蘇曉明
(福建省產(chǎn)品質(zhì)量檢驗(yàn)研究院,福建 福州 350002)
茶在我國(guó)源遠(yuǎn)流長(zhǎng),被譽(yù)為世界三大重要加工飲品之一,深受國(guó)內(nèi)外消費(fèi)群體的青睞。隨著茶產(chǎn)品的普及以及產(chǎn)量的日益增加,茶葉中的多氯聯(lián)苯(Polychlorinated biphenyls,PCBs)等持久性有機(jī)污染物已成為當(dāng)下不可忽視且亟需解決的重要問(wèn)題[1,2]。
多氯聯(lián)苯又稱氯化聯(lián)苯,在化學(xué)組成上聯(lián)苯分子上的氫原子被氯原子取代而形成的氯代芳烴類混合[2]。2001年瑞典斯德哥爾摩通過(guò)了《關(guān)于持久性有機(jī)污染物的斯德哥爾摩公約》,PCBs成為首批被列入該公約的受控物質(zhì)之一[3]。PCBs難溶于水、易溶于有機(jī)溶劑,具有高毒性、積聚性、遷移性等特性,易在生物體內(nèi)富集而產(chǎn)生生物放大效應(yīng),進(jìn)入人體后會(huì)影響人體的發(fā)育、神經(jīng)系統(tǒng)和免疫系統(tǒng),對(duì)人體健康和生態(tài)系統(tǒng)具有嚴(yán)重的威脅[4]。目前,對(duì)于多氯聯(lián)苯的研究主要針對(duì)水體、工業(yè)產(chǎn)品、土壤、沉積物等,而茶葉中PCBs殘留量的分析卻鮮有報(bào)道,因此開(kāi)發(fā)高效、快速、準(zhǔn)確的檢測(cè)方法成為眾多學(xué)者關(guān)注的重點(diǎn)。
目前PCBs的檢測(cè)方法主要有氣相色譜-電子捕獲檢測(cè)器法(GC-ECD)和氣相色譜-質(zhì)譜法(GCMS)[1,5],前處理技術(shù)通常采用加速溶劑萃取、索氏提取等凈化方法,由于PCBs化合物種類繁多、部分樣品基質(zhì)復(fù)雜,操作繁瑣,易造成多氯聯(lián)苯定性定量不準(zhǔn)確。氣相色譜-三重四級(jí)桿串聯(lián)質(zhì)譜法(gas chromatography-tandem mass spectrometry,GCMS/MS)[6]是近年來(lái)迅速發(fā)展的檢測(cè)技術(shù),它采用定時(shí)SRM數(shù)據(jù)采集功能,能同時(shí)完成組分分離和結(jié)構(gòu)分析,具有準(zhǔn)確可靠、分離效率高、分析速度快且能縮短檢測(cè)周期、降低成本等優(yōu)點(diǎn)。本研究以鐵觀音茶葉樣品作為研究對(duì)象,首次將氣相色譜-三重四級(jí)桿串聯(lián)質(zhì)譜技術(shù)應(yīng)用于茶葉中18種PCBs的分析檢測(cè),為茶葉中PCBs的定量分析和快速監(jiān)測(cè)、以及標(biāo)準(zhǔn)方法的制定提供技術(shù)支持。
試驗(yàn)所用主要儀器設(shè)備詳見(jiàn)表1。
表1 實(shí)驗(yàn)儀器設(shè)備一覽表
實(shí)驗(yàn)所用試劑與材料為:無(wú)水硫酸鎂(分析純,太倉(cāng)滬試試劑有限公司);正己烷(分析純,經(jīng)重蒸制得);二氯甲烷(分析純,經(jīng)重蒸制得);N-丙基乙二胺(PSA,粒度4μm,GL Sciences InC);MIPs/SPE(CNWBOND ,1 g/10 mL,德國(guó)CNW公司);多壁碳納米管(MWCNTS,粒度5 nm,Agela Technologies)。
實(shí)驗(yàn)用水均為Milli-Q超純水器純化水。18種PCBs標(biāo)準(zhǔn)溶液質(zhì)量濃度均為100μg/mL(購(gòu)于美國(guó)Accustandard公司),基本信息詳見(jiàn)表2。
標(biāo)準(zhǔn)溶液及標(biāo)準(zhǔn)曲線配制:
標(biāo)準(zhǔn)中間液:取0.20 mL多氯聯(lián)苯標(biāo)準(zhǔn)品混合物于10 mL容量瓶中,用正己烷定容至10 mL,充分搖勻,配制成18種PCBs標(biāo)準(zhǔn)中間液,-20 ℃冰箱中保存。
標(biāo)準(zhǔn)工作液:取2.50 mL標(biāo)準(zhǔn)中間液于10 mL容量瓶中,用正己烷定容至10 mL,充分搖勻,配制成0.50μg/mL的PCBs標(biāo)準(zhǔn)工作液;使用逐級(jí)稀釋的方法,配制成濃度為0.001、0.002、0.01、0.05、0.5μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)使用液,于4~8 ℃冰箱中保存待用。
