劉 明,唐佳文,沙 爽,孟劍俠,程麗,李沖偉
(1黑龍江大學(xué)農(nóng)業(yè)微生物技術(shù)教育部工程研究中心,哈爾濱 150080;2黑龍江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,哈爾濱 150080)
α-亞麻酸(α-Linolenic acid,ALA)是人體神經(jīng)細(xì)胞[1-2]和大腦發(fā)育不可缺少的重要組成成分——二十碳五烯酸(EPA)和二十二碳六烯酸(DHA)的前體物質(zhì)[3],具有保護(hù)心肌損傷、控制膽固醇水平,減輕非酒精脂肪肝癥狀等許多重要生理作用[4],特別是DHA,俗稱“腦黃金”,是大腦和視神經(jīng)細(xì)胞的主要組成成分,能顯著提高嬰幼兒心理發(fā)育水平,對嬰幼兒神經(jīng)功能發(fā)育也有調(diào)節(jié)作用[5-6]。近幾年,隨著世界各國學(xué)者對α-亞麻酸研究的不斷深入,對α-亞麻酸純度和安全性提出了更高的要求,因此,獲取綠色天然高純度α-亞麻酸成為該研究領(lǐng)域的必然需求。
要獲得高純度α-亞麻酸,首先要把α-亞麻酸從植物中提取出來。目前,常用的提取方法有索氏抽提法[7-8]、冷榨法[9-10]、熱榨法[11-12]、超臨界 CO2萃取法[13-14]和水酶法[15-16]。這些提取方法各有利弊,通常根據(jù)不同的實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪x擇不同的提取方法。尋找高效的α-亞麻酸純化方法一直是國內(nèi)外學(xué)者關(guān)注的熱點(diǎn)問題。Lee等[17]利用低溫尿素包合法從紫蘇油中純化α-亞麻酸,其最佳條件下α-亞麻酸純度為81.75%,但該法存在有機(jī)試劑殘留問題;Wang等[18]探究了尿素包合與β-環(huán)糊精的4種不同組合方法對蠶蛹油中α-亞麻酸的富集效果,結(jié)果表明尿素與β-環(huán)糊精的組合效果最佳,純度為67.4%;雍梁敏等[19]運(yùn)用冷凍結(jié)晶法從橡膠籽油中提取純化α-亞麻酸,含量為45.41%,純化效率較低;陳新新等[20]通過銀離子絡(luò)合萃取和尿素包合相耦合的方式從紫蘇油中提取純化α-亞麻酸,純度能達(dá)到99.08%,但偶合法對操作技術(shù)要求高,且生產(chǎn)成本消耗大。分子蒸餾技術(shù)是近十幾年發(fā)展起來的非均相系分離方法,可提取純化維生素E[21]、不飽和脂肪酸[22]、香精和香料[23]等易揮發(fā)或熱敏性物質(zhì),脫除食品中的有害物質(zhì),如:苯并芘、塑化劑以及不良風(fēng)味物質(zhì)[24-25]。至今尚未發(fā)現(xiàn)使用分子蒸餾技術(shù)純化紫蘇油α-亞麻酸的相關(guān)報道。本文通過油脂評價指標(biāo)篩選了紫蘇油α-亞麻酸的提取方法,考察蒸餾溫度、蒸餾壓力、刮板轉(zhuǎn)速和進(jìn)料速度4個因素對分子蒸餾技術(shù)純化α-亞麻酸效果的影響,從而探討分子蒸餾技術(shù)純化α-亞麻酸的可行性,為高純度α-亞麻酸的生產(chǎn)提供新的理論方法和實(shí)踐依據(jù)。
紫蘇籽,購自黑龍江樺南農(nóng)盛園食品有限公司;α-亞麻酸標(biāo)準(zhǔn)品,購自北京百奧萊博科技有限公司,純度≥98%,20 mg/支。試驗(yàn)在黑龍江大學(xué)教育部農(nóng)業(yè)微生物技術(shù)工程中心,于2019年4—6月份進(jìn)行。
