董秋月,吳立春,劉妍喬,何進(jìn)偉△
1.四川省樂山市市中區(qū)腫瘤醫(yī)院檢驗(yàn)科,四川樂山 614000;2.四川省腫瘤醫(yī)院檢驗(yàn)科,四川成都 610041
2020年全球女性乳腺癌新發(fā)病例2 260 000例,死亡病例680 000例,已超越肺癌成為全球第一大癌癥[1-2]。乳腺癌病例發(fā)現(xiàn)時(shí)多數(shù)已經(jīng)是中晚期,且復(fù)發(fā)率高、五年生存期短,給患者及其家庭帶來巨大的經(jīng)濟(jì)壓力和精神負(fù)擔(dān)[3-4]。因此,尋找高效、低毒的抗乳腺癌藥物是當(dāng)前亟待解決的重大課題。
干漆是我國傳統(tǒng)中藥之一。近年研究顯示,干漆乙醇提取物可抑制乳腺癌實(shí)體腫瘤生長(zhǎng)及其相關(guān)的肺轉(zhuǎn)移[5],但其抗腫瘤機(jī)制目前尚未完全闡明。微小RNA(miR)-29b是一種抑癌基因,與肝癌、膽管癌、結(jié)直腸癌、前列腺癌等惡性腫瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)[6-9];同時(shí)miR-29b在乳腺癌中表達(dá)下調(diào),高表達(dá)miR-29b能抑制乳腺癌增殖,誘導(dǎo)凋亡等生物學(xué)進(jìn)程[10]。生物信息學(xué)分析顯示長(zhǎng)鏈非編碼RNA(lncRNA)同源盒基因A反義轉(zhuǎn)錄3(HOXA-AS3)和miR-29b之間存在相互作用。HOXA-AS3高表達(dá)能促進(jìn)肺癌[11]、膠質(zhì)瘤[12]的進(jìn)展,但干漆乙醇提取物能否調(diào)控HOXA-AS3/miR-29b分子軸進(jìn)而影響乳腺癌細(xì)胞的生物學(xué)行為尚不清楚。本研究擬通過觀察不同水平的干漆乙醇提取物對(duì)乳腺癌細(xì)胞T47D增殖、遷移、侵襲、凋亡以及HOXA-AS3和miR-29b表達(dá)的影響,初步探討干漆乙醇提取物調(diào)控乳腺癌生物學(xué)行為的分子機(jī)制,為干漆乙醇提取物防治乳腺癌提供科學(xué)依據(jù)。
1.1細(xì)胞和試劑 人乳腺癌細(xì)胞T47D購于美國模式培養(yǎng)物集存庫;DMEM培養(yǎng)基和胎牛血清購于美國Gibco公司;干漆購于中藥材批發(fā)市場(chǎng);細(xì)胞轉(zhuǎn)染試劑LipofectamineTM 2000、TRIzol試劑盒購于美國Ivitrogen公司;微小RNA(miRNA)抑制物陰性對(duì)照(anti-miR-NC)、miR-29b抑制物(anti-miR-29b)、空載體(pcDNA)、HOXA-AS3過表達(dá)載體(pcDNA-HOXA-AS3)、HOXA-AS3小干擾RNA(si-HOXA-AS3)、HOXA-AS3小干擾RNA陰性對(duì)照(si-NC)由上海生工生物工程有限公司提供;miR cDNA第一鏈合成試劑盒、PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser試劑盒、SYBR?Premix Ex TaqTM試劑盒購于大連Takara公司;Transwell小室和基質(zhì)膠購于美國BD公司;CCK-8試劑盒、膜聯(lián)蛋白V異硫氰酸熒光素/碘化丙啶(Annexin V-FITC/PI)雙染細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒購于杭州貝博生物技術(shù)公司;兔源P21、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3(Caspase-3)、上皮細(xì)胞鈣黏蛋白(E-cadherin)、基質(zhì)金屬蛋白酶2(MMP-2)和磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)抗體購于美國CST公司;山羊抗兔二抗購于南京金斯瑞生物技術(shù)有限公司。
1.2方法
1.2.1干漆乙醇提取物的制備[13]將100 g干燥的干漆粉碎為粗粉,置于容器內(nèi),以料液比1∶3比例加入95%乙醇冷浸72 h,用紗布過濾,得濾液。重復(fù)冷浸提取3次,合并濾液,在40 ℃下減壓濃縮并收回乙醇至無醇味,冷凍干燥,得干漆乙醇提取物,-20 ℃保存?zhèn)溆谩L崛÷蕿?0.5%。
