鄧明銣 鐘萍 許靖 劉俊汝 熊星星 袁海成
[摘要] 目的
探討生長激素促分泌受體1a(GHS-R1a)敲除對小鼠下丘腦小膠質(zhì)細(xì)胞表達(dá)的影響。
方法
選取12只6月齡GHS-R1a-/-雄性小鼠設(shè)為GHS-R1a-/-組,12只同月齡野生型(WT)雄性小鼠設(shè)為WT組。采用高架十字迷宮(EPM)實(shí)驗(yàn)測試兩組小鼠的焦慮水平,采用組織免疫熒光技術(shù)檢測兩組小鼠下丘腦小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量,采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qRT-PCR)技術(shù)檢測兩組小鼠下丘腦離子鈣結(jié)合接頭分子1(Iba1)、小膠質(zhì)細(xì)胞活化蛋白CD68和髓系細(xì)胞觸發(fā)受體2(Trem2)基因的表達(dá)水平。
結(jié)果 兩組小鼠EPM實(shí)驗(yàn)結(jié)果無顯著差異(P>0.05);組織免疫熒光技術(shù)檢測結(jié)果顯示,GHS-R1a-/-組小鼠下丘腦中小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量顯著多于WT組小鼠(t=4.61,P<0.05);qRT-PCR檢測結(jié)果顯示,GHS-R1a-/-組小鼠下丘腦Iba1和Trem2 mRNA表達(dá)水平顯著高于WT組小鼠(t=3.63、3.01,P<0.05),CD68 mRNA水平表達(dá)顯著低于WT組小鼠(t=3.79,P<0.05)。
結(jié)論
GHS-R1a基因敲除不影響小鼠的焦慮水平,但會(huì)導(dǎo)致小鼠下丘腦中小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量增加;GHS-R1a可能在抑制小膠質(zhì)細(xì)胞增殖及吞噬功能、促進(jìn)小膠質(zhì)細(xì)胞活化的過程中發(fā)揮調(diào)節(jié)作用。
[關(guān)鍵詞] 受體,胃促生長素;小神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞;鈣結(jié)合蛋白質(zhì)類;基因表達(dá)調(diào)控;下丘腦
[中圖分類號] R392.11;R338.27;R394??? [文獻(xiàn)標(biāo)志碼] A
小膠質(zhì)細(xì)胞作為大腦抵御病原體入侵的重要防線,在中樞神經(jīng)系統(tǒng)(CNS)免疫中發(fā)揮著重要作用,其分布于整個(gè)大腦和脊髓中,約占大腦細(xì)胞總數(shù)的5%~20%[1]。生理情況下,小膠質(zhì)細(xì)胞通常呈現(xiàn)小胞體、高度分支的狀態(tài),發(fā)揮監(jiān)測大腦內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)作用[2]。除監(jiān)視功能之外,小膠質(zhì)細(xì)胞還能吞噬有害物質(zhì)以維持CNS正常功能及調(diào)節(jié)大腦內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)平衡[3]。生長激素促分泌受體1a(GHS-R1a)是一種由366個(gè)氨基酸殘基及7次跨膜結(jié)構(gòu)域組成的G蛋白偶聯(lián)受體,廣泛分布于外周及中樞神經(jīng)系統(tǒng)[4],尤其在下丘腦和垂體廣泛表達(dá)[5]。GHS-R1a受體通常定位于神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細(xì)胞和少突膠質(zhì)細(xì)胞的細(xì)胞膜上[6],發(fā)揮相應(yīng)的生物活性作用。GHS-R1a受體除了影響機(jī)體生長發(fā)育、能量代謝,還參與調(diào)節(jié)人體學(xué)習(xí)記憶、食欲、氧化應(yīng)激反應(yīng)等生理過程,對多種疾病也具有重要影響[7]。