陳 艷，劉 沖，張國(guó)宇，張 琴，任 偉，張冰雪

（遵義市產(chǎn)品質(zhì)量檢驗(yàn)檢測(cè)院，貴州遵義 563000）

白酒作為在我國(guó)具有上千年歷史傳承的世界六大蒸餾酒之一，以其獨(dú)特的風(fēng)味和獨(dú)特的生產(chǎn)工藝，深受廣大民眾的青睞。白酒釀造工藝源遠(yuǎn)流長(zhǎng)，但在其生產(chǎn)和存儲(chǔ)過(guò)程中都可能產(chǎn)生一些風(fēng)險(xiǎn)物質(zhì)，如尿素、甲醇、氰化物及其衍生反應(yīng)物等[1-4]。

氨基甲酸甲酯（Methy Carbamate，MC，又名尿基烷）及氨基甲酸乙酯（Ehthy Carbamate，EC，又名尿烷），主要由尿素、氰化物與乙醇、甲醇等在發(fā)酵和存儲(chǔ)過(guò)程中產(chǎn)生[5-6]，廣泛存在于發(fā)酵食品（面包、酸奶、奶酪、醬油、醋）和酒精飲料（葡萄酒、啤酒、白酒等）中[7-12]，具有潛在的毒性和致癌性[13]，可導(dǎo)致肺癌、淋巴癌、肝癌和皮膚癌[14-15]，長(zhǎng)期接觸EC可能導(dǎo)致神經(jīng)系統(tǒng)疾病[16]。作為一種潛在致癌物化合物，2007 年被世界衛(wèi)生組織國(guó)際癌癥研究機(jī)構(gòu)（International Agency for Research on Cancer，IARC）列為2A 類致癌物[17-18]。白酒中EC 的產(chǎn)生主要來(lái)源于兩個(gè)階段，發(fā)酵階段主要是乙醇和尿素產(chǎn)生，存儲(chǔ)階段主要由氰化物和尿素產(chǎn)生[19]，且乙醇會(huì)加速EC 的形成[20]，通過(guò)攝入酒精飲料EC 的致癌性可能較其他途徑高[21]。早在1985 年，加拿大就規(guī)定了葡萄酒、白蘭地和威士忌中EC 的限量值150 μg/L[22]，許多歐美國(guó)家參考加拿大的值，對(duì)EC的最大允許限量進(jìn)行相關(guān)規(guī)定。近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn)大部分酒精飲料及發(fā)酵食品中均檢出不同濃度的EC，故EC 產(chǎn)生的食品安全風(fēng)險(xiǎn)隱患已成為白酒行業(yè)關(guān)注的熱點(diǎn)問(wèn)題之一。我國(guó)尚未制定EC 的限量標(biāo)準(zhǔn)，但研究發(fā)現(xiàn)我國(guó)部分蒸餾酒EC 含量已超過(guò)加拿大的最大限量值[23]，有必要建立同時(shí)測(cè)定白酒中MC和EC的高效、快速檢測(cè)分析方法。

目前針對(duì)白酒中MC 和EC 的檢測(cè)方法有很多，常見(jiàn)的有氣相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法、液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法、液相色譜法、液質(zhì)連用法（選擇離子監(jiān)測(cè)）、超高效液相色譜-高分辨質(zhì)譜法[24-27]，然而大部分都是針對(duì)性的檢測(cè)EC，關(guān)于液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法檢測(cè)MC 還未見(jiàn)報(bào)道。我國(guó)關(guān)于酒精飲料中EC 檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)有SN/T 0285—2012《出口酒中氨基甲酸乙酯殘留量檢測(cè)方法 氣相色譜-質(zhì)譜法》，DBS22/011—2013《食品安全地方標(biāo)準(zhǔn)飲料酒中氨基甲酸乙酯的測(cè)定氣相色譜-質(zhì)譜法》，現(xiàn)階段最常用的強(qiáng)制性檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)為GB 5009.223—2014《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)食品中氨基甲酸乙酯的測(cè)定》，該標(biāo)準(zhǔn)采用GC-MS 的選擇離子監(jiān)測(cè)模式（Selected Ion Monitoring，SIM），其選擇離子受干擾程度大，可能會(huì)影響檢測(cè)結(jié)果的定性和定量，且該方法樣品前處理較為復(fù)雜，耗時(shí)長(zhǎng)，成本較高，不利于開展大批量白酒中MC 和EC 的風(fēng)險(xiǎn)監(jiān)測(cè)。液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法（UPLC-MS/MS）選擇性強(qiáng)、靈敏度高、精密度好，具有較好的分離能力和抗基質(zhì)干擾能力，白酒基質(zhì)相對(duì)較簡(jiǎn)單，因此可在液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜上直接進(jìn)樣分析，且尚未有標(biāo)準(zhǔn)和研究報(bào)道采用UPLC-MS/MS同時(shí)檢測(cè)白酒中的MC和EC。

