 10 μL,包括 PreMix 5 μL,正反引物各 0.5 μL,模板 1 μL,ddH2O 3 μL。PCR 反應(yīng)程序 :94℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s;50℃退火45 s;72℃延伸90 s;30個循環(huán);72℃延伸7 min。PCR產(chǎn)物進(jìn)行凝膠電泳檢測,回收純化,保存在-20℃冰箱中備用。
1.2.2 植物表達(dá)載體構(gòu)建及農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化 將回收產(chǎn)物連接到BLUNT載體上,轉(zhuǎn)化感受態(tài)大腸桿菌DH5α 37℃培養(yǎng)過夜,篩選陽性菌落進(jìn)行測序,提取質(zhì)粒備用。分別用限制性內(nèi)切酶Ase I和Bsa I對含有PmPT3基因和pBWA(V)HS載體質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切,回收PmPT3和pBWA(V)HS兩個目的片段。用T4連接酶將目的片段產(chǎn)物進(jìn)行過夜連接,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)大腸桿菌DH5α細(xì)胞,PCR鑒定陽性克隆,獲得重組質(zhì)粒后命名為pBWA(V)HSPmPT3。用熱激法將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至農(nóng)桿菌GV3101感受態(tài)細(xì)胞,并進(jìn)行陽性檢測。
1.2.3 擬南芥遺傳轉(zhuǎn)化及陽性植株鑒定 將攜帶pBWA(V)HS-PmPT3超表達(dá)載體的農(nóng)桿菌于液體培養(yǎng)基中活化過夜培養(yǎng),用15%蔗糖溶液懸浮離心2次后將農(nóng)桿菌重懸于20 mL滲透液(15%蔗糖+20 μL Silwet-77,OD600=1.0-1.2)中,將提前澆足水的擬南芥上的果莢和完全開放的花剪除,將滲透液充分搖勻后浸泡擬南芥花絮1 min,幼嫩的枝條花絮浸染30 s,同時輕微震蕩。浸染后暗培養(yǎng)36 h,然后置于正常培養(yǎng)1周左右方可澆水,并定期繼續(xù)浸染2-3次,培養(yǎng)至種子成熟備用。將收集到的種子培養(yǎng)于MS+20 mg/L Hyg(潮霉素B)+100 mg/L Cep(頭孢)的固體培養(yǎng)基上進(jìn)行篩選,pH=5.8,篩選得到T0代植株后,分株收獲T1代轉(zhuǎn)基因種子。按照上步方法篩選T1代轉(zhuǎn)基因種子,根據(jù)孟德爾遺傳定律挑選符合3∶1分離比的T2代苗,分株收獲T2代轉(zhuǎn)基因種子,經(jīng)篩選培養(yǎng)最終得到T3代轉(zhuǎn)基因種子,培養(yǎng)T3代轉(zhuǎn)基因苗進(jìn)行后續(xù)實驗。
1.2.4 低磷脅迫處理及相關(guān)生理生化指標(biāo)的測定 將擬南芥野生型和篩選得到的T3代轉(zhuǎn)基因種子分別在MS條件下春化處理4 d,繼續(xù)培養(yǎng)5 d,挑選長勢一致的擬南芥野生型和轉(zhuǎn)基因植株,分別移植到低磷(LP,0.125 mmol/L)、對照(MS,1.25 mmol/L)2個供磷水平的培養(yǎng)基中培養(yǎng)20 d后,觀察葉片、根系的形態(tài)變化,測定相關(guān)生理生化指標(biāo):地上和地下部分的干重,總磷和無機磷含量,丙二醛(MDA)含量、超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)活性(測量方法參照購于索萊寶生物科技有限公司的試劑盒)。每項生理生化指標(biāo)重復(fù)測定3次。
1.2.5 轉(zhuǎn)基因擬南芥PmPT3基因表達(dá)分析 提取轉(zhuǎn)基因擬南芥地上部分和根部的RNA,并進(jìn)行cDNA第一鏈合成。之后進(jìn)行PmPT3基因的qRT-PCR表達(dá)分析,Actin2為內(nèi)參基因[9],所用引物名稱及基因特異性引物序列見表1。熒光定量反應(yīng)體系為10 μL :SYBR? Green Master Mix 5.0 μL、ddH2O 4.0 μL、正反向引物各0.25 μL、模板cDNA 0.5 μL。擴(kuò)增程序 :95℃ 10 min;95℃ 15 s;59℃ 30 s;72℃ 60 s;40個循環(huán)。