研究顯示,下丘腦腹內(nèi)側(cè)核不僅參與外周代謝調(diào)控,其自身還能作為杏仁核的下游“效應(yīng)器”調(diào)控焦慮相關(guān)行為[8],但目前有關(guān)GHS-R1a是否參與調(diào)節(jié)下丘腦小膠質(zhì)細(xì)胞增殖過程未見報(bào)道,同時(shí)GHS-R1a參與調(diào)節(jié)焦慮發(fā)生的具體機(jī)制亦尚不明確。本研究利用GHS-R1a敲除(GHS-R1a-/-)小鼠檢測GHS-R1a對于小鼠焦慮水平和下丘腦小膠質(zhì)細(xì)胞及其相關(guān)因子表達(dá)水平的影響。
1 材料和方法
1.1 材料來源
GHS-R1a+/-小鼠購買于上海南方模式生物科技發(fā)展有限公司,下丘腦離子鈣結(jié)合接頭分子1(Iba1)一抗購自日本和光純藥工業(yè)株式會(huì)社,兔AF488二抗購買于美國Cell Signaling Technology公司,山羊血清、無酶水、RNA提取試劑盒、RNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購買于美國英杰生命技術(shù)有限公司,去RNA酶試劑購自美國賽默飛世爾科技公司,SYBR Green熒光定量試劑盒購自日本寶生物工程有限公司,氯化鈉、氨基甲酸乙酯、蔗糖購自美國西格瑪奧德里奇公司,包埋劑購自北京普利萊公司,多聚甲醛購自天津瑞金公司。
1.2 小鼠的來源及分組
GHS-R1a+/-小鼠遺傳背景為C57BL6J,非同窩GHS-R1a+/-雌雄小鼠間交配繁殖,待小鼠出生1個(gè)月以后基因鑒定,保留GHS-R1a-/-小鼠及野生型(WT)小鼠,分別設(shè)為GHS-R1a-/-組和WT組,每組各12只。兩組小鼠在溫度(21±2)℃、濕度(50±10)%、12/12 h晝夜交替光照、可自由飲水與取食的環(huán)境下飼養(yǎng)至6月齡。所有小鼠在行為學(xué)實(shí)驗(yàn)前至少適應(yīng)實(shí)驗(yàn)室環(huán)境1周,行為學(xué)實(shí)驗(yàn)環(huán)境需保證光線適度、整潔無異味、安靜無噪音干擾,適應(yīng)期間每天將小鼠放置于實(shí)驗(yàn)環(huán)境中1 h左右。
1.3 高架十字迷宮(EPM)實(shí)驗(yàn)檢測小鼠焦慮水平
EPM由1個(gè)中心區(qū)、2個(gè)封閉臂、2個(gè)開放臂五部分組成,將兩組小鼠頭朝向開放臂放入中心區(qū),攝像記錄5 min小鼠自由活動(dòng)過程。利用MATLAB 2018軟件分析并記錄小鼠在開放臂、封閉臂自由探索的時(shí)間及跑動(dòng)平均速度等參數(shù),以此為據(jù)判斷小鼠焦慮水平。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,結(jié)果取均值。
1.4 免疫熒光染色測定小鼠下丘腦小膠質(zhì)細(xì)胞分布密度
使用10%氨基甲酸乙酯麻醉各組小鼠后,固定于泡沫板上,切開小鼠胸腔,充分暴露心臟,將準(zhǔn)備好的注射器插入左心室,剪開右心房,推入50 mL生理鹽水,待從右心房流出的液體變澄清后拔出針頭。將小鼠開顱,完整取出腦組織,沿矢狀面切取一半腦組織置于裝有4%多聚甲醛溶液的EP管中固定,次日將溶液換為質(zhì)量濃度300 g/L的蔗糖溶液。待腦組織沉到EP管底后取出,用冰凍切片機(jī)將腦組織沿冠狀面40 μm厚切片,置于含有PBS緩沖液的24孔板中。將切片用PBS緩沖液清洗3次(每次10 min)后,使用封閉液常溫封閉1 h,再將Iba1一抗(1∶1 000)加入小鼠腦組織切片中,4 ℃下?lián)u床孵育過夜后再用PBS緩沖液清洗3次(每次10 min)后,加入兔AF488二抗(1∶500)室溫孵育1 h,PBS緩沖液清洗2次(每次10 min)后貼片,將含DAPI的封片液滴于載玻片,緩慢蓋上蓋玻片,于顯微鏡下拍照并保存。使用Image J軟件分析照片圖像從而得出小膠質(zhì)細(xì)胞密度。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,結(jié)果取均值。
