李秋瑩,徐瑾秀,張婧陽(yáng),孫 彤,勵(lì)建榮
(渤海大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,生鮮農(nóng)產(chǎn)品貯藏加工及安全控制技術(shù)國(guó)家地方聯(lián)合工程研究中心,遼寧 錦州 121013)
熒光假單胞菌(Pseudomonas fluorescens)是化能異養(yǎng)型的革蘭氏陰性菌,呈桿狀,無(wú)菌毛,有數(shù)根極端鞭毛,能分泌黃綠色熒光色素發(fā)出熒光,廣泛存在于土壤、水生環(huán)境和高蛋白高脂肪食品中[1]。其在4 ℃仍能生長(zhǎng)繁殖,是引起低溫條件下水產(chǎn)品腐敗變質(zhì)的一種優(yōu)勢(shì)腐敗菌[2]。熒光假單胞菌具有較強(qiáng)的水解蛋白質(zhì)和脂肪的能力,可以產(chǎn)生吲哚、苯酚、腐胺、尸胺、硫化氫等有毒物質(zhì),并導(dǎo)致水產(chǎn)品感官不可接受性的黏液、異味[2]。熒光假單胞菌可在水產(chǎn)品生產(chǎn)設(shè)備表面形成生物膜,增強(qiáng)了其對(duì)水產(chǎn)品加工過(guò)程中各種環(huán)境壓力的耐受性,使其難以抑制[3]。此外,作為一種條件致病菌,熒光假單胞菌能夠?qū)е轮T如敗血癥、感染性休克及血管內(nèi)凝血等危害人體健康[4]。這嚴(yán)重降低了水產(chǎn)品的品質(zhì)和安全性。因此,控制熒光假單胞菌的生長(zhǎng)對(duì)延長(zhǎng)水產(chǎn)品貨架期、提高水產(chǎn)品的安全性具有重要意義。
細(xì)菌的雙組分信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)(two-component signal transduction system,TCS)能夠感應(yīng)環(huán)境變化,應(yīng)對(duì)環(huán)境變化引起的負(fù)面效應(yīng)[5],參與調(diào)控細(xì)菌的趨化性、滲透壓、形態(tài)分化、營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)代謝、耐藥性等諸多生理過(guò)程[6]。通常TCS由組氨酸激酶(histidine kinase,HK)和對(duì)應(yīng)的應(yīng)答調(diào)節(jié)蛋白(response regulator,RR)組成[7]。當(dāng)感受到胞外信號(hào)時(shí),HK C端的組氨酸殘基(His)發(fā)生自磷酸化反應(yīng),并將磷酸基團(tuán)轉(zhuǎn)移到對(duì)應(yīng)RR位于N端的天冬氨酸殘基(Asp)上,磷酸化的RR可與靶基因結(jié)合并調(diào)控其轉(zhuǎn)錄表達(dá)[8]。鑒于這種能識(shí)別和應(yīng)對(duì)多種環(huán)境刺激的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制在細(xì)菌生存適應(yīng)中的重要作用,研究其在水產(chǎn)品熒光假單胞菌的作用機(jī)制,可為該腐敗菌的靶向控制提供新思路。
隨著高通量測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,越來(lái)越多微生物的基因組序列被公布。為進(jìn)一步探究熒光假單胞菌對(duì)水產(chǎn)品腐敗的致腐機(jī)理,本實(shí)驗(yàn)室前期對(duì)分離自冷藏大菱鲆的熒光假單胞菌PF08菌株進(jìn)行全基因組測(cè)序和功能基因注釋。然而,TCS蛋白一般包括幾個(gè)互不相關(guān)的功能域,基因組注釋常常會(huì)因?yàn)檎麄€(gè)編碼區(qū)相似度不高而導(dǎo)致注釋不準(zhǔn)確[9]。目前,關(guān)于假單胞菌屬TCS的研究多集中在某個(gè)基因上,而缺少對(duì)于基因組中所有TCS的全面分析。因此,本研究采用生物信息學(xué)方法從全基因組范圍預(yù)測(cè)PF08菌株的TCS基因,將預(yù)測(cè)到的TCS與假單胞菌屬其他模式菌進(jìn)行比較,并對(duì)其結(jié)構(gòu)、功能和進(jìn)化關(guān)系進(jìn)行分析,以期為進(jìn)一步探究水產(chǎn)品熒光假單胞菌PF08菌株中TCS對(duì)環(huán)境適應(yīng)的調(diào)控機(jī)制及其致腐機(jī)制提供參考。
