邱軍輝,劉美志,孫杜桑,潘 婷,趙維維,沙雯君,魯 郡,雷 濤,
糖尿病是全球增長(zhǎng)最快的疾病之一,預(yù)計(jì)到2045年將影響6.93億成年人[1]。近年來(lái),我國(guó)糖尿病的發(fā)病率逐年升高,其主要危害在于糖尿病的慢性并發(fā)癥,而糖尿病最主要的慢性并發(fā)癥是血管病變[2]。研究[3]顯示血管內(nèi)皮功能損傷既是血管病變的重要病理基礎(chǔ),也是糖尿病預(yù)后的決定性因素。糖尿病患者體內(nèi)多同時(shí)存在高血糖和脂代謝紊亂狀態(tài),低密度脂蛋白極易發(fā)生非酶促糖基化,形成糖化低密度脂蛋白(glycated low density lipoprotein,Gly-LDL)[4]。Gly-LDL能夠影響內(nèi)皮細(xì)胞形態(tài)和功能,但具體作用機(jī)制尚未闡明。該研究旨在探討Gly-LDL誘導(dǎo)人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVECs)炎癥反應(yīng)的具體機(jī)制,為防治血管內(nèi)皮損傷提供新的理論依據(jù)。
1.1 材料
1.1.1細(xì)胞 HUVECs購(gòu)自上海中科院細(xì)胞研究所。
1.1.2主要試劑 LDL Human購(gòu)自廣州奕元生物科技有限公司;葡萄糖購(gòu)自上海生工生物工程股份有限公司;CCK-8試劑盒購(gòu)自日本同仁化學(xué)研究所; ECM購(gòu)自美國(guó)ScienCell公司;0.25%胰酶消化液購(gòu)自美國(guó)Gibco公司;BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒、SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液(5×)購(gòu)自上海碧云天生物科技有限公司;ELISA試劑盒購(gòu)自武漢博士德生物工程有限公司;TRIzol購(gòu)自Invitrogen公司; PrimeScriptTMRT Master Mix Kit和SYBR?Primix Ex TagTMKit購(gòu)自美國(guó)TaKaRa公司;Toll樣受體4(toll like receptor 4,TLR4)、缺氧誘導(dǎo)因子-1α(hypoxia inducible factor-1α,HIF-1α)、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白細(xì)胞介素-6(interleukin-6,IL-6) 、β-actin抗體、HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG二抗、HRP 標(biāo)記的兔抗小鼠IgG二抗購(gòu)自美國(guó)Abcam公司。
1.1.3主要儀器 細(xì)胞超凈工作臺(tái)購(gòu)自ESCO公司;全波長(zhǎng)酶標(biāo)儀購(gòu)自Bio-Rad公司;熒光顯微鏡購(gòu)自美國(guó)萊卡公司;電泳系統(tǒng)購(gòu)自美國(guó)Bio-Rad公司;離心機(jī)購(gòu)自Eppendorf公司;實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀購(gòu)自美國(guó)ABI公司。
1.2 方法
1.2.1Gly-LDL的制備 參考文獻(xiàn)[5]報(bào)道,在無(wú)菌條件下,將0.2 mol/L葡萄糖與2 g/L LDL Human在37 ℃培養(yǎng)箱中避光孵育4周,同時(shí)加入1 g/L EDTA和10 μmol/L二丁基羥基甲苯。第1、7、14、21、28天提取100 μl樣品保存于-80 ℃,檢測(cè)Gly-LDL水平。孵育完成后在pH 7.4 的PBS緩沖液中透析48 h備用。
1.2.2細(xì)胞培養(yǎng) 從液氮中取出凍存細(xì)胞,在37 ℃水浴鍋中解凍并離心,用完全培養(yǎng)基復(fù)蘇細(xì)胞,置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
1.2.3CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞增殖活力 將處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的HUVECs制備細(xì)胞懸液,按照1×104個(gè)細(xì)胞/孔的密度將細(xì)胞懸液接種至96孔板中,每孔100 μl,每組設(shè)立5個(gè)重復(fù)孔。待細(xì)胞完全貼壁后,按照不同干預(yù)措施將細(xì)胞分為對(duì)照組、陽(yáng)性對(duì)照組[50 mg/L普通低密度脂蛋白 (normal low density lipoprotein, n-LDL]、Gly-LDL (50、75、100 mg/L) 組,干預(yù)24 h后用含10% CCK-8的培養(yǎng)基進(jìn)行換液,避光孵育,每隔30 min使用酶標(biāo)儀測(cè)定每組在450 nm處的吸光度,取各組實(shí)驗(yàn)的平均值,重復(fù)3次實(shí)驗(yàn)。