鑒于白酒在國(guó)內(nèi)外有巨大的消費(fèi)群體以及可能由MC 和EC 帶來(lái)的安全風(fēng)險(xiǎn)，有必要建立同時(shí)測(cè)定白酒中MC 和EC 的高效、快速檢測(cè)方法，提高工作效率，縮短檢測(cè)時(shí)間，降低檢測(cè)成本，為白酒生產(chǎn)企業(yè)日常監(jiān)測(cè)以及監(jiān)管部門監(jiān)督抽檢提供準(zhǔn)確可靠高效的技術(shù)手段，為制定相應(yīng)的限量值提供科學(xué)依據(jù)，為推動(dòng)白酒行業(yè)高質(zhì)量發(fā)展提供保障。

1 材料與方法

1.1 材料、試劑及儀器

白酒：抽樣及市售。

試劑及耗材：氨基甲酸甲酯標(biāo)準(zhǔn)品（純度均≥99.8%），上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司；氨基甲酸乙酯標(biāo)準(zhǔn)品（純度均≥99.9%），壇墨質(zhì)檢科技股份有限公司；甲酸、乙腈、甲酸（質(zhì)譜純），德國(guó)默克公司；水為實(shí)驗(yàn)室自制。

儀器設(shè)備：安捷倫1290 InfinityⅡ超高效液相-串聯(lián)G6470 A 質(zhì)譜儀，美國(guó)Agilent Technologies 公司；Milli-Q 超純水儀，美國(guó)密理博公司；AB265-S型分析天平（感量：0.0001g），瑞士Mettler Toledo 公司；HT-200 多管渦旋混勻儀，上海滬析實(shí)業(yè)有限公司；Waters Acquity UPLC HSS T3 C18 柱(2.1 mm ×100 mm,1.8 μm)。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制

準(zhǔn)確稱取MC、EC 標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)0.10 g 于10 mL 容量瓶中，用甲醇稀釋至刻度，分別配制濃度10 g/L的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。取適量標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液于同一容量瓶中，用甲醇稀釋成質(zhì)量濃度為10 mg/L 的混合標(biāo)準(zhǔn)中間儲(chǔ)備液。臨用前，用水溶液稀釋濃度為10 μg/L、20 μg/L、50 μg/L、100 μg/L、200 μg/L 的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液。

1.2.2 色譜條件

色譜柱：Waters Acquity UPLC HSS T3 C18 柱(2.1 mm ×100 mm,1.8 μm)，柱溫：40 ℃，流速：0.2 mL/min，進(jìn)樣體積：1 μL，流動(dòng)相A 為0.1 %甲酸水，B為乙腈，梯度洗脫，洗脫程序見(jiàn)表1。

表1 UPLC-MS/MS梯度洗脫條件

1.2.3 質(zhì)譜條件

離子源為帶有Agilent 噴射流技術(shù)的電噴霧離子源（Agilent electrospray ionization,AJS ESI），干燥氣溫度：250 ℃；干燥氣流量：7 L/min；噴嘴電壓：35 psi；鞘氣溫度：350 ℃；鞘氣流量：12 L/min；電噴霧電壓為3000 V；采用正離子掃描模式，多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)模式進(jìn)行檢測(cè)。

1.2.4 樣品處理

白酒基質(zhì)相對(duì)較簡(jiǎn)單，LC-MS/MS 技術(shù)在增強(qiáng)靈敏度、抗基質(zhì)干擾方面有較強(qiáng)的優(yōu)勢(shì)，因此取適量白酒樣品于2 mL進(jìn)樣小瓶中，混勻，直接進(jìn)樣。