1.3.1 樣品提取
取2.00 g粉碎均勻的茶葉粉末,加入1.0 g無(wú)水Na2SO4,使用20 mL正己烷-丙酮(9:1,v/v)進(jìn)行超聲提取20 min,渦旋混勻,而后離心5 min,轉(zhuǎn)速為10000 r/min,取上清液于試管中,氮吹濃縮近干,正己烷定容至1 mL,待凈化。
1.3.2 提取液凈化
提取液的凈化采用CNWBOND分子印跡柱,依次用5 mL的二氯甲烷和正己烷對(duì)柱子進(jìn)行活化,而后將待凈化液轉(zhuǎn)移至活化后的分子印跡柱中,待液面降至柱床時(shí),用6 mL正己烷淋洗柱子,流出液用氮吹濃縮至約2 mL后加入QuEchERS凈化包(0.15 g MWCNTS、0.15 g PSA、0.15 g無(wú)水硫酸鎂),攪拌均勻,而后離心5 min,轉(zhuǎn)速為10000 r/min。再用6 mL二氯甲烷洗脫上述分子印跡柱,收集洗脫液與QuEchERS凈化后溶液合并混勻,氮吹濃縮近干,最后用正己烷定容至2.0 mL,過(guò)0.22 μm濾膜上機(jī)測(cè)試。
1.4.1 色譜條件
色譜柱:DB-5ms(30 m×250 μm×0.25 μm);進(jìn)樣方式:不分流進(jìn)樣;色譜柱流量:1.0 mL/min;壓力(恒壓):8.0013 psi;進(jìn)樣口溫度:250 ℃;載氣:氦氣(純度>99.999%);進(jìn)樣量:1.0 μL。
1.4.2 質(zhì)譜條件
離子源:電子轟擊離子源(EI);碰撞氣:氮?dú)猓兌龋?9.999%);離子源溫度:280 ℃;數(shù)據(jù)采集模式:MRM;傳輸線溫度:290 ℃;電離能量:70 eV ;溶劑延遲時(shí)間:4 min;18種PCBs的MS/MS分析參數(shù)見(jiàn)表3。
表3 18種PCBs的保留時(shí)間、離子對(duì)信息和碰撞電壓
2.1.1 提取溶劑
為確定最佳的提取溶劑,以鐵觀音茶葉為基質(zhì),在0.05 mg/kg的加標(biāo)水平下系統(tǒng)考查正己烷、甲苯、二氯甲烷、正己烷-丙酮(9∶1,v/v)和正己烷-丙酮(1∶1,v/v)5種提取劑對(duì)18種PCBs目標(biāo)物提取效果的影響。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果(表4)表明,對(duì)于單一提取劑,正己烷相對(duì)其他兩種提取劑具有更高的提取率;對(duì)于混合提取劑,正己烷-丙酮(9∶1,v/v)、正己烷-丙酮(1∶1,v/v)二者的平均回收率相差不大,但均優(yōu)于直接采用正己烷時(shí)的提取效果。由于正己烷-丙酮(1∶1,v/v)萃取液中含有大量色素類雜質(zhì),因此,選擇正己烷-丙酮(9∶1,v/v)混合液作為本試驗(yàn)的提取劑。
表4 提取溶劑對(duì)18種PCBs 回收率的影響
2.1.2 提取方式
本實(shí)驗(yàn)以鐵觀音樣品為基質(zhì),采用超聲提取法進(jìn)行前處理,考察不同超聲提取時(shí)間(5、10、20、30 min)對(duì)目標(biāo)回收率的差異。結(jié)果表明,超聲提取時(shí)間由5 min增加至10、20、30 min時(shí),18種多氯聯(lián)苯的回收率逐漸增大。超聲時(shí)間為10 min時(shí),18種PCBs的回收率介于56%~75%之間;超聲時(shí)間為20 min時(shí)增加至90%~103%,超聲時(shí)間為30 min時(shí),回收率介于88%~106%之間,該回收率與超聲20 min所得結(jié)果并無(wú)較大差異,故20 min為最優(yōu)超聲提取時(shí)間。
此外,在上述實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)也比較了不同超聲溫度(60、70、80、90、100 ℃)下,鐵觀音樣品的加標(biāo)回收率。結(jié)果如圖1所示,超聲溫度為70 ℃和80 ℃時(shí),部分高沸點(diǎn)PCBs的回收率相對(duì)較;超聲溫度為100 ℃和90 ℃時(shí),大部分多氯聯(lián)苯的回收率相對(duì)較高,因此本試驗(yàn)最終選取100 ℃的超聲處理溫度。
圖1 超聲溫度對(duì)18種PCBs 回收率的影響