熒光假單胞菌PF08菌株分離自腐敗大菱鲆,是其優(yōu)勢(shì)腐敗菌,已完成全基因組測(cè)序,其序列(CP032618.1)可從美國(guó)國(guó)立生物技術(shù)信息中心網(wǎng)站(National Center for Biotechnology Information,NCBI,https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)下載。熒光假單胞菌F113、銅綠假單胞菌PA01和惡臭假單胞菌KT2440的基因組信息來(lái)自NCBI,其相應(yīng)的TCS信息由微生物信號(hào)傳導(dǎo)數(shù)據(jù)庫(kù)MiST(http://mistdb.com/)檢索獲得[10]。
1.2.1 TCS的鑒定
參照師舷等[11]的方法,利用TCS中HK和RR蛋白的保守結(jié)構(gòu)域篩選熒光假單胞菌PF08中可能存在的HK和RR。HK的保守結(jié)構(gòu)域HATPase_c(Pfam02518)和RR的保守結(jié)構(gòu)域Response_reg(Pfam00072)下載自Pfam數(shù)據(jù)庫(kù)(http://pfam.xfam.org/),并用HMMER軟件(下載自http://hmmer.org/download.html)構(gòu)建該保守結(jié)構(gòu)域的隱馬爾科夫模型(hmmbuild),然后在熒光假單胞菌PF08全基因組序列中用上述的隱馬爾科夫模型分別搜尋可能的HK和RR(hmmsearch)。通過(guò)NCBI的BLASTp程序確認(rèn)搜到的HK和RR,確認(rèn)標(biāo)準(zhǔn)如下:1)催化結(jié)構(gòu)域HATPase_c必須位于HK的C末端,且其上游具有二聚化或磷酸化結(jié)構(gòu)域HisKA;2)RR的N-末端具有磷酸受體結(jié)構(gòu)域REC[11]?;蜷g距小于300 bp的HK和RR為成對(duì)TCS;同時(shí)擁有HisKA和REC結(jié)構(gòu)域的蛋白為融合HK;單個(gè)的HK或RR定義為孤兒HK或RR[12]。
1.2.2 生物信息學(xué)分析
蛋白保守結(jié)構(gòu)域的分析利用SMART(Simple Modular Architecture Research Tool,http://smart.embl-heidelberg.de)完成;蛋白跨膜結(jié)構(gòu)域采用TMHMM Server v.2.0(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM-2.0/)進(jìn)行預(yù)測(cè);采用Clustal X分別對(duì)HK和RR進(jìn)行多重序列比,并利用MEGA7.0(Molecular Evolutionary Genetics Analysis)建立系統(tǒng)發(fā)育樹(shù);從京都基因與基因組百科全書(shū)(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes,KEGG,https://www.kegg.jp/)數(shù)據(jù)庫(kù)中獲取TCS的功能信息,同時(shí)參考已研究細(xì)菌TCS的功能對(duì)熒光假單胞菌PF08中各TCS的功能進(jìn)行預(yù)測(cè)。
利用保守結(jié)構(gòu)域HATPase_c(Pfam02518)和Response_reg(Pfam00072)對(duì)熒光假單胞菌PF08菌株全基因組中的TCS進(jìn)行了搜索。結(jié)果表明,熒光假單胞菌PF08共有147 個(gè)TCS基因,63 個(gè)基因編碼HK蛋白(38 個(gè)經(jīng)典HK和25 個(gè)融合HK),其中32 個(gè)經(jīng)典HK和7 個(gè)融合HK與相應(yīng)RR組成了39 個(gè)成對(duì)TCS(表1)。另外84 個(gè)基因編碼RR蛋白,包括39 個(gè)HK-RR對(duì)和45 個(gè)孤兒RR。其中,AYG05564.1、AYG05979.1、AYG05997.1、AYG06213.1、AYG07392.1、AYG08306.1、AYG09608.1、AYG010767.1等基因所編碼的蛋白質(zhì)只有HATPase_c結(jié)構(gòu)域而缺少HisKA結(jié)構(gòu)域,本研究沒(méi)有將它們歸為T(mén)CS基因;AYG06573.1和AYG07073.1僅有HATPase_c結(jié)構(gòu)域和REC結(jié)構(gòu)域而缺少HisKA結(jié)構(gòu)域,因此本研究將其歸為RR而非融合HK[11-12]。