1.2.5 結(jié)果定性與定量

樣品經(jīng)UPLC-MS/MS 測(cè)定得到質(zhì)譜色譜圖，在扣除背景后的樣品質(zhì)譜圖中要求試樣中不僅待測(cè)物色譜峰的保留時(shí)間與相應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)色譜峰保留時(shí)間一致，所選擇的定量離子和定性離子必須同時(shí)出現(xiàn)，至少應(yīng)包括一個(gè)母離子和兩個(gè)子離子，且兩個(gè)離子的相對(duì)離子豐度比與濃度相當(dāng)?shù)臉?biāo)準(zhǔn)溶液比較，容許偏差應(yīng)在允許范圍內(nèi)。以定量離子峰面積為縱坐標(biāo)，濃度為橫坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，測(cè)定樣品中待測(cè)組分的含量。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同稀釋溶劑的選擇

在預(yù)實(shí)驗(yàn)中選擇乙腈作為EC 和MC 系列標(biāo)準(zhǔn)溶液的稀釋溶劑，經(jīng)檢測(cè)分析，EC 峰形較寬且有分叉，通過(guò)調(diào)節(jié)梯度洗脫比例、流速等因素，均無(wú)法完全分離，Waters Acquity UPLC HSS T3 C18 柱為強(qiáng)極性色譜柱，考慮可能為溶劑效應(yīng)。因此，同時(shí)選擇超純水、甲醇、乙腈作為稀釋溶劑，檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖1，超純水和甲醇稀釋后EC峰形較好，響應(yīng)值接近，最終選擇超純水作為稀釋溶劑。

圖1 不同溶劑稀釋后EC的總離子流圖

2.2 色譜條件和質(zhì)譜條件優(yōu)化

色譜條件優(yōu)化過(guò)程中，在流動(dòng)相水相中加入0.1%甲酸作為質(zhì)子供體，可提高離子的響應(yīng)，改善峰型。優(yōu)化質(zhì)譜條件時(shí)，選擇濃度為100 μg/L的單標(biāo)溶液，分別對(duì)MC及EC進(jìn)行3種離子化形式的一級(jí)掃描[M+H]、[M+NH4]、[M+Na]和二級(jí)質(zhì)譜掃描。首先選擇Q1 MS1 全掃描模式，進(jìn)行母離子掃描獲得在對(duì)應(yīng)模式下的質(zhì)荷比，利用Q3 MS2 碎片離子掃描模式尋找二級(jí)質(zhì)譜碎片離子；然后在MRM 模式下，碰撞能（collision energy，CE）以5 V為間隔，從15 V 調(diào)至50 V，優(yōu)化碰撞能，觀察被測(cè)組分出峰的時(shí)間范圍，確保圖譜由12～15 個(gè)采集點(diǎn)構(gòu)成，選擇最佳的去簇電壓（declustering potential，DP）和碰撞能量，以達(dá)到最大響應(yīng)值；最后選取響應(yīng)最高的子離子作為定量離子，響應(yīng)次之的作為輔助定性離子。在優(yōu)化過(guò)程中，發(fā)現(xiàn)[M+NH4]能找到母離子，但在Q3 MS2 模式下沒(méi)有產(chǎn)生碎片離子；[M+Na]母離子響應(yīng)值高，碎片離子個(gè)數(shù)也多，但在MRM 模式下只有一個(gè)離子通道出峰，最終選擇[M+H]離子化形式下尋找母離子和碎片離子，并優(yōu)化質(zhì)譜參數(shù)，質(zhì)譜參數(shù)見(jiàn)表2，MRM 模式下質(zhì)譜圖和色譜圖見(jiàn)圖2。

圖2 MC和EC的色譜圖與質(zhì)譜圖

表2 MC和EC質(zhì)譜參數(shù)

2.3 方法學(xué)考察

2.3.1 線性方程、檢出限和定量限

準(zhǔn)確吸取MC和EC標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液適量，加水稀釋配制成濃度為10 μg/L、20 μg/L、50 μg/L、100 μg/L、200 μg/L 的系列標(biāo)準(zhǔn)混合溶液，以峰面積為縱坐標(biāo)（y），濃度為橫坐標(biāo)（x），建立標(biāo)準(zhǔn)曲線，結(jié)果見(jiàn)表3。結(jié)果提示MC 和EC 均在10～200 μg/L 濃度范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系，其相關(guān)系數(shù)R2均大于0.99，以信噪比3（S/N=3）和信噪比10（S/N=10）為方法檢出限（LOD）和定量限（LOQ），方法靈敏度高，能滿足相關(guān)樣品的定量檢測(cè)需要。