VKL70-5S標(biāo)準(zhǔn)型分子蒸餾裝置,德國瑞達(dá)有限公司生產(chǎn);7890A氣相色譜儀器,美國Agilent公司生產(chǎn)。
1.3.1 紫蘇籽油提取方法的篩選 以獲取高質(zhì)量α-亞麻酸為目的,分別利用索氏抽提法、冷榨法、熱榨法和超臨界CO2萃取法提取紫蘇油,選擇提取率、碘價、酸值、皂化值和折光率5項(xiàng)指標(biāo),對油脂的不飽和水平、游離脂肪酸或酸敗水平以及油脂的純度進(jìn)行評估,確定紫蘇油提取的最佳方法。
(1)提取率的測定方法
按公式(1)計算提取率,每個實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
式中:m1——紫蘇油質(zhì)量,g:m2——紫蘇籽質(zhì)量,g。
(2)碘價的測定方法
稱取0.10~0.50 g紫蘇油樣品,加20 mL乙酸和環(huán)乙烷等比例混合溶液和25 mL乙酸溶液(含一氯化碘),在黑暗不透光處放置2 h。同時,空白對照不加入紫蘇油樣品。避光反應(yīng)結(jié)束后,向錐形瓶中加入KI溶液,以Na2S2O3作為標(biāo)準(zhǔn)滴定液,每個實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
碘值的計算見公式(2)。
式中:C——Na2S2O3標(biāo)準(zhǔn)滴定液濃度,mol/L:V0——空白試驗(yàn)組消耗Na2S2O3標(biāo)準(zhǔn)滴定液的體積,mL;V1——樣品消耗Na2S2O3標(biāo)準(zhǔn)滴定液的體積,mL;m——油品質(zhì)量,g。
(3)酸值的測定
稱取5.0 g紫蘇油樣品于100 mL錐形瓶,加入30 mL 95%乙醇,震蕩提取1 h。提取液轉(zhuǎn)移至50 mL康寧管中,2000 r/min離心5 min,從上清液中取20 mL于錐形瓶中,加入3~4滴酚酞溶液,以0.01 mol/L的氫氧化鉀-乙醇滴定液滴定至微紅色,且保持30 s不褪色,記下氫氧化鉀-乙醇滴定液的消耗量。以95%乙醇作空白對照,每個實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
樣品酸值(S)的計算見公式(3)。
式中:S——樣品酸值,mg/100g;V0——空白試樣消耗的氫氧化鉀-乙醇滴定液體積,mL;V1——樣品消耗氫氧化鉀-乙醇滴定液體積,mL;C——?dú)溲趸?乙醇滴定液濃度,mol/L;m——油品質(zhì)量,g;ω——每百克原料中水分含量,g。
(4)皂化值的測定
在錐形瓶放入2 g油品,加入5粒沸石和25.0 mL氫氧化鉀-乙醇溶液,連接好裝置后煮沸,持續(xù)沸騰1 h后向其中添入3~4滴酚酞,以HCL作為標(biāo)準(zhǔn)滴定液,每個實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
皂化值的計算見公式(4)。
式中:V0——空白試樣消耗HCl標(biāo)準(zhǔn)滴定液的體積,mL;V1——樣品消耗的HCl標(biāo)準(zhǔn)滴定液的體積,mL;C——HCl標(biāo)準(zhǔn)滴定液的濃度,mol/L;m——油品質(zhì)量,g。
(5)折光率的測定