表1 熒光假單胞菌PF08全基因組中TCSTable 1 TCSs in the whole genome of P.fluorescens PF08
MiST數(shù)據(jù)庫(kù)檢索到假單胞菌屬其他菌株TCS信息,并與熒光假單胞菌PF08菌株在基因組大小、TCS基因數(shù)量、HK和RR組成情況進(jìn)行比較分析(表2)。有研究表明TCS總蛋白數(shù)目與基因組大小呈正比[13]。熒光假單胞菌PF08菌株的基因組大小、基因組中蛋白數(shù)目均小于熒光假單胞菌F113、銅綠假單胞菌PA01和惡臭假單胞菌KT2440,然而其TCS基因數(shù)目卻更接近于基因組最大的熒光假單胞菌模式菌株F113,分別多于銅綠假單胞菌PA01和惡臭假單胞菌KT2440 27 個(gè)和20 個(gè),這可能是因?yàn)闊晒饧賳伟鶳F08和F113親緣關(guān)系更近,此外TCS基因數(shù)目差異也與菌株的生存環(huán)境及進(jìn)化的不同有關(guān)[14]。
表2 熒光假單胞菌PF08菌株與假單胞菌屬其他模式菌的基因組信息和TCS基因比較Table 2 Genome information and TCS genes of P.fluorescens PF08 and other members of Pseudomonas genus
大部分HK是具有多個(gè)結(jié)構(gòu)域且能夠形成同型二聚體的跨膜蛋白[15]。HK的跨膜區(qū)與胞外信號(hào)感受有關(guān)。TMHMM Server v.2.0對(duì)HK蛋白跨膜區(qū)的預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,39 個(gè)成對(duì)TCS中32 個(gè)HK具有至少1 個(gè)跨膜區(qū),6 個(gè)孤兒HK中有3 個(gè)具有跨膜區(qū),25 個(gè)融合HK中有13 個(gè)具有跨膜區(qū),表明以跨膜區(qū)來(lái)看成對(duì)TCS的HK蛋白是監(jiān)測(cè)胞外環(huán)境變化的主要蛋白。根據(jù)結(jié)構(gòu)域的不同,熒光假單胞菌PF08菌株中的HK可以分為25 種。38 個(gè)經(jīng)典HK分為10 種(圖1a),其中17 個(gè)HK蛋白含有HAMP、HATPase_c和HisKA 3 個(gè)結(jié)構(gòu)域,9 個(gè)HK蛋白僅含有HATPase_c和HisKA 2 個(gè)結(jié)構(gòu)域,4 個(gè)HK蛋白含PAS、HATPase_c和HisKA 3 個(gè)結(jié)構(gòu)域,2 個(gè)HK蛋白同時(shí)含有HAMP、PAS和HATPase_c和HisKA 4 個(gè)結(jié)構(gòu)域,其余6 個(gè)HK蛋白含有各異的結(jié)構(gòu)域組合。25 個(gè)融合HK分為15 種(圖1b)。這表明與經(jīng)典HK相比,融合HK的數(shù)目雖少,但其結(jié)構(gòu)域組成及功能更為復(fù)雜。該菌株中所有的HK的C端均具有HK的典型結(jié)構(gòu)域HATPase_c和HisKA(部分HK的HATPase_c和HisKA位于N端),其中AYG07090.1、AYG10324.1中H-kinase_dim結(jié)構(gòu)域是HisKA形成二聚體的區(qū)域。HATPase_c結(jié)構(gòu)域是位于胞內(nèi)的HK的催化結(jié)構(gòu)域,負(fù)責(zé)將ATP的磷酸基團(tuán)轉(zhuǎn)移到組氨酸上,HisKA是接受磷酸的受體結(jié)構(gòu)域,它們是磷酸基團(tuán)傳遞的重要基礎(chǔ)。在HK的N端,除跨膜區(qū)外,大部分HK還存在不同結(jié)構(gòu)域,使HK的結(jié)構(gòu)和功能具有多樣性[11],如HAMP、PAS、HPT、PBPb、PAC、CHASE2、CheW、GAF。
圖1 PF08菌株中部分HK的結(jié)構(gòu)域組成Fig.1 Structural domains of part of histidine kinases in P.fluorescens PF08