1.2.2細(xì)胞培養(yǎng)和分組 乳腺癌細(xì)胞T47D采用含有10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基在37 ℃、5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。采用不同水平(0、25、50、75 μg/mL)的干漆乙醇提取物處理T47D細(xì)胞48 h,檢測(cè)細(xì)胞增殖抑制率、克隆形成、遷移、侵襲、凋亡以及HOXA-AS3和miR-29b表達(dá)的變化,確定后續(xù)實(shí)驗(yàn)干漆乙醇提取物使用水平。為驗(yàn)證干漆乙醇提取物是通過調(diào)控HOXA-AS3/miR-29b分子軸進(jìn)而影響乳腺癌細(xì)胞增殖、凋亡、遷移和侵襲,利用LipofectamineTM 2000將pcDNA3.1、pcDNA3.1-HOXA-AS3、anti-miR-NC、anti-miR-29b分別轉(zhuǎn)染T47D細(xì)胞,轉(zhuǎn)染成功的T47D細(xì)胞用75 μg/mL的干漆乙醇提取物干預(yù)48 h,依次記為干漆75 μg/mL+pcDNA3.1組、干漆75 μg/mL+pcDNA3.1-HOXA-AS3組、75 μg/mL+anti-miR-NC組、干漆75 μg/mL+anti-miR-29b組,檢測(cè)T47D細(xì)胞的增殖、遷移、侵襲和凋亡變化。
1.2.3CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞活力 將1×104個(gè)T47D細(xì)胞鋪于96孔板,根據(jù)實(shí)驗(yàn)分組進(jìn)行相應(yīng)細(xì)胞處理后,向各孔內(nèi)加入10 μL的CCK-8試劑,繼續(xù)孵育2 h,酶標(biāo)儀檢測(cè)450 nm處各孔的吸光度值,計(jì)算細(xì)胞增殖抑制率。
1.2.4克隆形成實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞克隆能力 細(xì)胞按照上述分組進(jìn)行干預(yù)后,用胰酶消化細(xì)胞,取2×103個(gè)細(xì)胞接種于6孔板,將細(xì)胞均勻分散后,置于細(xì)胞培養(yǎng)箱常規(guī)培養(yǎng)7 d,當(dāng)看到肉眼可見的集落時(shí),棄去培養(yǎng)基,磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌細(xì)胞1次,分別加入多聚甲醛和結(jié)晶紫染液進(jìn)行固定和染色,PBS沖洗3次,常溫晾干后,顯微鏡下統(tǒng)計(jì)>50個(gè)細(xì)胞的集落數(shù)。
1.2.5流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)凋亡 收集上述各組細(xì)胞,PBS洗滌細(xì)胞2次,離心后加入適量結(jié)合緩沖液調(diào)整為1×106cells/mL的單細(xì)胞懸液。取100 μL細(xì)胞懸液加入到流式管,按照Annexin V-FITC/PI細(xì)胞凋亡試劑盒分別加入5 μL的Annexin V-FITC和5 μL的PI,避光孵育15 min,加入400 μL結(jié)合緩沖液混勻,采用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況。
1.2.6Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞的遷移和侵襲能力 侵襲實(shí)驗(yàn):在小室內(nèi)鋪上用PBS 1∶8稀釋的Matrigel(50 mg/L)基質(zhì)膠備用。收集上述各組細(xì)胞,采用不含血清的培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞水平為3×106cells/mL。將Transwell小室放入24孔板,向上室內(nèi)加入300 μL的細(xì)胞懸液,下室加入含20%血清的細(xì)胞培養(yǎng)液,培養(yǎng)箱孵育24 h,小心擦去未過膜細(xì)胞,4%的多聚甲醛固定10 min,0.1%的結(jié)晶紫染色5 min,PBS洗滌后,將Transwell小室倒置于顯微鏡下拍照,隨機(jī)選取3個(gè)視野拍照,記錄過膜細(xì)胞數(shù),其平均值即為細(xì)胞侵襲數(shù)目。遷移實(shí)驗(yàn)采用未包被基質(zhì)膠的Transwell小室,其他步驟同上。