1.2.4劃痕實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞遷移能力 在6孔板中以2×105個(gè)細(xì)胞/孔的密度培養(yǎng)細(xì)胞,待細(xì)胞長(zhǎng)至80%~90%時(shí),用槍頭于板底劃線,PBS洗去漂浮細(xì)胞,更換含1%FBS低血清培養(yǎng)基后加入不同濃度Gly-LDL繼續(xù)培養(yǎng),于顯微鏡下拍攝0 h細(xì)胞劃痕圖片,12 h后在同一位置拍攝圖片,計(jì)算劃痕區(qū)域面積,求得愈合率。
1.2.5ELISA法檢測(cè)細(xì)胞上清液中TNF-α、IL-6、細(xì)胞間黏附分子-1(intercellular adhesion molecule-1,ICAM-1)、血管細(xì)胞黏附分子-1(vascular cell adhesion molecule-1,VCAM-1)含量 取24 h后各組細(xì)胞上清液,按照ELISA試劑盒說(shuō)明書(shū)檢測(cè)上清液中TNF-α、IL-6、VCAM-1、ICAM-1含量。
1.2.6qRT-PCR檢測(cè)HUVECs中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA水平 在6孔板中培養(yǎng)內(nèi)皮細(xì)胞,干預(yù)24 h后收集各組內(nèi)皮細(xì)胞,按說(shuō)明書(shū)提取內(nèi)皮細(xì)胞中總RNA,采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,實(shí)時(shí)熒光定量PCR進(jìn)行目的基因擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增體系:2×TB Green 10.0 μl,引物各0.4 μl,引物序列見(jiàn)表1,50×ROX ReferenceDye Ⅱ 0.4 μl,cDNA 2 μl,ddH2O 6.8 μl,總體系20 μl。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性30 s,95 ℃退火5 s,60 ℃延伸34 s,共40個(gè)循環(huán),95 ℃延伸15 s。以β-actin為內(nèi)參,2-ΔΔCt計(jì)算。
表1 引物序列
1.2.7Western blot檢測(cè)TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6蛋白水平 將3~4代HUVECs細(xì)胞接種于6孔板中,每孔2×105個(gè)細(xì)胞,待細(xì)胞長(zhǎng)至80%時(shí),將完全培養(yǎng)基更換成低血清培養(yǎng)基進(jìn)行饑餓處理8 h,對(duì)細(xì)胞進(jìn)行干預(yù)處理24 h后,吸棄6孔板中培養(yǎng)基,預(yù)冷PBS洗滌2次,每孔加入120 μl RIPA裂解液置于冰上充分裂解30 min,4 ℃、14 000 r/min離心15 min,取上清液至預(yù)冷離心管中,按照BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū)步驟對(duì)各組樣品進(jìn)行定量檢測(cè),加入適量蛋白上樣緩沖液后100 ℃加熱5 min變性。取20 μg總蛋白進(jìn)行SDS-PAGE凝膠電泳,再將蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF膜,用5%BSA室溫封閉1 h,洗膜后分別加入TLR4一抗(1 ∶1 000)、HIF-1α一抗(1 ∶1 000)、TNF-α一抗(1 ∶1 000)、IL-6一抗(1 ∶1 000)、β-actin一抗(1 ∶5 000) 4 ℃孵育過(guò)夜,次日TBST漂洗PVDF膜3次,5 min/次,加入二抗(1 ∶20 000)室溫?fù)u床孵育2 h,TBST漂洗3次,5 min/次。暗室ECL顯影獲取圖片,用ImageJ軟件分析出各組蛋白與內(nèi)參的灰度值,得出各組蛋白與內(nèi)參的灰度比值,反映出各組蛋白的相對(duì)表達(dá)水平。
1.2.8Gly-LDL干預(yù)下沉默TLR4、HIF-1α后TLR4、HIF-1α蛋白表達(dá)水平 在6孔板中接種3~5代細(xì)胞,每孔細(xì)胞數(shù)約為2×105個(gè),在恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)至80%左右開(kāi)始后續(xù)實(shí)驗(yàn)。轉(zhuǎn)染前將培養(yǎng)基換成不含血清和雙抗的培養(yǎng)基,以免影響轉(zhuǎn)染效率。分別設(shè)為對(duì)照組、模型組(Gly-LDL 100 mg/L)、si-TLR4組(Gly-LDL 100 mg/L+si-TLR4)、TLR4空載組(Gly-LDL 100 mg/L+si-NC1)、si-HIF-1α組(Gly-LDL 100 mg/L+si-HIF-1α)和HIF-1α空載組(Gly-LDL 100 mg/L+si-NC2)。