HAMP結(jié)構(gòu)域是一個(gè)約50 個(gè)氨基酸的α-螺旋區(qū),存在于HK、腺嘌呤環(huán)化酶、甲基接受蛋白和磷酸酶中,主要功能可能是感應(yīng)與細(xì)菌細(xì)胞滲透相關(guān)的信號(hào)。PAS結(jié)構(gòu)域作為一種信號(hào)傳感器結(jié)構(gòu)域可通過(guò)相關(guān)輔助因子感應(yīng)外界氧、氧化還原電位和光的變化,參與調(diào)控細(xì)菌氧化還原反應(yīng);此外,AYG10156.1、AYG06111.1、AYG08460.1、AYG08660.1中除PAS結(jié)構(gòu)域外還含有PAC結(jié)構(gòu)域,PAC結(jié)構(gòu)域常與PAS結(jié)構(gòu)域結(jié)合形成保守的三維PAS折疊。HPT結(jié)構(gòu)域主要參與磷酸基團(tuán)的轉(zhuǎn)移反應(yīng)。PBPb是細(xì)菌周質(zhì)底物結(jié)合蛋白,通常與溶質(zhì)結(jié)合的性質(zhì)有關(guān)。PAC結(jié)構(gòu)域有助于三維PAS折疊形成。CHASE2結(jié)構(gòu)域是一個(gè)胞外信號(hào)感應(yīng)區(qū)域,存在于細(xì)菌信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路上游的各種跨膜受體中,但由其識(shí)別的環(huán)境因素目前尚不清楚。CheW結(jié)構(gòu)域存在于參與細(xì)菌趨化性調(diào)控的TCS中,參與調(diào)控細(xì)菌趨化性。GAF結(jié)構(gòu)域主要對(duì)環(huán)核苷酸結(jié)合發(fā)揮作用。除N端的功能結(jié)構(gòu)域外,部分HK的C端也存在結(jié)構(gòu)域,如HPT結(jié)構(gòu)域、CheW結(jié)構(gòu)域及所有融合HK均存在的REC結(jié)構(gòu)域(部分融合HK的REC結(jié)構(gòu)域位于N端),其中融合HK AYG10324.1中CheW結(jié)構(gòu)域和REC結(jié)構(gòu)域相鄰,該結(jié)構(gòu)域組成與有些細(xì)菌含有的一種雙結(jié)構(gòu)域融合蛋白CheV相似[16],因此推測(cè)其可能具有相似的功能,都是通過(guò)與趨化受體蛋白的相互作用來(lái)調(diào)節(jié)細(xì)菌趨化性。
RR可以通過(guò)與下游基因結(jié)合調(diào)控基因的表達(dá)[17]。利用SMART預(yù)測(cè)熒光假單胞菌PF08菌株中RR的結(jié)構(gòu)域組成,并對(duì)其進(jìn)行功能預(yù)測(cè)。根據(jù)結(jié)構(gòu)域的差異,PF08菌株中的RR蛋白可以分為15 類(lèi)(圖2),其中含有REC和Trans reg_C結(jié)構(gòu)域的RR蛋白最多,共24 個(gè);其次為含REC和HTH LUXR的蛋白,共19 個(gè),只含REC的蛋白16 個(gè),這3 種蛋白占總RR的70%以上。
圖2 PF08菌株中部分RR的結(jié)構(gòu)域組成Fig.2 Structural domains of part of response regulators in P.fluorescens PF08
位于N端的磷酸受體結(jié)構(gòu)域REC是所有RR蛋白所必需的(AYG07785.1、AYG09151.1、AYG06573.1的磷酸受體結(jié)構(gòu)域位于C端),此結(jié)構(gòu)域中含有一個(gè)保守的天冬氨酸殘基,可接收由對(duì)應(yīng)HK傳遞的磷酸基團(tuán)。此外,RR蛋白的C端一般還具有一個(gè)輸出結(jié)構(gòu)域(AYG07785.1、AYG09151.1、AYG06573.1的輸出結(jié)構(gòu)域位于N端)。PF08菌株的輸出結(jié)構(gòu)域主要包括DNA結(jié)合輸出域(AAA、HTH LUXR、Trans reg_C、LytTR)、RNA結(jié)合輸出域(ANTAR)、蛋白質(zhì)結(jié)合輸出域(CheW)和酶功能域(EAL、GGDEF、PP2C_SIG),不同輸出結(jié)構(gòu)域具有不同的生物學(xué)功能。如AAA輸出結(jié)構(gòu)域參與細(xì)胞膜融合、蛋白質(zhì)水解和DNA復(fù)制等多種細(xì)胞活動(dòng)。