表1 實驗所用引物及序列Table 1 Primers and sequences used in the study
cDNA模板PCR擴(kuò)增后進(jìn)行回收(圖1-A),將目的基因條帶連接BLUNT載體,測序拼接結(jié)果與PmPT3基因的ORF一致。進(jìn)行雙酶切后,酶切產(chǎn)物凝膠電泳檢測(圖1-B,圖1-C),獲得大小兩個條帶,小條帶的大小在1 700 bp-1 800 bp之間,目的基因序列大小處于該區(qū)間內(nèi)。轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)DH5α細(xì)胞,獲得重組質(zhì)粒pBWA(V)HS-PmPT3,條帶大小符合(圖1-D)。向農(nóng)桿菌GV3101感受態(tài)細(xì)胞加入重組質(zhì)粒進(jìn)行轉(zhuǎn)化后,菌落PCR及凝膠電泳檢測(圖1-E),經(jīng)過比對與目的基因條帶相符,進(jìn)而說明農(nóng)桿菌中已成功轉(zhuǎn)入pBWA(V)HSPmPT3質(zhì)粒,植物表達(dá)載體構(gòu)建成功。
圖1 馬尾松PmPT3基因植物表達(dá)載體的構(gòu)建Fig.1 Construction of plant expression vector of P. massoniana PmPT3 Gene
采用花序浸染法,遺傳轉(zhuǎn)化擬南芥(圖2),共獲得T1代擬南芥抗性植株27株,分別提取這27株擬南芥的RNA,反轉(zhuǎn)錄為cDNA后進(jìn)行PmPT3基因的qRT-PCR表達(dá)分析,分析結(jié)果顯示27株株系中11號表達(dá)量最高,5號次之(圖3-A)。通過繼續(xù)篩選共獲得4株T3代純合株系,其馬尾松PmPT3基因表達(dá)量最高(圖3-B),進(jìn)行磷處理后,葉片、根系的形態(tài)變化如圖2-G和圖2-F。
圖2 馬尾松PmPT3遺傳轉(zhuǎn)化擬南芥過程Fig.2 Process of genetic transformation of P. massoniana PmPT3 into Arabidopsis
圖3 T1代轉(zhuǎn)基因擬南芥qRT-PCR分析(A)及純合株系PCR檢測(B)Fig.3 Analysis of positive gene expression in T1 generation transgenic Arabidopsis thaliana (A) and PCR detection of homozygous strains (B)
在正常供磷條件下,擬南芥野生型和轉(zhuǎn)基因植株過氧化物酶(POD)、超氧化物歧化酶(SOD)活性、過氧化氫酶(CAT)活性和丙二醛(MDA)含量差異不顯著,在低磷條件下轉(zhuǎn)基因植株的POD、SOD、CAT酶活性均高于野生型植株,分別是野生型植株的2.17倍(圖4-A)、1.59倍(圖4-B)、1.81倍(圖4-C);MDA含量都增加,但野生型植株MDA含量極顯著高于轉(zhuǎn)基因植株,是轉(zhuǎn)基因植株的2.10倍(P<0.05,圖4-D)。分析結(jié)果表明,在低磷脅迫條件下,轉(zhuǎn)基因擬南芥中馬尾松PmPT3基因的超表達(dá)有效的增強了植株保護(hù)酶活性,降低了丙二醛含量,進(jìn)而增強了擬南芥耐低磷脅迫的能力。
圖4 低磷脅迫對轉(zhuǎn)基因擬南芥POD(A)、SOD(B)、CAT(C)活性及MDA(D)含量的影響Fig.4 Effect of low phosphorus stress on the POD(A), SOD(B), CAT(C) activity and MDA(D) content of transgenic Arabidopsis
在正常供磷條件下,地上部分及根部總磷含量和無機磷含量無顯著性差異。低磷脅迫處理后,轉(zhuǎn)基因擬南芥的地上部分和根部總磷含量較野生型相比,分別提高了1.26倍和1.74倍(圖5-A),無機磷含量較野生型相比分別提高了1.38倍和1.89倍(圖5-B)。表明在低磷脅迫條件下PmPT3基因的超表達(dá)對擬南芥磷素吸收利用的能力有提高作用。
圖5 低磷脅迫對轉(zhuǎn)基因擬南芥總磷含量(A)和無機磷含量(B)的影響Fig.5 Effect of low phosphorus stress on the total phosphorus content (A) and inorganic phosphorus content (B) of transgenic Arabidopsis