提前將si-TLR4、si-NCl、si-HIF-1α、si-NC2凍干粉用原裝DEPC水進(jìn)行溶解,取siRNA,用opti-MEM培養(yǎng)基稀釋siRNA,終濃度為10 μmol/L,總體積為250 μl,靜置5 min;同時(shí)取2 μl Lipofectamine 2000與248 μl opti-MEM培養(yǎng)基混勻,靜置5 min。將上述兩種液體混合,靜置20 min。每孔先加入1 500 μl opti-MEM培養(yǎng)基,20 min之后將500 μl混合液加入6孔板中。6 h后將opti-MEM更換為完全培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,后續(xù)根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要進(jìn)行下一步操作。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。小干擾序列見(jiàn)表2。
表2 小干擾序列
2.1 Gly-LDL對(duì)HUVECs增殖活力的影響不同濃度Gly-LDL處理內(nèi)皮細(xì)胞,在24 h檢測(cè)細(xì)胞增殖活力的改變,CCK-8法檢測(cè)結(jié)果顯示:細(xì)胞活力差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=69.96,P<0.001),與對(duì)照組OD值(1.09±0.10)相比,n-LDL組OD值(0.96±0.03)顯示對(duì)HUVECs增殖活力無(wú)影響,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);而Gly-LDL(50、75、100 mg/L)組OD值分別為(0.70±0.03)、 (0.59±0.02)、 (0.53±0.03),與對(duì)照組相比,細(xì)胞存活率分別下降36.16%、45.77%、51.24%,呈劑量依賴性(P<0.01);與n-LDL組相比,Gly-LDL 50 mg/L組細(xì)胞存活率下降27.08%(P<0.001)。
2.2 Gly-LDL對(duì)HUVECs遷移能力的影響不同濃度Gly-LDL處理HUVECs,在12 h檢測(cè)細(xì)胞遷移能力的改變,細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果(圖1)顯示:細(xì)胞遷移能力差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=139.85,P<0.001),與對(duì)照組愈合率(52.03±1.79)相比,n-LDL組愈合率(48.55±1.93)顯示對(duì)細(xì)胞遷移能力無(wú)影響,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);而Gly-LDL(50、75、100 mg/L)組愈合率分別為(35.88±2.40)、(22.68±3.10)、(17.65±1.59),與對(duì)照組相比,細(xì)胞遷移率分別下降31.04%、56.40%、66.08%,呈劑量依賴性(P<0.001);與n-LDL組相比,Gly-LDL 50 mg/L組細(xì)胞遷移率下降26.10%(P<0.01)。
圖1 細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)檢測(cè)不同濃度Gly-LDL對(duì)HUVECs遷移能力的影響 ×100
2.3 Gly-LDL對(duì)HUVECs細(xì)胞因子表達(dá)的影響ELISA法檢測(cè)TNF-α、IL-6、ICAM-1、VCAM-1分泌水平,結(jié)果(表3)顯示:各組TNF-α、IL-6、ICAM-1、VCAM-1分泌量差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=333.80、68.91、127.07、79.56,P<0.001),與對(duì)照組相比, n-LDL組TNF-α、IL-6、 ICAM-1、VCAM-1分泌水平升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與對(duì)照組相比,Gly-LDL(50、75、100 mg/L)組TNF-α、IL-6、 ICAM-1、VCAM-1分泌水平升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);與n-LDL組相比,Gly-LDL 50 mg/L組中TNF-α、IL-6、 ICAM-1、VCAM-1分泌水平增高,其中TNF-α、IL-6、ICAM-1分泌水平差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
表3 Gly-LDL對(duì)HUVECs細(xì)胞因子表達(dá)的影響