表3 MC和EC的線性方程

2.3.2 加標(biāo)回收率和精密度

取白酒樣品0.5 mL，分別添加3 個(gè)不同水平MC 和EC 的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液0.5 mL（3 個(gè)水平質(zhì)量濃度分別為為20 μg/L、40 μg/L、100 μg/L）,混勻，每個(gè)水平連續(xù)測(cè)定6 次，進(jìn)行加標(biāo)回收率和精密度試驗(yàn)，并計(jì)算相應(yīng)的加標(biāo)回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差（relative standard deviation,RSD），結(jié)果見(jiàn)表4。由表4可知，2 種化合物的平均回收率為76.29 %～98.81 %，精密度試驗(yàn)的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差（RSD）為2.81 %～5.05 %，結(jié)果表明該方法回收率高，精密度能達(dá)到分析測(cè)定的要求。

表4 白酒中MC和EC的加標(biāo)回收率及精密度試驗(yàn)結(jié)果

2.3.3 白酒樣品中MC和EC的測(cè)定

應(yīng)用本研究前期所建立的方法對(duì)3 種不同類型酒樣（共15 批次）中MC 及EC 進(jìn)行檢測(cè)，檢測(cè)結(jié)果如表5 所示。結(jié)果表明，15 批次酒樣中均未檢出MC，15 批次EC 檢出率為100 %，醬香型基酒5 批次檢出范圍為150.58～189.29 μg/L，平均值為167.61 μg/L；醬香型成品酒5 批次檢出范圍為87.03～120.63 μg/L，平均值為101.8 μg/L；小作坊酒5 批次檢出范圍值為15.63～26.75 μg/L，平均值為21.62 μg/L，3 種不同類型白酒中EC 的含量差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

表5 白酒樣品中MC和EC的測(cè)檢測(cè)結(jié)果 (μg/L)

3 結(jié)論

本研究建立了同時(shí)檢測(cè)白酒中MC 和EC 的UPLC-MS/MS 分析方法。通過(guò)對(duì)稀釋溶劑的選擇，超高效液相色譜和質(zhì)譜條件的優(yōu)化，MC 和EC 峰型良好,且能在較短時(shí)間7 min 內(nèi)完成出峰。方法學(xué)結(jié)果表明，MC 和EC 在10～200 μg/L 濃度范圍內(nèi)，線性關(guān)系良好，相關(guān)系數(shù)R2分別為0.9994和0.9996，兩者定量限（LOQ）分別為8.5 μg/L 和7.6 μg/L，MC 加標(biāo)回收率為76.29 %～85.73 %，RSD 為3.8 %～5.5 %，EC 加標(biāo)回收率為87.73 %～98.81 %，RSD 為2.8 %～3.0 %。該方法簡(jiǎn)便、高效、準(zhǔn)確、快速、靈敏度高，可為白酒中MC 和EC 的分析和監(jiān)管提供方法參考。

對(duì)15 批次樣品進(jìn)行檢測(cè)分析，檢測(cè)結(jié)果表明，15 批次酒樣中均未檢出MC，15 批次EC 檢出率為100 %，表明白酒樣品中EC 的殘留是普遍存在的[28-29]。小作坊玉米、高粱酒EC 平均含量最低，為21.41 μg/L；醬香型成品酒EC 平均含量次之，為101.8 μg/L；醬香型基酒EC 平均含量最高，為167.21 μg/L。小作坊酒主要以玉米和高粱為原料，生產(chǎn)周期短、發(fā)酵溫度低、發(fā)酵時(shí)間短，故而生成的EC 量較少。醬香型基酒經(jīng)過(guò)勾兌后，醬香型成品酒中EC 的平均含量顯著降低，該結(jié)果均與文獻(xiàn)報(bào)道一致[19]。不同類型白酒樣品中的EC 值存在顯著性差異，進(jìn)一步證實(shí)了白酒的生產(chǎn)工藝和儲(chǔ)存條件對(duì)EC含量的影響。

隨著廣大消費(fèi)者群體食品安全意識(shí)的不斷提升，推動(dòng)了白酒產(chǎn)業(yè)安全高質(zhì)量發(fā)展，白酒中EC存在的安全隱患不容忽視，MC 也為潛在的致癌物，因此，建議相關(guān)監(jiān)管部門完善白酒及其他酒精性飲料中EC、MC的風(fēng)險(xiǎn)監(jiān)測(cè)體系。