1.2.7qRT-PCR檢測(cè)HOXA-AS3和miR-29b的表達(dá) TRIzol試劑盒提取各組的細(xì)胞總RNA,并分別應(yīng)用miR cDNA第一鏈合成試劑盒和PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser試劑盒合成cDNA模板,采用SYBR?Premix Ex TaqTM進(jìn)行qRT-PCR檢測(cè)。分別以U6和GAPDH為內(nèi)參照檢測(cè)miR-29b和HOXA-AS3的表達(dá)。應(yīng)用2-ΔΔCt法計(jì)算miR-29b和靶標(biāo)HOXA-AS3的表達(dá)量。引物由北京華大基因公司合成,序列如下。HOXA-AS3上游5′-GCTGAATTAACGGTGGCTCC-3′,HOXA-AS3下游5′-ATGGCGAGCGAAGGGAAG-3′;GAPDH上游5′-TTAAAAGCAGCCCTGGTGAC-3′,GAPDH下游5′-CTCTGCTCCTCCTGTTCGAC-3′;miR-29b上游5′-UAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3′;miR-29b下游5′-CACUGAUUUCAAAUGGUGUUAUU-3′;U6上游5′-CTCGCTTCGGCAGCACA-3′,U6下游5′-AACGCTTCTCACGAATTTGCGT-3′。
1.2.8Western blot檢測(cè)P21、Caspase-3、E-cadherin和MMP-2蛋白的表達(dá) 各組細(xì)胞進(jìn)行相應(yīng)處理后棄去細(xì)胞培養(yǎng)液,加入4 ℃預(yù)冷的細(xì)胞裂解液,冰上裂解30 min后提取細(xì)胞總蛋白。BCA試劑盒測(cè)定細(xì)胞蛋白水平。煮沸3 min變性細(xì)胞蛋白。配制分離膠和濃縮膠,每孔上樣30 μg,進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳,分別加入稀釋的P21、Caspase-3、E-cadherin、MMP-2和GAPDH抗體后,4 ℃孵育過夜。TBST洗膜3次后,加入稀釋的二抗溶液,室溫孵育1 h,TBST洗膜3次后,用增強(qiáng)型化學(xué)發(fā)光試劑盒顯色。以GAPDH為內(nèi)參,采用圖像處理軟件ImageJ分析目的條帶灰度值。
1.2.9雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn) 采用Targetscan數(shù)據(jù)庫進(jìn)行靶基因預(yù)測(cè)顯示,HOXA-AS3與miR-29b之間存在部分連續(xù)結(jié)合的核苷酸序列,并采用雙熒光酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)驗(yàn)證miR-29b和HOXA-AS3的靶向關(guān)系。含有miR-29b結(jié)合位點(diǎn)的野生型熒光素酶報(bào)告基因載體WT-HOXA-AS3和突變型熒光素酶報(bào)告基因載體MUT-HOXA-AS3的構(gòu)建由上海吉?jiǎng)P基因提供。將WT-HOXA-AS3、MUT-HOXA-AS3分別與miR-con、miR-29b mimics共轉(zhuǎn)染至T47D細(xì)胞,轉(zhuǎn)染48 h,檢測(cè)各組細(xì)胞的熒光素酶活性。為進(jìn)一步驗(yàn)證HOXA-AS3對(duì)miR-29b的調(diào)控關(guān)系,將pcDNA3.1、pcDNA3.1-HOXA-AS3、si-NC、si-HOXA-AS3分別轉(zhuǎn)染至T47D細(xì)胞,轉(zhuǎn)染48 h,采用qRT-PCR檢測(cè)miR-29b的表達(dá)。
2.1干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D增殖、凋亡的影響 與空白對(duì)照組比較,干漆乙醇提取物處理組T47D細(xì)胞P21和Caspase-3蛋白的表達(dá)顯著升高,細(xì)胞抑制率顯著升高,克隆形成數(shù)顯著降低,細(xì)胞凋亡率顯著升高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見表1、圖1。