首先用二級水校正折光儀,在棱鏡上滴兩滴樣品,之后將棱鏡合上并旋緊,調(diào)節(jié)反光鏡、補(bǔ)償棱鏡旋鈕,再調(diào)節(jié)棱鏡組旋鈕,最后得到折光率值,每個實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.3.2α-亞麻酸測定方法 稱取0.5 g紫蘇油于25 mL容量瓶中,加5 mL正己烷進(jìn)行溶解,溶解后定容,手動搖勻。取2.0 mL上述溶液至10 mL指形瓶中,加入0.5 mol/L氫氧化鉀-甲醇溶液2.0 mL,混合振蕩5 min,靜置5 min,加入6 mL超純水定容,上下顛倒混勻30 s,靜置,保留下層溶液,用超純水少量、多次進(jìn)行洗滌,直至中性,保留正己烷層,過濾后上機(jī)。
氣相色譜條件:色譜柱:HP-INNOWAX,柱溫180℃,檢測器溫度230℃,程序升溫:初始溫度100℃,保持13 min,100~180℃,10℃/min,保持 20 min,180~200℃,1℃/min,保持20 min,200~230℃,4℃/min,保持10.5 min;進(jìn)樣量1.0 μL。采用面積歸一法確定α-亞麻酸相對百分含量。
1.3.3 基于分子蒸餾技術(shù)α-亞麻酸純化條件優(yōu)化
(1)進(jìn)料速度對α-亞麻酸純度的影響
在蒸餾溫度200℃、蒸餾壓力0.05 mbar、刮板轉(zhuǎn)速375 r/min條件下,考察0.5、1.0、1.5、2、2.5 d/min不同進(jìn)料速度對α-亞麻酸純度的影響,每個樣品重復(fù)3次[26]。
(2)蒸餾溫度對α-亞麻酸純度的影響
在進(jìn)料速度1.0 d/min、蒸餾壓力0.05 mbar、刮板轉(zhuǎn)速375 r/min條件下,考察180、190、200、210、220℃不同蒸餾溫度對α-亞麻酸純度的影響,每個樣品重復(fù)3次。
(3)蒸餾壓力對α-亞麻酸純度的影響
在蒸餾溫度200℃、進(jìn)料速度1.0 d/min、刮板轉(zhuǎn)速375 r/min條件下,考察0.03、0.04、0.05、0.06、0.07 mbar不同蒸餾壓力對α-亞麻酸純度的影響,每個樣品重復(fù)3次。
(4)刮板轉(zhuǎn)速對α-亞麻酸純度的影響
在蒸餾溫度200℃、蒸餾壓力0.05 mbar、進(jìn)料速度1.0 d/min條件下,考察325、350、375、400、425 r/min不同刮板轉(zhuǎn)速對α-亞麻酸純度的影響,每個樣品重復(fù)3次。
(5)α-亞麻酸純化的正交試驗(yàn)
在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,設(shè)定蒸餾溫度、蒸餾壓力、刮板轉(zhuǎn)速和進(jìn)料速度4個因素,每個因素3個水平,采用L9(34)的正交試驗(yàn)方法,優(yōu)化α-亞麻酸的純化條件,正交試驗(yàn)設(shè)計如表1所示。
表1 正交試驗(yàn)因素水平表
利用SPSS 21.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用單因素方差分析,利用t檢驗(yàn)法進(jìn)行差異顯著性分析,以P<0.05臨界值表征兩組數(shù)據(jù)間具有顯著差異。
利用索氏抽提法、冷榨法、熱榨法、超臨界CO2萃取法提取紫蘇籽油,測定紫蘇籽油的碘值、酸值、皂化值、折光率,計算提取率和α-亞麻酸純度,結(jié)果如表2所示,索氏抽提法的提取率和酸值均顯著高于其他3種提取方法(P<0.05),超臨界CO2萃取法提取油脂的碘值、皂化值以及α-亞麻酸純度3項(xiàng)指標(biāo)的檢測結(jié)果均顯著高于其他3種提取方法(P<0.05),折光率指標(biāo)與冷榨法和索氏抽提法無顯著差異(P>0.05)。綜合比較分析,采用超臨界CO2萃取法提取紫蘇油。