1.5 實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qRT-PCR)技術(shù)檢測小鼠下丘腦離子鈣結(jié)合接頭分子(Iba1)、CD68和髓系細(xì)胞觸發(fā)受體2(Trem2)mRNA表達(dá)水平
將1.4中剩余部分下丘腦組織置于1.5 mL的無酶離心管中,加入裂解液研磨至混懸液后,4 ℃下12 000 r/min離心5 min;取上清液加入新無酶EP管中,并加入體積分?jǐn)?shù)0.7的乙醇溶液700 μL,渦旋振蕩后將液體加入分離柱,待洗脫蛋白質(zhì)及無機(jī)鹽后加入30 μL無酶水,將液體離心轉(zhuǎn)移至新無酶EP管中。用Nanodrop分光光度計(jì)測定RNA濃度后按RNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,按SYBR Green熒光定量試劑盒說明書配制反應(yīng)體系后擴(kuò)增,以GAPDH作為內(nèi)參照,計(jì)算Iba1、CD68及Trem2的相對表達(dá)水平。引物名稱及其序列見表1。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
采用Graph Pad Prism 6統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行處理。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料以[AKx-D]±s表示,兩組間比較采用雙尾t檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)? 果
2.1 兩組小鼠焦慮水平比較
EPM實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,GHS-R1a-/-組及WT組小鼠開放臂探索時(shí)間占總時(shí)間之比分別為(9.53±3.47)%、(8.73±5.65)%,平均速度分別為(4.56±0.77)、(4.69±0.87)cm/s,兩組小鼠上述指標(biāo)比較無顯著差異(P>0.05)。
2.2 兩組小鼠下丘腦小膠質(zhì)細(xì)胞密度比較
組織免疫熒光染色結(jié)果顯示,GHS-R1a-/-組與WT組下丘腦小膠質(zhì)細(xì)胞密度分別為(10.71±3.25)%和(4.38±0.87)%,GHS-R1a-/-組小鼠下丘腦中小膠質(zhì)細(xì)胞密度顯著高于WT組小鼠(t=4.61,P<0.05)。見圖1。
2.3 兩組小鼠下丘腦Iba1、CD68及Trem2 mRNA表達(dá)水平比較
qRT-PCR技術(shù)檢測結(jié)果顯示,GHS-R1a-/-組小鼠Iba1、CD68及Trem2 mRNA相對表達(dá)量分別為1.18±0.06、0.65±0.18、1.24±0.20,WT組小鼠上述指標(biāo)分別為1.01±0.04、1.43±0.47、0.92±0.16。GHS-R1a-/-組小鼠下丘腦Iba1和Trem2 mRNA表達(dá)水平顯著高于WT組(t=3.63、3.01,P<0.05),CD68 mRNA表達(dá)水平顯著低于WT組(t=3.79,P<0.05)。
3 討? 論
GHS-R1a作為G蛋白偶聯(lián)受體家族的重要成員,是胃饑餓素ghrelin的功能性受體,具有抗炎、抗細(xì)胞凋亡、參與學(xué)習(xí)記憶等生物學(xué)功能[6,9]。研究顯示,ghrelin在下丘腦-垂體-腎上腺軸應(yīng)激反應(yīng)中發(fā)揮著重要作用,在下丘腦注射ghrelin可引起小鼠短期內(nèi)的焦慮行為[10],但目前GHS-R1a調(diào)節(jié)情緒的具體機(jī)制尚不明確。