鄭雨 馬磊 李睿智 牟潔 李菁 王棟 祝海
[摘要] 目的
探討細(xì)胞外基質(zhì)硬度對人前列腺癌細(xì)胞LNCaP可塑性調(diào)控的作用。
方法 將人LNCaP細(xì)胞分別于楊氏模量為3 GPa(A組)、20 kPa(B組)、6 kPa(C組)和1 kPa(D組)四種不同硬度細(xì)胞外基質(zhì)培養(yǎng)皿中培養(yǎng)1周。采用明場顯微鏡及熒光顯微鏡觀察各組細(xì)胞在不同硬度基底上的形態(tài);采用實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(RT-qPCR)技術(shù)檢測各組細(xì)胞的管腔細(xì)胞標(biāo)志物基因AR、CK8、CK18、PSA,基底細(xì)胞標(biāo)志物基因CK5、P63,以及增殖基因KI67、PCNA的表達(dá)水平。
結(jié)果 明場顯微鏡及熒光顯微鏡觀察結(jié)果顯示,A組人LNCaP細(xì)胞呈現(xiàn)典型鋪展上皮細(xì)胞形態(tài),而B~D組均呈現(xiàn)團(tuán)聚小細(xì)胞片狀態(tài),且D組細(xì)胞形成了三維類器官結(jié)構(gòu)。RT-qPCR結(jié)果顯示,四組人LNCaP細(xì)胞中KI67、P63基因表達(dá)水平無顯著差異(P>0.05);B組PCNA基因表達(dá)水平顯著高于A、C組(F=34.96,t=8.39、6.37,P<0.05);B組CK5基因表達(dá)水平顯著高于其他三組(F=29.35,t=4.46~6.73,P<0.05);D組AR、CK8、CK18、PSA基因表達(dá)水平顯著高于其他三組(F=13.66~56.43,t=3.03~11.51,P<0.05)。
結(jié)論 硬度較低(楊氏模量1 kPa)的細(xì)胞外基質(zhì)環(huán)境能較好維持人LNCaP細(xì)胞的管腔細(xì)胞特征,而硬度較高(楊氏模量20 kPa)的細(xì)胞外基質(zhì)能使人LNCaP細(xì)胞呈現(xiàn)出中間態(tài)細(xì)胞表型,或許是導(dǎo)致前列腺癌發(fā)生的因素之一。
[關(guān)鍵詞] 前列腺腫瘤;細(xì)胞系,腫瘤;細(xì)胞外基質(zhì);細(xì)胞可塑性
[中圖分類號] R737.25;R329.24??? [文獻(xiàn)標(biāo)志碼] A
前列腺癌發(fā)生發(fā)展的過程中往往伴隨著癌細(xì)胞可塑性的變化。細(xì)胞可塑性是指一種類型的細(xì)胞變成另一種類型細(xì)胞的過程[1]。癌細(xì)胞的可塑性特性可使前列腺癌細(xì)胞逃避靶向藥物作用,從而促進(jìn)腫瘤細(xì)胞存活,與腫瘤侵襲性增加密切相關(guān),給臨床腫瘤治療增加極大難度[2]。細(xì)胞外基質(zhì)是腫瘤早期或中期微環(huán)境發(fā)生改變的因素之一,可影響細(xì)胞的行為和表型[3],與實(shí)體腫瘤的發(fā)生有著緊密的聯(lián)系[4]。實(shí)體腫瘤的發(fā)生發(fā)展往往同時(shí)伴隨著腫瘤硬度的增加[5]。細(xì)胞外基質(zhì)的成分和生物力學(xué)性質(zhì)的改變可為前列腺癌細(xì)胞創(chuàng)造適當(dāng)?shù)纳L條件,從而促進(jìn)前列腺癌發(fā)展及癌細(xì)胞的侵襲性和耐藥性[6]。目前國內(nèi)外有關(guān)細(xì)胞外基質(zhì)對前列腺癌細(xì)胞可塑性影響的研究較少,本研究在實(shí)驗(yàn)室前期建立的細(xì)胞外基質(zhì)硬度可調(diào)的基礎(chǔ)上,探究細(xì)胞外基質(zhì)硬度對人前列腺細(xì)胞LNCaP的可塑性調(diào)控作用,以求為控制前列腺癌進(jìn)展提供新思路。
1 材料和方法
1.1 實(shí)驗(yàn)材料
人LNCaP細(xì)胞、細(xì)胞培養(yǎng)基1640、胎牛血清、PBS磷酸緩沖液均購自武漢普諾賽生命科技有限公司,青霉素、鏈霉素、兩性霉素B溶液的三抗溶液購自上海生物科技股份有限公司,胰蛋白酶購自青島艾菲特生工生物科技有限公司,反轉(zhuǎn)錄試劑及其試劑盒購自湖南艾科瑞生物工程有限公司,Trizol試劑、Nanodrop儀購自美國Thermo Fisher科技有限公司,OCT包埋劑、倒置熒光顯微鏡購自美國賽默飛世爾科技有限公司,DAPI熒光染料購自北京索萊寶生物科技有限公司,電動(dòng)明場顯微鏡購自日本Nikon公司,4%多聚甲醛固定液購自武漢卡諾斯科技有限公司,蔗糖購自上海阿拉丁生化科技有限公司,實(shí)驗(yàn)用離心管、培養(yǎng)皿和槍頭耗材購自上海依科賽生物技術(shù)有限公司。