表2 不同提取方法紫蘇籽油各項(xiàng)指標(biāo)
2.1.1 進(jìn)料速度對α-亞麻酸純度的影響 在蒸餾溫度200℃、蒸餾壓力0.05 mbar、刮板轉(zhuǎn)速375 r/min條件下,考察進(jìn)料速度對α-亞麻酸純度的影響。結(jié)果如圖1所示,在進(jìn)料速度1.0 d/min時,α-亞麻酸純度最高,隨著進(jìn)料速度提高,α-亞麻酸純度開始降低,因此,進(jìn)料速度選擇1.0 d/min。
圖1 進(jìn)料速度對α-亞麻酸純度的影響
2.1.2 蒸餾溫度對α-亞麻酸純度的影響 在進(jìn)料速度1.0 d/min、蒸餾壓力0.05 mbar、刮板轉(zhuǎn)速375 r/min條件下,考察蒸餾溫度對α-亞麻酸純度的影響。結(jié)果如圖2所示,在蒸餾溫度210℃時,α-亞麻酸純度明顯高于其他組,因此,蒸餾溫度選擇210℃。
圖2 蒸餾溫度對α-亞麻酸純度的影響
2.1.3 蒸餾壓力對α-亞麻酸純度的影響 在蒸餾溫度200℃、進(jìn)料速度1.0 d/min、刮板轉(zhuǎn)速375 r/min條件下,考察蒸餾壓力對α-亞麻酸純度的影響。結(jié)果如圖3所示,在蒸餾壓力0.06 mbar,α-亞麻酸純度達(dá)到最大值,因此,蒸餾壓力選擇0.06 mbar。
圖3 蒸餾壓力對α-亞麻酸純度的影響
2.1.4 刮板轉(zhuǎn)速對α-亞麻酸純度的影響 在蒸餾溫度200℃、蒸餾壓力0.05 mbar、進(jìn)料速度1.0 d/min條件下,考察刮板轉(zhuǎn)速對α-亞麻酸純度的影響。結(jié)果如圖4所示,在刮板轉(zhuǎn)速400 r/min時,α-亞麻酸純度達(dá)到最大值。因此,刮板轉(zhuǎn)速選擇400 r/min。
圖4 刮板轉(zhuǎn)速對α-亞麻酸純度的影響
2.1.5α-亞麻酸純化正交試驗(yàn)結(jié)果 在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,設(shè)計4因素3水平正交試驗(yàn),對各參數(shù)條件進(jìn)行整體優(yōu)化,結(jié)果如表3所示。
由表3和4可知,α-亞麻酸提取純化過程中,4個單因素對α-亞麻酸純度影響的大小為A蒸餾溫度>B蒸餾壓力>D進(jìn)料速度>C刮板轉(zhuǎn)速,其中A和B效果極顯著(P<0.01),D效果顯著(P<0.05)。通過比較k值,確定最優(yōu)組合A3B3C1D2,即蒸餾溫度220℃,蒸餾壓力0.07 mbar,刮板轉(zhuǎn)速 375 r/min,進(jìn)料速度 1.0 d/min。驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,α-亞麻酸純度為97.42%。因此,A3B3C1D2為高純度α-亞麻酸的最佳純化條件。
表3 α-亞麻酸純化正交試驗(yàn)分析表
表4 α-亞麻酸純化正交試驗(yàn)方差分析
本試驗(yàn)比較了索氏抽提法、冷榨法、熱榨法和超臨界CO2萃取法提取紫蘇油的提取率、碘值、酸值和折光率,結(jié)果表明,索氏抽提法的提取率和酸值均顯著高于其他3種提取方法(P<0.05),酸值高說明紫蘇油中游離脂肪酸的含量高或酸敗程度大,不利于后續(xù)α-亞麻酸的提取。超臨界CO2萃取法提取油脂的碘值、皂化值以及α-亞麻酸純度均顯著高于其他3種提取方法(P<0.05),折光率(除熱榨法外)無顯著差異(P>0.05),盡管提取率相對低一些,但其他指標(biāo)更好,且無有機(jī)溶劑殘留。因此,綜合比較,采用超臨界CO2萃取法提取紫蘇油。