此外,作為腦組織中GHS-R1a含量最高的部位,下丘腦除了在控制機(jī)體進(jìn)食、新陳代謝和能量平衡方面發(fā)揮著關(guān)鍵作用,還參與了伴隨情感活動(dòng)而出現(xiàn)的機(jī)體自主性活動(dòng)、軀體活動(dòng)及內(nèi)分泌活動(dòng),與情緒反應(yīng)有著密切關(guān)系[11]。研究顯示,在慢性壓力刺激下,下丘腦腹內(nèi)側(cè)核神經(jīng)元的簇狀放電也同時(shí)參與了焦慮與能量代謝的調(diào)控過程[12]。但本研究結(jié)果表明,GHS-R1a敲除對小鼠自發(fā)活動(dòng)及焦慮情緒無明顯影響。推測原因可能是由于焦慮的產(chǎn)生通常在短期實(shí)驗(yàn)中較易觀察,而本研究實(shí)驗(yàn)周期較長,小鼠對環(huán)境已經(jīng)適應(yīng),因此小鼠的焦慮狀況不明顯。
小膠質(zhì)細(xì)胞作為CNS中最重要的組織特異性巨噬細(xì)胞,可動(dòng)態(tài)檢測腦組織環(huán)境變化中的病原體及危險(xiǎn)信號,保護(hù)正常細(xì)胞的生理功能[13]。此外,小膠質(zhì)細(xì)胞還能與神經(jīng)元交互作用,在神經(jīng)元早期發(fā)育過程中修剪多余突觸,去除神經(jīng)元之間的多余連接[14]。當(dāng)CNS受到急性損傷時(shí),發(fā)揮防御保護(hù)功能的小膠質(zhì)細(xì)胞在數(shù)分鐘內(nèi)被激活,然后增殖、遷移到病變部位[15],從分支較多的形態(tài)變?yōu)閳A形或阿米巴樣形態(tài)[16],同時(shí)釋放相關(guān)炎癥因子,使得自身進(jìn)一步被激活,吞噬能力增強(qiáng)。但是在阿爾茨海默?。ˋD)和帕金森病等神經(jīng)退行性疾病過程中,慢性持續(xù)性炎癥會(huì)使小膠質(zhì)細(xì)胞被過度激活,造成機(jī)體正常組織受損[17-18]。研究顯示,小膠質(zhì)細(xì)胞對神經(jīng)元樹突棘的吞噬有助于消除由急性應(yīng)激引起的焦慮樣行為,但是目前對神經(jīng)元-小膠質(zhì)細(xì)胞相互作用的動(dòng)態(tài)機(jī)制及其在急性應(yīng)激所致焦慮的恢復(fù)中的作用機(jī)制仍未明確[8]。本研究中組織免疫熒光染色及qRT-PCR技術(shù)檢測結(jié)果均顯示,下丘腦中小膠質(zhì)細(xì)胞的數(shù)量因GHSR-1a敲降而明顯上調(diào),這可能與GHSR-1a缺失造成的小膠質(zhì)細(xì)胞重編程有關(guān),具體機(jī)制仍待進(jìn)一步探索。
Trem2屬于免疫球蛋白超家族成員,為一種單次跨膜受體,在CNS中特異性表達(dá)于小膠質(zhì)細(xì)胞膜表面[19],其配體包括陰離子、兩性離子、磷脂、糖脂、凋亡細(xì)胞、脂質(zhì)化顆粒和脂蛋白等[20-21]。研究顯示,Trem2缺乏與AD早期β-淀粉樣蛋白負(fù)荷的降低有關(guān),Trem2在AD代謝穩(wěn)態(tài)當(dāng)中發(fā)揮著重要的作用[22]。另有研究顯示,Trem2的缺失可降低小膠質(zhì)細(xì)胞對凋亡細(xì)胞、細(xì)胞碎片和細(xì)菌的吞噬作用[23]。
Iba1是一種相對分子量為17 000的鈣結(jié)合蛋白,在CNS中特異表達(dá),通常在活化的小膠質(zhì)細(xì)胞中表達(dá)增加,是小膠質(zhì)細(xì)胞的標(biāo)志物。
CD68是一種相對分子質(zhì)量為110 000跨膜糖蛋白,主要在小膠質(zhì)細(xì)胞和巨噬細(xì)胞溶酶體中表達(dá),不僅能作為小膠質(zhì)細(xì)胞被激活的標(biāo)志,還在腫瘤的免疫調(diào)節(jié)及預(yù)后中起重要作用[24]。本研究結(jié)果顯示,GHS-R1a敲除可使Iba1、Trem2基因表達(dá)水平上調(diào),CD68基因表達(dá)水平下調(diào),表明GHS-R1a受體可能抑制小鼠下丘腦小膠質(zhì)細(xì)胞的吞噬功能,并促進(jìn)小膠質(zhì)細(xì)胞的活化。盡管GHS-R1a在CNS中廣泛分布,但是目前在小膠質(zhì)細(xì)胞中未檢測到其表達(dá)[25]。因此我們猜測GHS-R1a敲除可能通過影響神經(jīng)元或星形膠質(zhì)細(xì)胞與小膠質(zhì)細(xì)胞之間的相互作用,造成小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量的上調(diào),但具體機(jī)制仍需進(jìn)一步探討。