注:A為干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D凋亡的影響;B為干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D中P21、Caspase-3蛋白表達(dá)的影響;a為0 μg/mL干漆乙醇提取物組,b為25 μg/mL干漆乙醇提取物組,c為50 μg/mL干漆乙醇提取物組,d為75 μg/mL干漆乙醇提取物組。
表1 干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D增殖、凋亡的影響
2.2干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D遷移、侵襲的影響 與空白對(duì)照組比較,干漆乙醇提取物處理組T47D細(xì)胞E-cadherin蛋白的表達(dá)顯著升高,MMP-2蛋白的表達(dá)顯著降低,遷移和侵襲細(xì)胞數(shù)目顯著減少,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。隨著干漆乙醇提取物水平的逐漸增加,其對(duì)T47D細(xì)胞遷移、侵襲的抑制作用逐漸增強(qiáng)。見圖2、表2。
注:A為干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D遷移、侵襲能力的影響;B為干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D中E-cadherin、MMP-2蛋白表達(dá)的影響;a為0 μg/mL干漆乙醇提取物組,b為25 μg/mL干漆乙醇提取物組,c為50 μg/mL干漆乙醇提取物組,d為75 μg/mL干漆乙醇提取物組。
表2 干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D遷移、侵襲的影響
2.3干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D中HOXA-AS3、miR-29b表達(dá)的影響 與空白對(duì)照組比較,干漆乙醇提取物處理組T47D細(xì)胞HOXA-AS3的表達(dá)顯著降低(P<0.05),miR-29b的表達(dá)顯著升高(P<0.05)。隨著干漆乙醇提取物水平的逐漸升高,其對(duì)T47D細(xì)胞中HOXA-AS3和miR-29b表達(dá)的影響逐漸增強(qiáng)。見表3。
表3 干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D中HOXA-AS3、miR-29b表達(dá)的影響
2.4過表達(dá)HOXA-AS3能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D增殖、凋亡的影響 與干漆75 μg/mL+pcDNA3.1組比較,干漆75 μg/mL+pcDNA3.1-HOXA-AS3組T47D細(xì)胞P21和Caspase-3蛋白的表達(dá)顯著降低,細(xì)胞抑制率顯著降低,克隆形成數(shù)顯著增多,細(xì)胞凋亡率顯著降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖3、表4。
表4 過表達(dá)HOXA-AS3能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D增殖、凋亡的影響
注:A為過表達(dá)HOXA-AS3能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D凋亡的影響;B為過表達(dá)HOXA-AS3能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D中P21、Caspase-3蛋白表達(dá)的影響;a為干漆75 μg/mL+pcDNA3.1組,b為干漆75 μg/mL+pcDNA3.1-HOXA-AS3組。
2.5過表達(dá)HOXA-AS3能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D遷移、侵襲的影響 與干漆75 μg/mL+pcDNA3.1組比較,干漆75 μg/mL+pcDNA3.1-HOXA-AS3組T47D細(xì)胞HOXA-AS3的表達(dá)顯著升高,E-cadherin蛋白的表達(dá)顯著降低,MMP-2蛋白的表達(dá)顯著升高,遷移和侵襲細(xì)胞數(shù)目顯著增多,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖4、表5。