桂靜芬等[27]利用響應(yīng)面法對冷榨法提取紫蘇油的工藝進(jìn)行優(yōu)化,最佳條件下紫蘇油得率為34.28%,與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果基本一致。Jung等[28]實(shí)驗(yàn)表明,紫蘇籽油的提取率,正己烷(41.76%)>超臨界CO2萃取法(39.56%)>機(jī)械壓榨法(31.74%),超臨界CO2萃取法的提取率高于本實(shí)驗(yàn)結(jié)果,與有機(jī)溶劑法相當(dāng)。王羚等[29]通過比較超臨界CO2萃取法和有機(jī)試劑法提取的油茶餅中油脂的酸價、過氧化值、皂化值等指標(biāo),證明超臨界CO2萃取油脂品質(zhì)更好,與本試驗(yàn)結(jié)論一致。與前人結(jié)果對比可知,將紫蘇籽進(jìn)行適當(dāng)預(yù)處理,如:烘烤和超聲波破碎,或許可以提高油脂的提取率,超臨界CO2萃取法提取工藝還有待進(jìn)一步優(yōu)化。
本試驗(yàn)以蒸餾溫度、蒸餾壓力、刮板轉(zhuǎn)速和進(jìn)料速度為考察因素,通過正交試驗(yàn)優(yōu)化分子蒸餾技術(shù)的純化效果。結(jié)果表明,最佳條件下α-亞麻酸純度達(dá)到97.42%,分子蒸餾技術(shù)提取紫蘇油中α-亞麻酸的效果還是相當(dāng)不錯。陳樂清[30]等利用分子蒸餾技術(shù)純化亞麻籽油中α-亞麻酸,以預(yù)熱溫度、蒸餾溫度、進(jìn)料速度和刮板轉(zhuǎn)速為優(yōu)化因素,最佳條件下α-亞麻酸純度為80.27%。劉金菊[31]等利用分子蒸餾技術(shù)純化亞麻籽油α-亞麻酸,以蒸餾壓力、蒸餾溫度、刮板轉(zhuǎn)速和進(jìn)料速度為優(yōu)化因素,最佳條件下α-亞麻酸純度81.15%。根據(jù)以上結(jié)果推測,α-亞麻酸的原料來源和提取工藝對純化結(jié)果影響也較大。
除了分子蒸餾技術(shù)之外,α-亞麻酸純化方法還可以有很多,例如:劉旭等[32]利用尿素包合法從紫蘇油中純化α-亞麻酸,最佳條件下純度達(dá)到77.23%。徐春明等[33]利用β-環(huán)糊精包和法純化α-亞麻酸,最佳條件下純度達(dá)到77.42%。相比較而言,分子蒸餾技術(shù)得到的α-亞麻酸純度更高。
結(jié)合α-亞麻酸純度和安全性考慮,最終采用超臨界CO2萃取法提取紫蘇油,并以此作為分子蒸餾的原料。通過單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn),確定了基于分子蒸餾技術(shù)紫蘇油α-亞麻酸純化的最佳工藝為:蒸餾溫度220℃,蒸餾壓力0.07 mbar,刮板轉(zhuǎn)速375 r/min,進(jìn)料速度1.0 d/min,在此條件下α-亞麻酸純度為97.42%,這表明分子蒸餾技術(shù)在獲取高純度α-亞麻酸方面具有研究意義。未來的研究中,可對紫蘇籽進(jìn)行適當(dāng)?shù)念A(yù)處理,在保證油品質(zhì)量的前提下,進(jìn)一步提升紫蘇油的提取率。
紫蘇籽含有45%~50%紫蘇油,紫蘇油含有60%~65%α-亞麻酸,利用超臨界萃取技術(shù)和分子蒸餾技術(shù),不僅能夠獲得高純度α-亞麻酸,而且α-亞麻酸質(zhì)量好,安全無污染。隨著人們生活質(zhì)量和健康水平的不斷提高,α-亞麻酸的需求量和質(zhì)量逐步上升。因此,采用分子蒸餾技術(shù)獲取綠色天然高純度α-亞麻酸的方法具有廣闊的市場應(yīng)用前景。