ANTAR發(fā)揮轉(zhuǎn)錄抗中止作用。CheW調(diào)控細(xì)菌趨化性。EAL輸出結(jié)構(gòu)域可以刺激第2信使環(huán)鳥(niǎo)苷二磷酸的降解,并且是二鳥(niǎo)苷磷酸二酯酶功能的一個(gè)很好的候補(bǔ)者,其與GGDEF結(jié)構(gòu)域共存時(shí)可能與細(xì)菌細(xì)胞表面黏附性有關(guān)。GGDEF參與信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),并可能催化環(huán)二鳥(niǎo)苷二磷酸的合成或水解。HTH LUXR可以作為群體感應(yīng)調(diào)控發(fā)光的轉(zhuǎn)錄激活因子;Trans reg_C可能在DNA結(jié)合中發(fā)揮作用。PP2C_SIG作為一個(gè)模塊存在于不同的結(jié)構(gòu)環(huán)境中,并通過(guò)靶向和調(diào)節(jié)亞基進(jìn)行調(diào)控。LytTR常存在于GC含量較少的革蘭氏陰性菌中,參與細(xì)胞的自溶調(diào)控。此外,CheY亞家族的RR蛋白無(wú)輸出結(jié)構(gòu)域,其可能通過(guò)其他方式發(fā)揮作用。
利用MEGA 7.0軟件采用鄰接法對(duì)熒光假單胞菌PF08菌株的HK和RR構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)生樹(shù)。從進(jìn)化關(guān)系看,HK共分為3 個(gè)聚簇(圖3a)。融合HK中除AYG07832.1、AYG07961.1、AYG08460.1、AYG08488.1、AYG09609.1和AYG10324.1外,其余19 個(gè)融合HK皆位于同一聚簇;除AYG05642.1外,其余經(jīng)典HK皆位于其余2 個(gè)聚簇。這表明典型HK和融合HK的親緣關(guān)系較遠(yuǎn),其行使不同的功能。與HK相比,RR在長(zhǎng)度和組成上都相對(duì)保守[18]。熒光假單胞菌PF08菌株的RR的系統(tǒng)發(fā)生樹(shù)共分為6 個(gè)聚簇,含有REC和Trans reg_C結(jié)構(gòu)域的RR白皆位于同一聚簇;除AYG06114.1外,含REC和HTH LUXR的RR蛋白皆位于相鄰的2 個(gè)聚簇;其他具有相同結(jié)構(gòu)域的蛋白也多位于同一聚簇(圖3b)。基因共同聚簇顯示了高度同源性,表明這些位于同一聚簇且結(jié)構(gòu)域相同的蛋白可能具有相近的功能。
圖3 HK(a)和RR(b)的蛋白進(jìn)化分析Fig.3 Phylogenetic analysis of histidine kinases (a) and response regulators (b) in P.fluorescens PF08
基于KEGG數(shù)據(jù)庫(kù),對(duì)熒光假單胞菌PF08菌株的39 對(duì)TCS進(jìn)行的同源性分析,并結(jié)合相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道對(duì)其功能作出預(yù)測(cè)。目前,KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)中TCS可分為OmpR、NarL、Spo、CitB、LytTR、NtrC、CheA、Cell cycle、Lux、LuxR和其他家族11 個(gè)亞家族。熒光假單胞菌PF08中25 對(duì)TCS分別來(lái)自于NtrC(KinB-AlgB、GlnL-GlnG、DctB-DctD)、OmpR(EnvZ-OmpR、CusS-CusR、TctE-TctD、KdpD-KdpE、QseC-QseB、PfeS-PfeR、ParS-ParR、PhoQ-PhoP、RstB-RstA、CreC-CreB、PhoR-PhoB)、CheA(CheA-CheYBV、RstB-RstA)、NarL(EvgS-EvgA)和其他家族(FlrBFlrC、AauS-AauR、RegB-RegA),此外,還有14 對(duì)TCS未在KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)中搜索到相關(guān)信息。