注:A為過表達(dá)HOXA-AS3能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D遷移、侵襲能力的影響;B為過表達(dá)HOXA-AS3能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D中E-cadherin、MMP-2蛋白表達(dá)的影響;a為干漆75 μg/mL+pcDNA3.1組,b為干漆75 μg/mL+pcDNA3.1-HOXA-AS3組。
表5 過表達(dá)HOXA-AS3能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D遷移、侵襲的影響
2.6抑制miR-29b能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D增殖、凋亡的影響 與干漆75 μg/mL+anti-miR-NC組比較,干漆75 μg/mL+anti-miR-29b組T47D細(xì)胞P21和Caspase-3蛋白的表達(dá)顯著降低,細(xì)胞抑制率顯著降低,克隆形成數(shù)顯著增多,細(xì)胞凋亡率顯著降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖5、表6。
表6 抑制miR-29b能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D增殖、凋亡的影響
注:A為抑制miR-29b能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D凋亡的影響;B為抑制miR-29b能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D中P21、Caspase-3蛋白表達(dá)的影響;a為干漆75 μg/mL+anti-miR-NC組,b為干漆75 μg/mL+anti-miR-29b組。
2.7抑制miR-29b能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D遷移、侵襲的影響 與干漆75 μg/mL+anti-miR-NC組比較,干漆75 μg/mL+anti-miR-29b組T47D細(xì)胞miR-29b的表達(dá)顯著降低,E-cadherin蛋白的表達(dá)顯著降低,MMP-2蛋白的表達(dá)顯著升高,遷移和侵襲細(xì)胞數(shù)目顯著增多,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖6、表7。
注:A為抑制miR-29b能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D遷移、侵襲能力的影響;B為抑制miR-29b能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D中E-cadherin、MMP-2蛋白表達(dá)的影響;a為干漆75 μg/mL+anti-miR-NC組,b為干漆75 μg/mL+anti-miR-29b組。
表7 抑制miR-29b能逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)細(xì)胞T47D遷移、侵襲的影響
2.8HOXA-AS3靶向調(diào)控miR-29b Starbase預(yù)測(cè)顯示HOXA-AS3與miR-29b之間存在本分連續(xù)結(jié)合位點(diǎn),見圖7。雙熒光素酶報(bào)告實(shí)驗(yàn)顯示,與miR-NC和WT-HOXA-AS3共轉(zhuǎn)染組比較,miR-29b和WT-HOXA-AS3共轉(zhuǎn)染組T47D細(xì)胞的熒光素酶活性顯著降低(P<0.05);與miR-NC和MUT-HOXA-AS3共轉(zhuǎn)染組比較,miR-29b和MUT-HOXA-AS3共轉(zhuǎn)染組T47D細(xì)胞的熒光素酶活性變化差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見表8。qRT-PCR檢測(cè)顯示,與pcDNA3.1組比較,pcDNA3.1-HOXA-AS3組T47D細(xì)胞miR-29b的表達(dá)顯著降低(P<0.05);與si-NC組比較,si-HOXA-AS3組T47D細(xì)胞miR-29b的表達(dá)顯著升高(P<0.05),見表9。提示HOXA-AS3靶向miR-29b并負(fù)性調(diào)控其表達(dá)。