2.1.3 QuEchERs凈化條件
為保證儀器檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確性,需使用凈化劑去除樣品中的色素、兒茶素、茶多酚等干擾雜質(zhì)。常用的凈化劑有C18、PSA[7]、MWCNTS[8]、Florisil[9]等,其中C18能吸附非極性物質(zhì),去除少量色素、甾醇和脂肪等物質(zhì);PSA能去除樣品中的有機(jī)酸、茶多酚和兒茶素類物質(zhì);MWCNTS對(duì)色素的吸附效果最佳,而采用其他凈化填料凈化后,溶液均有一定顏色。因此本試驗(yàn)選擇PSA、C18、MWCNTS為凈化劑,按照1.3節(jié)條件處理鐵觀音樣品,考察了0.20 mg/kg水平加標(biāo)濃度下的凈化效果,實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),單獨(dú)采用C18凈化劑時(shí),PCB28、PCB52兩個(gè)化合物的吸附比較嚴(yán)重,不予采用。
為保證18種多氯聯(lián)苯的回收率以及凈化效果,對(duì)吸附劑的用量進(jìn)行探究。在上述實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,實(shí)驗(yàn)將PSA、MWCNTS混合使用,以加標(biāo)水平為0.20 mg/kg的鐵觀音為基質(zhì),考察吸附劑用量(0.10 g PSA+0.10 g MWCNTS、0.10 g PSA+0.15 g MWCNTS、0.15 g PSA+0.10 g MWCNTS、0.15 g PSA+0.15 g MWCNTS)對(duì)18種PCBs回收率的影響。結(jié)果如圖2所示,當(dāng)以0.15 g PSA+0.15 g MWCNTS為凈化劑時(shí),18種多氯聯(lián)苯的回收率在85.4%~105.3%之間,凈化效果最佳。
圖2 不同的凈化劑用量對(duì)18種PCBs 回收率的影響
2.2.1 初始柱溫、升溫速率優(yōu)化的選擇
由于多氯聯(lián)苯分子中的氫原子被氯原子取代的方式及數(shù)目不同,理化性質(zhì)尤其是沸點(diǎn)跨度大,色譜峰形和響應(yīng)狀況差異明顯。過(guò)低的初始柱溫,將使低沸點(diǎn)組分出峰過(guò)遲,峰形拖尾,從而影響之后的組分出峰;程序升溫速度太慢,沸點(diǎn)高的組分出峰容易延遲,峰形擴(kuò)展嚴(yán)重。
實(shí)驗(yàn)采用DB-5ms色譜柱,通過(guò)下列兩組條件(均為程序升溫),考察升溫程序?qū)悠飞V分離的影響。條件A:初始溫度60 ℃,保持1 min,而后以40 ℃/min升溫至170 ℃,保持1 min;最后以10 ℃/min升溫到310 ℃,保持5 min。條件B:初始溫度為40 ℃,保持5 min,以40 ℃/min升溫至180 ℃,保持1 min;最后以15 ℃/min升至280 ℃,保持5 min。條件A和條件B兩者均得到良好的分離度,但色譜峰的峰型、峰高響應(yīng)值存在較明顯的差異,而條件A得到的色譜峰型、峰高響應(yīng)明顯優(yōu)于條件B,因此本實(shí)驗(yàn)采用條件A作為試驗(yàn)的色譜條件。
2.2.2 氣相色譜質(zhì)譜條件的優(yōu)化
為獲得質(zhì)量數(shù)較大、豐度較高的特征離子來(lái)作為目標(biāo)離子的母離子,需將目標(biāo)化合物進(jìn)行全掃描。MRM模式相比于SIM模式具有靈敏度高、專屬性好、抗干擾能力強(qiáng)等特點(diǎn),是目前最靈敏的MS模式,尤其適用于持久性有機(jī)污染物的檢測(cè),且MRM模式能夠有效提高多種多氯聯(lián)苯的分辨率,而SIM模式中存在相同的掃描離子,這對(duì)于多種持久性有機(jī)污染物的定性/定量檢測(cè)帶來(lái)困擾,因此本研究采用MRM采集模式。
在2.2.1優(yōu)化的色譜條件下,采用GC-MS/MS全掃描方式,對(duì)目標(biāo)化合物進(jìn)行分析,18種PCBs均得到了良好的分離,其總離子流色譜圖如圖3所示。
圖3 18種PCBs混合標(biāo)準(zhǔn)溶液的總離子流圖
2.2.3 基質(zhì)效應(yīng)