在正常供磷條件下,地上部干重、根干重和總干重都無顯著差異,但在低磷脅迫條件下都表現(xiàn)出極顯著的差異,其中轉(zhuǎn)基因植株較野生型地上部干重增加了45.46%,根干重增加了55.56%,總干重增加了46.15%(圖6)。根冠比都大于正常供磷條件下的擬南芥,表明低磷脅迫對植株地下部分的抑制作用可能小于地上部分。
圖6 低磷脅迫對轉(zhuǎn)基因擬南芥地上部干重(A)、根干重(B)、總干重(C)和根冠比(D)的影響Fig.6 Effect of low phosphorus stress on the above-ground dry weight (A), root dry weight (B), total dry weight (C) and root to shoot ratio (D) of transgenic Arabidopsis
無論是正常供磷條件下,還是低磷脅迫條件下,根部及地上部分PmPT3基因表達(dá)量都表現(xiàn)為極顯著性差異(圖7)。與正常供磷相比,低磷脅迫下PmPT3基因相對表達(dá)量在根部及地上部分的相對表達(dá)量顯著提高,且在根部相對表達(dá)量最高,這說明該基因主要在植株的根部發(fā)揮作用。
圖7 磷處理后馬尾松PmPT3基因相對表達(dá)量Fig.7 Relative expression of PmPT3 gene of P. massoniana after phosphorus treatment
磷是植物生長發(fā)育所需的重要常量元素,根系從土壤中吸收磷是植物獲取磷的主要途徑。當(dāng)植物在面對低磷脅迫的過程中,植株本身不僅在發(fā)育、形態(tài)、生理和生化等方面形成復(fù)雜的機制來應(yīng)對低磷脅迫,同時在植物基因水平也發(fā)揮著不同的作用,以此來適應(yīng)各種逆境和脅迫帶來的不良影響[16]。當(dāng)植物生長在低磷脅迫環(huán)境中時,植物體內(nèi)的磷轉(zhuǎn)運蛋白基因?qū)l(fā)揮作用,其中PHT1基因家族是調(diào)節(jié)磷轉(zhuǎn)運非常重要的高親和磷轉(zhuǎn)運蛋白基因,是植株細(xì)胞膜進(jìn)行吸收和轉(zhuǎn)運土壤中無機磷的重要轉(zhuǎn)運蛋白[17]。
本研究中,進(jìn)行低磷脅迫處理后,轉(zhuǎn)基因擬南芥的地上部分和根部總磷含量及無機磷含量都顯著提高,說明PmPT3基因的超表達(dá)可能增加了擬南芥對磷的吸收。對其他植物中同類基因的研究也有報道,例如,番茄植株在供磷水平低的條件下,SlPT1基因如果保持沉默,則會導(dǎo)致植株磷含量顯著降低[18]。在橡膠樹中,HbPHT1基因表達(dá)量的增加改善了植株磷的吸收、轉(zhuǎn)運和利用[19]。有研究發(fā)現(xiàn)白羽扇豆中的LaPT1基因,在低磷脅迫環(huán)境中,獲得高效表達(dá),特別是在根中[20]。馬鈴薯進(jìn)行低磷處理后,磷轉(zhuǎn)運蛋白StPHT1基因獲得了過表達(dá),根部的表達(dá)量高于莖和葉,這說明在低磷環(huán)境下,根部中StPHT1的依賴性可能大于莖與葉[21]。本研究中,低磷脅迫下PmPT3基因相對表達(dá)量在根部及地上部分的相對表達(dá)量顯著提高,且在根部相對表達(dá)量最高,與其他物種中的情況相似。
另外有研究表明,在植株處于非生物脅迫條件下,細(xì)胞會產(chǎn)生一系列活性氧簇來打破細(xì)胞內(nèi)自由基平衡,提高細(xì)胞膜透性,作為植物細(xì)胞抵御逆境的保護(hù)性酶類POD、SOD、CAT會明顯上升,以此來消除植物細(xì)胞內(nèi)多余的活性氧,進(jìn)而來減弱低磷脅迫對植物細(xì)胞膜系統(tǒng)、蛋白質(zhì)和核酸造成的損傷,達(dá)到保護(hù)植物的作用[22-24]。清除活性氧自由基的關(guān)鍵酶SOD、POD和CAT,以及MDA的含量都能間接地反映細(xì)胞膜脂的過氧化程度,可反映植物耐逆境的能力[25]。在本研究中,轉(zhuǎn)基因擬南芥植株在低磷脅迫下SOD、POD、CAT活性較野生型顯著升高,MDA含量顯著降低。有研究表明,將馬鈴薯磷酸轉(zhuǎn)運蛋白StPht1-1基因過表達(dá)楊樹P39后生物量獲得顯著增加[26]。本研究中,擬南芥生物量的變化表明,PmPT3基因的超表達(dá)提高了擬南芥生物量的積累,與馬尾松Pht1家族中的基因在煙草中的結(jié)果相似[5]。
馬尾松PmPT3基因的超表達(dá)提高了轉(zhuǎn)基因擬南芥保護(hù)酶活性,降低了丙二醛含量,增加了磷含量和生物量的積累,進(jìn)而顯著提高了擬南芥耐低磷脅迫的能力。