圖7 HOXA-AS3靶向miR-29b
表8 雙熒光素酶報(bào)告實(shí)驗(yàn)
表9 HOXA-AS3調(diào)控miR-29b的表達(dá)
近年來乳腺癌的發(fā)病率和病死率不斷升高并呈現(xiàn)年輕化趨勢(shì),雖然治療手段及其方案不斷完善,但臨床治療效果并不顯著。研究顯示,中藥輔助治療在提高乳腺癌患者5年生存率和延長(zhǎng)生存期方面發(fā)揮重要作用[14]。
干漆又名漆渣、漆底、漆腳、續(xù)命筒、黑漆,歷版《中國藥典》均有收錄,具有破瘀血、消積、殺蟲等功效,主要用于治療婦女經(jīng)閉、瘀血、蟲積、肝臟疾病、胃病和傳染病等[15]。現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)研究表明,干漆乙醇提取物具有顯著的抗炎、抗菌、抗氧化、抗腫瘤和神經(jīng)保護(hù)作用[16-18]。研究證實(shí),干漆乙醇提取物可抑制人肺癌細(xì)胞A549以及人慢性粒細(xì)胞白血病K562細(xì)胞的生長(zhǎng)并誘導(dǎo)凋亡作用[19-20],抑制胰腺癌細(xì)胞的遷移和侵襲[21];與此同時(shí),干漆乙醇提取物還可通過腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)和p53途徑分別調(diào)節(jié)乳腺癌細(xì)胞的存活和凋亡[22-23]。本研究結(jié)果顯示,干漆乙醇提取物呈劑量依賴性地抑制乳腺癌細(xì)胞T47D增殖,抑制MMP-2表達(dá),促進(jìn)P21、Caspase-3和E-cadherin表達(dá),抑制其遷移和侵襲,并誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,抑制乳腺癌細(xì)胞的惡性生物學(xué)行為。
miRNA廣泛參與腫瘤進(jìn)展的多個(gè)生物學(xué)過程,近年來其被認(rèn)為是中藥化合物抗腫瘤的潛在靶點(diǎn)[24]。miR-29b是miR-29家族成員之一,研究顯示乳腺癌等多種癌癥中miR-29b異常表達(dá),與癌細(xì)胞增殖、分化、凋亡、轉(zhuǎn)移和藥物耐受相關(guān)[25]。本研究結(jié)果顯示,干漆乙醇提取物呈劑量依賴性地促進(jìn)T47D細(xì)胞miR-29表達(dá),抑制miR-29表達(dá)可逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)T47D細(xì)胞的凋亡誘導(dǎo)以及增殖、遷移、侵襲抑制的影響,提示miR-29b可能是干漆乙醇提取物抗乳腺癌的作用靶點(diǎn)。HOXA-AS3是一種新型的lncRNA,已有研究表明肝癌中HOXA-AS3表達(dá)上調(diào),下調(diào)HOXA-AS3表達(dá)通過抑制絲裂原活化蛋白激酶/細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(MEK/ERK)信號(hào)通路進(jìn)而抑制肝癌細(xì)胞增殖、轉(zhuǎn)移和上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)進(jìn)程[26]。下調(diào)HOXA-AS3表達(dá)還可增強(qiáng)順鉑對(duì)非小細(xì)胞肺癌的體內(nèi)外療效[27]。本研究結(jié)果顯示,干漆乙醇提取物呈劑量依賴性地抑制T47D細(xì)胞HOXA-AS3表達(dá);本研究還發(fā)現(xiàn),過表達(dá)HOXA-AS3可逆轉(zhuǎn)干漆乙醇提取物對(duì)T47D細(xì)胞增殖、遷移、侵襲以及凋亡的影響。此外,雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)和Western blot證實(shí),HOXA-AS3靶向miR-29b并負(fù)性調(diào)控miR-29b表達(dá)。因此,調(diào)控HOXA-AS3/miR-29b分子軸是干漆乙醇提取物調(diào)控乳腺癌細(xì)胞惡性生物學(xué)行為的重要機(jī)制。有研究報(bào)道,漆酚可能是干漆乙醇提取物的主要化學(xué)成分[28-29],但漆酚是否是其發(fā)揮抗癌作用的主要成分還有待后續(xù)試驗(yàn)進(jìn)行深層次研究。
國際檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志2022年19期