綜上所述,GHS-R1a敲除對小鼠的自發(fā)焦慮水平無明顯影響,但能引起下丘腦小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量及Iba1、CD68及Trem2表達(dá)水平的變化,GHS-R1a可能在抑制小膠質(zhì)細(xì)胞增殖及吞噬功能、促進(jìn)小膠質(zhì)細(xì)胞活化的過程中發(fā)揮調(diào)節(jié)作用。
倫理批準(zhǔn)和動(dòng)物權(quán)利聲明:本研究涉及的所有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)均已通過青島大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物福利倫理委員會(huì)的審核批準(zhǔn)(文件號20220701Ghs-R1aKO2620231120101)。所有實(shí)驗(yàn)過程均遵照《倫理委員會(huì)標(biāo)準(zhǔn)》條例進(jìn)行。
[參考文獻(xiàn)]
[1]ZHANG L J, CAO Y, ZHANG X, et al. The origin and repopulation of microglia[J]. Dev Neurobiol, 2022,82(1):112-124.
[2]YANG Y, ZHAO X Y, ZHU Z R, et al. Vascular dementia: A microglias perspective[J]. Ageing Res Rev, 2022,81:101734.
[3]MERIGHI S, NIGRO M, TRAVAGLI A, et al. Microglia and Alzheimers disease[J]. Int J Mol Sci, 2022,23(21):12990.
[4]XIAO X, BI M X, JIAO Q, et al. A new understanding of GHSR1a: Independent of ghrelin activation[J]. Ageing Res Rev, 2020,64:101187.
[5]RINGUET M T, FURNESS J B, FURNESS S G B. G protein-coupled receptor interactions and modification of signalling involving the ghrelin receptor, GHSR1a[J]. J Neuroendocrinol, 2022,34(9):e13077.
[6]LENG F D, EDISON P. Neuroinflammation and microglial activation in Alzheimers disease: Where do we go from here?[J]. Nat Rev Neurol, 2021,17(3):157-172.
[7]NGUYEN P T, DORMAN L C, PAN S, et al. Microglial remodeling of the extracellular matrix promotes synapse plasticity[J]. Cell, 2020,182(2):388-403.e15.
[8]CHEN D Y, LOU Q Q, SONG X J, et al. Microglia govern the extinction of acute stress-induced anxiety-like behaviors in male mice[J]. Nat Commun, 2024,15(1):449.