2.4 Gly-LDL對(duì)HUVECs中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA表達(dá)的影響不同濃度Gly-LDL處理細(xì)胞24 h后,qRT-PCR結(jié)果(圖2)顯示:各組TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA表達(dá)量差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=174.35、275.06、126.54、109.70,P<0.05),與對(duì)照組相比,n-LDL組和Gly-LDL(50、75、100 mg/L)組誘導(dǎo)的HUVECs中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA表達(dá)水平升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與n-LDL組相比,Gly-LDL(75、100 mg/L)組中TLR4、TNF-α、IL-6 mRNA水平增高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,并呈劑量依賴性(P<0.05)。
圖2 Gly-LDL對(duì)HUVECs中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA表達(dá)的影響A:對(duì)照組;B:n-LDL組;C:Gly-LDL 50 mg/L組;D:Gly-LDL 75 mg/L組;E:Gly-LDL 100 mg/L組;與對(duì)照組比較:*P<0.05;與n-LDL組比較:#P<0.05
2.5 Gly-LDL對(duì)HUVECs中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6蛋白表達(dá)的影響不同濃度Gly-LDL處理細(xì)胞24 h后,Western blot檢測(cè)炎癥蛋白TLR4,HIF-1α、IL-6、TNF-α水平,結(jié)果(圖3)顯示:各組TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6蛋白表達(dá)量差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=47.63、42.80、78.25、21.13,P<0.001),與對(duì)照組相比,n-LDL組中TLR4、TNF-α蛋白水平升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與對(duì)照組相比,Gly-LDL 50 mg/L 組中HIF-1α、TNF-α蛋白水平升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),Gly-LDL 75、100 mg/L組中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6蛋白水平升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
圖3 Gly-LDL對(duì)TLR4/HIF-1α信號(hào)通路相關(guān)蛋白的影響A:對(duì)照組;B:n-LDL組;C:Gly-LDL 50 mg/L組;D:Gly-LDL 75 mg/L組;E:Gly-LDL 100 mg/L組;與對(duì)照組比較:*P<0.05;與n-LDL組比較:#P<0.05
2.6 檢測(cè)HUVECs中沉默TLR4、HIF-1α蛋白效率分別用si-TLR4、si-HIF-1α轉(zhuǎn)染HUVECs,Western blot結(jié)果(圖4)顯示:與si-NC組相比,si-TLR4組中TLR4蛋白表達(dá)下調(diào)44.18%,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001);與si-NC組相比,si-HIF-1α組中HIF-1α蛋白表達(dá)下調(diào)69.10%,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001)。
圖4 si-TLR4和si-HIF-1α對(duì)HUVECs中TLR4、HIF-1α蛋白沉默的影響A:沉默TLR4效率檢驗(yàn);B:TLR4蛋白統(tǒng)計(jì)分析圖;C:沉默HIF-1α效率檢驗(yàn);D:HIF-1α蛋白統(tǒng)計(jì)分析圖;與si-NC組比較:***P<0.001
2.7 Gly-LDL干預(yù)下沉默TLR4、HIF-1α后對(duì)HUVECs中TLR4、HIF-1α蛋白表達(dá)的影響分別用si-TLR4、si-HIF-1α轉(zhuǎn)染HUVECs后,按照實(shí)驗(yàn)分組加入100 mg/L Gly-LDL干預(yù)24 h,結(jié)果(圖5)顯示:與對(duì)照組相比,模型組中TLR4、HIF-1α蛋白表達(dá)均升高(P<0.05);與模型組相比,si-TLR4組中TLR4、HIF-1α蛋白表達(dá)均降低(P<0.05);與模型組相比,si-HIF-1α組中HIF-1α蛋白表達(dá)降低(P<0.05),TLR4蛋白表達(dá)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;與對(duì)照組相比,si-HIF-1α組中TLR4蛋白升高(P<0.05)。
圖5 沉默TLR4、HIF-1α對(duì)HUVECs中TLR4、HIF-1α蛋白表達(dá)的影響A:對(duì)照組;B:模型組;C:si-TLR4組;D:TLR4空載組;E:si-HIF-1α組;F:HIF-1α空載組;與對(duì)照組比較:*P<0.05;與模型組比較:#P<0.05