由表3可知,熒光假單胞菌PF08中TCS的功能主要包括參與營(yíng)養(yǎng)元素代謝,如調(diào)控海藻酸合成、酸性氨基酸的利用、氮調(diào)控、氧化還原反應(yīng)、磷酸鹽調(diào)控;參與生物體內(nèi)物質(zhì)運(yùn)輸,如檸檬酸轉(zhuǎn)運(yùn)、C4二羧酸轉(zhuǎn)運(yùn)、鉀鎂離子運(yùn)輸;調(diào)節(jié)細(xì)胞形態(tài)分化及應(yīng)對(duì)不利環(huán)境,如極性鞭毛合成、趨化性、群體感應(yīng)、滲透壓脅迫響應(yīng)、缺磷響應(yīng);與細(xì)胞抗性和毒力相關(guān),如銅離子抗性、耐酸和耐藥性、多黏菌素抗藥性、腸桿菌素依賴(lài)性鐵獲取。其中,由經(jīng)典HK與相應(yīng)RR組成的32 對(duì)TCS中有23 對(duì)的功能作出了預(yù)測(cè),而7 對(duì)由融合HK組成的TCS只有2 對(duì)發(fā)現(xiàn)了生物學(xué)功能,這可能是因?yàn)槿诤螲K同時(shí)具有HK的信號(hào)傳導(dǎo)結(jié)構(gòu)域和RR的信號(hào)接收結(jié)構(gòu)域,在感應(yīng)外界信號(hào)、傳導(dǎo)及接受信號(hào)過(guò)程中具有更加靈活的調(diào)控功能[38]。熒光假單胞菌之所以能成為冷藏水產(chǎn)品的優(yōu)勢(shì)腐敗菌,不僅得益于其超強(qiáng)的水解蛋白質(zhì)和脂肪能力,還來(lái)源于其應(yīng)對(duì)逆境時(shí)的多種生理機(jī)能。預(yù)測(cè)分析結(jié)果表明TCS可以調(diào)控?zé)晒饧賳伟鶳F08的多種生理生化過(guò)程。存在參與熒光假單胞菌PF08營(yíng)養(yǎng)元素代謝和生物體內(nèi)物質(zhì)運(yùn)輸?shù)腡CS,這對(duì)熒光假單胞菌生長(zhǎng)繁殖所需的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)攝取及能量利用十分重要。此外,部分TCS還可以調(diào)控?zé)晒饧賳伟鶳F08的細(xì)胞抗性和毒力及環(huán)境適應(yīng)性,這些調(diào)控通路對(duì)研究熒光假單胞菌的靶向控制十分重要。當(dāng)前對(duì)熒光假單胞菌腐敗機(jī)理研究最為廣泛的是群體感應(yīng),這是細(xì)菌之間信息交換的一種機(jī)制,依賴(lài)菌群密度調(diào)節(jié)細(xì)菌的許多生理功能,影響熒光假單胞菌的腐敗能力[39]。而本研究也發(fā)現(xiàn)了2 對(duì)與群體感應(yīng)有關(guān)的TCS,AYG07414.1/AYG07413.1和AYG08957.1/AYG08956.1。對(duì)TCS的功能預(yù)測(cè)有利于這些與熒光假單胞菌PF08腐敗機(jī)理有關(guān)的基因的進(jìn)一步的研究,同時(shí)為該腐敗菌的靶向控制提供新思路。
表3 熒光假單胞菌PF08的TCS功能預(yù)測(cè)Table 3 Functional prediction of TCSs of P.fluorescens PF08
本研究利用生物信息學(xué)方法在全基因組范圍內(nèi)系統(tǒng)分析了水產(chǎn)品熒光假單胞菌PF08菌株中TCS的數(shù)量、類(lèi)型及功能。熒光假單胞菌PF08菌株中共存在39 對(duì)TCS。雖然系統(tǒng)發(fā)育分析表明這些TCS在進(jìn)化上存在較近的親緣關(guān)系,但它們的結(jié)構(gòu)域組成呈現(xiàn)多樣化,是其功能多樣化的基礎(chǔ)。25 對(duì)TCS預(yù)測(cè)到生物學(xué)功能,主要為參與調(diào)控營(yíng)養(yǎng)元素代謝、生物體內(nèi)物質(zhì)運(yùn)輸、細(xì)胞形態(tài)分化、應(yīng)對(duì)不利環(huán)境及細(xì)胞抗性和毒力等,表明TCS在熒光假單胞菌的生存適應(yīng)過(guò)程中起到至關(guān)重要的作用。對(duì)于這些TCS在熒光假單胞菌中的調(diào)控機(jī)制仍需要通過(guò)實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步驗(yàn)證,特別是尚未獲得功能預(yù)測(cè)的TCS。本研究分析結(jié)果為進(jìn)一步探究熒光假單胞菌生存適應(yīng)及致腐機(jī)制提供了一定的參考,并且TCS可以作為一種有潛力的熒光假單胞菌的新抑制靶點(diǎn)。