[9]LI N, LI N, XU F H, et al. Selectively increasing GHS-R1a expression in dCA1 excitatory/inhibitory neurons have opposite effects on memory encoding[J]. Mol Brain, 2021,14(1):157.
[10]SPENCER S J, EMMERZAAL T L, KOZICZ T, et al. Ghrelins role in the hypothalamic-pituitary-adrenal axis stress response: Implications for mood disorders[J]. Biol Psychiatry, 2015,78(1):19-27.
[11]TROUBAT R, BARONE P, LEMAN S, et al. Neuroinflammation and depression: A review[J]. Eur J Neurosci, 2021,53(1):151-171.
[12]MULLUR R, LIU Y Y, BRENT G A. Thyroid hormone regulation of metabolism[J]. Physiol Rev, 2014,94(2):355-382.
[13]MATULEVICIUTE R, AKINLUYI E T, MUNTSLAG T A O, et al. Microglial contribution to the pathology of neurodevelopmental disorders in humans[J]. Acta Neuropathol, 2023,146(5):663-683.
[14]SABATE-SOLER S, NICKELS S L, SARAIVA C, et al. Microglia integration into human midbrain organoids leads to increased neuronal maturation and functionality[J]. Glia, 2022,70(7):1267-1288.
[15]ZAKI Y, CAI D J. Creating space for synaptic formation——A new role for microglia in synaptic plasticity[J]. Cell, 2020,182(2):265-267.
[16]MCNAMARA N B, MUNRO D A D, BESTARD-CUCHE N, et al. Microglia regulate central nervous system myelin growth and integrity[J]. Nature, 2023,613(7942):120-129.
[17]DHAPOLA R, HOTA S S, SARMA P, et al. Recent advances in molecular pathways and therapeutic implications targeting neuroinflammation for Alzheimers disease[J]. Inflammopharmacology, 2021,29(6):1669-1681.
[18]MAYO S, BENITO-LEN J, PEA-BAUTISTA C, et al. Recent evidence in epigenomics and proteomics biomarkers for early and minimally invasive diagnosis of Alzheimers and Parkinsons diseases[J]. Curr Neuropharmacol, 2021,19(8):1273-1303.
[19]WANG Y, CUI L M, ZHAO H, et al. Exploring the connectivity of neurodegenerative diseases: Microglia as the center[J]. J Inflamm Res, 2023,16:6107-6121.
[20]ZHOU Y Y, SONG W M, ANDHEY P S, et al. Human and mouse single-nucleus transcriptomics reveal TREM2-dependent and TREM2-independent [JP2]cellular responses in Alzheimers?disease[J]. Nat Med, 2020,26(1):131-142.
[21]MOLGORA M, ESAULOVA E, VERMI W, et al. TREM2 modulation remodels the tumor myeloid landscape enhancing anti-PD-1 immunotherapy[J]. Cell, 2020,182(4):886-900.e17.
[22]WANG M, WEI T, YU C J, et al. Integrative metabolomics and whole transcriptome sequencing reveal role for TREM2 in metabolism homeostasis in Alzheimers disease[J]. Mol Neurobiol, 2023. Doi:10.1007/s12035-023-03840-8.
[23]PESMAA I, MLLER S A, ROBINSON S, et al. A microglial activity state biomarker panel differentiates FTD-granulin and Alzheimers disease patients from controls[J]. Mol Neurodegener, 2023,18(1):70.
[24]ZHANG J W, LI S W, LIU F K, et al. Role of CD68 in tumor immunity and prognosis prediction in pan-cancer[J]. Sci Rep, 2022,12(1):7844.
[25]BOS E M J, SANGLE S R, WILHELMUS S, et al. Use of glomerular CD68+ cells as a surrogate marker for endocapillary hypercellularity in lupus nephritis[J]. Kidney Int Rep, 2022,7(4):841-847.