糖尿病是一種以糖代謝紊亂為主的臨床綜合征,糖尿病大血管并發(fā)癥是糖尿病患者致殘致死主要原因[6],血管內(nèi)皮損傷是導(dǎo)致糖尿病大血管并發(fā)癥的關(guān)鍵因素[7-8]。因此,血管內(nèi)皮損傷是防治糖尿病大血管病變的重要關(guān)注點(diǎn)。目前認(rèn)為,血管內(nèi)皮損傷的出現(xiàn),在于糖尿病高血糖時(shí),體內(nèi)各種蛋白非酶促糖基化反應(yīng)增強(qiáng)。而晚期糖基化蛋白終末產(chǎn)物(advanced glycated end products,AGEs)可損害內(nèi)皮細(xì)胞的形態(tài)及其功能,從而誘發(fā)糖尿病血管病變[9-10]。Gly-LDL是AGEs中最主要成分之一,但目前Gly-LDL與糖尿病血管內(nèi)皮損傷的關(guān)系僅停留在相關(guān)性研究中。本研究用Gly-LDL(50、75、100 mg/L)處理HUVECs 24 h,存活率降低36.16%、45.77%和51.24%;遷移率降低31.04%、56.40%和66.08%;并促進(jìn)TNF-α、IL-6、ICAM-1、VCAM-1細(xì)胞因子分泌,表明Gly-LDL能夠降低細(xì)胞生存率和遷移能力,促進(jìn)炎癥因子釋放,并呈濃度依賴性。
大量研究[11-12]顯示糖尿病血管內(nèi)皮損傷與TLR4信號(hào)激活有關(guān)。在血管內(nèi)皮病變患者外周血中,巨噬細(xì)胞表現(xiàn)為T(mén)LR4信號(hào)過(guò)度激活,使機(jī)體處于高度促炎狀態(tài)[13]。TLR4參與糖尿病病理生理過(guò)程,TLR4能夠調(diào)節(jié)NADPH氧化酶活性,導(dǎo)致體內(nèi)活性氧增加,加速糖尿病大血管并發(fā)癥發(fā)展[14];在糖尿病血管內(nèi)皮損傷中,樹(shù)突狀細(xì)胞通過(guò)RAGE-TLR4-PKCβ1信號(hào)通路介導(dǎo)慢性炎癥反應(yīng)[15];高遷移率組蛋白(high mobility group protein B1,HMGB1)在糖尿病發(fā)生過(guò)程中通過(guò)TLR4/eNOS通路參與內(nèi)皮依賴性舒張功能損傷[16]。為了驗(yàn)證Gly-LDL是否通過(guò)TLR4信號(hào)通路介導(dǎo)血管內(nèi)皮炎癥反應(yīng),本研究選用HUVECs作為研究對(duì)象,結(jié)果顯示Gly-LDL能提高HUVECs中TLR4、HIF-1α、TNF-α和IL-6 mRNA和蛋白水平,表明Gly-LDL能夠激活TLR4信號(hào)通路,促進(jìn)炎癥因子TNF-α和IL-6的表達(dá),介導(dǎo)血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷。但是Gly-LDL通過(guò)TLR4信號(hào)如何調(diào)控炎癥反應(yīng),是目前尚未解決的科學(xué)問(wèn)題。研究[17]表明TLR4信號(hào)能夠調(diào)控HIF-1α影響TNF-α、IL-1β分泌,HIF-1α是人和哺乳動(dòng)物中關(guān)鍵核轉(zhuǎn)錄因子,常氧狀態(tài)下HIF-1α的脯氨酰胺基和門(mén)冬酰胺基發(fā)生羥基化,與E3泛素化連接酶結(jié)合,VHL蛋白能募集泛素連接酶,與泛素化連接酶結(jié)合的HIF-1α被蛋白酶體降解;低氧狀態(tài)下,HIF-1α羥基化被抑制,與HIF-1β結(jié)合,在細(xì)胞核內(nèi)與缺氧反應(yīng)元件結(jié)合,激活靶基因轉(zhuǎn)錄[18]。HIF-1α能夠調(diào)節(jié)血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子和葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白1表達(dá),并且涉及炎癥反應(yīng)[19]。為了驗(yàn)證TLR4能否調(diào)控HIF-1α表達(dá),在Gly-LDL干預(yù)下沉默TLR4、HIF-1α基因,結(jié)果顯示:Gly-LDL能夠上調(diào)TLR4和HIF-1α蛋白水平,表明兩者可能存在協(xié)同作用;沉默TLR4基因后,TLR4和HIF-1α蛋白表達(dá)下調(diào),而沉默HIF-1α基因后,只有HIF-1α蛋白表達(dá)下調(diào),而TLR4蛋白在Gly-LDL干預(yù)下仍是上調(diào),因此推測(cè),Gly-LDL上調(diào)TLR4信號(hào),激活HIF-1α表達(dá)介導(dǎo)HUVECs炎癥反應(yīng)。
綜上所述,本研究結(jié)果顯示:Gly-LDL能夠上調(diào)TLR4信號(hào),激活HIF-1α的表達(dá)介導(dǎo)炎癥因子釋放,降低HUVECs生存率和遷移能力,誘導(dǎo)HUVECs損傷。Gly-LDL水平有望成為衡量糖尿病血管內(nèi)皮損傷指標(biāo)之一,并為糖尿病血管內(nèi)皮損傷臨床治療提供新的潛在靶點(diǎn)。