對(duì)于痕量檢測(cè)來(lái)說(shuō),基質(zhì)效應(yīng)是定量分析中必須考慮的問(wèn)題。樣品溶液中其他組分改變了目標(biāo)物的響應(yīng)值,從而達(dá)到基質(zhì)抑制或增強(qiáng)的效應(yīng)稱為基質(zhì)效應(yīng)[2]。評(píng)定基質(zhì)抑制或增強(qiáng)的主要因素為基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率和純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)曲線斜率的比值。當(dāng)比值小于0.9時(shí),為基質(zhì)抑制效應(yīng);當(dāng)比值介于0.9~1.1之間時(shí),基質(zhì)效應(yīng)可以忽略;當(dāng)比值大于1.1時(shí),為基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng)[10]。以空白鐵觀音樣品來(lái)探究茶葉中PCBs的基質(zhì)效應(yīng)(見(jiàn)表5),其中化合物PCB-189表現(xiàn)出一定程度的基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng),其余組分的斜率比在0.93~1.09之間,基質(zhì)效應(yīng)可忽略。因此試驗(yàn)采用基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行定量,可補(bǔ)償基質(zhì)效應(yīng)對(duì)試驗(yàn)結(jié)果的影響。
2.3.1 線性范圍、檢出限和定量限
選取已知空白鐵觀音樣品采用1.3節(jié)的方法進(jìn)行處理,制得基質(zhì)提取液后,用逐級(jí)稀釋的方法制備與1.2節(jié)濃度一致的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)系列溶液,分別測(cè)定。以每種PCBs的定量離子對(duì)的峰面積(y)為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度(x,μg/L)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果見(jiàn)表5。檢測(cè)結(jié)果顯示樣品中的PCBs在各自線性范圍內(nèi)均呈良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)R2≥0.999,檢出限為0.1~0.7μg/kg,定量限為0.4~2.3μg/kg,滿足分析需求。
表5 18種多氯聯(lián)苯的線性關(guān)系、檢出限、定量限和基質(zhì)效應(yīng)
2.3.2 回收率及精密度
以鐵觀音茶葉為基質(zhì),在探索最佳的試驗(yàn)條件下進(jìn)行加標(biāo)回收試驗(yàn),添加水平為低、中、高(10、100、500 mg/kg)3個(gè)水平濃度,每個(gè)水平重復(fù)測(cè)定6次(實(shí)驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表6)。18種PCBs在3個(gè)不同加標(biāo)水平下的回收率為83.9%~104.3%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為0.3%~4.1%,表明該方法滿足分析要求,適用于茶葉中18種PCBs的定量分析。
表6 鐵觀音在不同加標(biāo)水平下18種PCBs的回收率和精密度
本研究選取網(wǎng)售及市售的38個(gè)茶葉樣品,按照前述優(yōu)化后的方法對(duì)18種PCBs進(jìn)行的測(cè)定,所有樣品均未檢出(低于檢測(cè)限),表明鐵觀音茶葉樣品中多氯聯(lián)殘留的風(fēng)險(xiǎn)相對(duì)較低。
本研究通過(guò)優(yōu)化氣相色譜、質(zhì)譜等測(cè)試參數(shù)建立一種茶葉中18種PCBs的GC-MS/MS法。與傳統(tǒng)的氣相色譜法、氣相色譜質(zhì)譜法相比,該方法具有靈敏度高、定量準(zhǔn)確、操作簡(jiǎn)便、分析成本低等特點(diǎn),能滿足檢驗(yàn)部門(mén)對(duì)茶葉中18種PCBs殘留量的快速測(cè)定需求,對(duì)增強(qiáng)我省茶葉綜合競(jìng)爭(zhēng)力以及方法標(biāo)準(zhǔn)創(chuàng)新工作具有十分重要的意義。