1.2 人LNCaP細(xì)胞的分組與培養(yǎng)
將實(shí)驗(yàn)室前期配制好的細(xì)胞外基質(zhì)溶液[7]倒入培養(yǎng)皿中孵育1 h,用PBS磷酸緩沖液清洗普通聚苯乙烯培養(yǎng)皿基底(楊氏模量約為3 GPa)作為A組,將不同容量的細(xì)胞外基質(zhì)溶液倒入培養(yǎng)皿中,置于無菌干燥盒中37 ℃干燥48~72 h,得到楊氏模量約為20 kPa(B組)、6 kPa(C組)和1 kPa(D組)的胞外基質(zhì)基底。將人LNCaP細(xì)胞在含體積分?jǐn)?shù)0.05 CO2、溫度36~37 ℃、濕度95%的環(huán)境下培養(yǎng)7 d后,在電動(dòng)明場顯微鏡下觀察細(xì)胞,當(dāng)細(xì)胞鋪占整個(gè)培養(yǎng)皿約80%的面積時(shí),用質(zhì)量濃度2.5 g/L的胰蛋白酶將大片狀細(xì)胞完全消化后,移至脫落細(xì)胞培養(yǎng)皿進(jìn)行計(jì)數(shù)。分別取約3×105個(gè)細(xì)胞量種植于上述四組細(xì)胞外基質(zhì)基底上進(jìn)行培養(yǎng),四組細(xì)胞每天更換相應(yīng)培養(yǎng)基5 mL,培養(yǎng)環(huán)境同前,培養(yǎng)7 d后備用。
1.3 顯微鏡觀察各組細(xì)胞形態(tài)
使用電動(dòng)明場顯微鏡觀察1.2中各組細(xì)胞形態(tài)并拍照。用4%多聚甲醛固定四組細(xì)胞30 min,每組細(xì)胞均依次浸沒于質(zhì)量濃度150、300 g/L的蔗糖溶液中各24 h進(jìn)行脫水處理,隨后包埋于OCT包埋劑中進(jìn)行冰凍切片。加入DAPI熒光染料染色30 min后封片,隨后進(jìn)行熒光顯微鏡觀察拍照。
1.4 實(shí)時(shí)熒光定量PCR(RT-qPCR)法檢測各組細(xì)胞相關(guān)基因表達(dá)水平
取1.2中各組細(xì)胞,每組各取部分使用Trizol試劑提取人LNCaP細(xì)胞總RNA,使用Nanodrop儀測定RNA濃度與純度。按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒使用說明書將RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,使用RT-qPCR法檢測各組細(xì)胞中管腔細(xì)胞標(biāo)志物基因AR、CK8、CK18、PSA,基底細(xì)胞標(biāo)志物基因CK5、P63,以及增殖基因KI67、PCNA表達(dá)水平,以GAPDH為內(nèi)參,引物名稱及其序列見表1。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
使用GraphPad Prism 8.0.2軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,符合正態(tài)分布的計(jì)量資料以[AKx-D]±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。以P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)? 果
2.1 四組細(xì)胞的形態(tài)學(xué)比較
電動(dòng)明場顯微鏡及熒光顯微鏡觀察結(jié)果顯示,A組人LNCaP細(xì)胞鋪展良好,呈現(xiàn)典型的單層上皮細(xì)胞形態(tài),B~D組中人LNCaP細(xì)胞以團(tuán)聚的小細(xì)胞片形式生長,且D組人LNCaP細(xì)胞生長為三維類器官結(jié)構(gòu)。見圖1、2。
2.2 四組細(xì)胞中管腔細(xì)胞標(biāo)志物、基底細(xì)胞標(biāo)志物及增殖基因表達(dá)水平比較
RT-qPCR檢測結(jié)果顯示,B組細(xì)胞增殖基因PCNA表達(dá)水平顯著高于A、C組(F=34.96,t=8.39、6.37,P<0.05),增殖基因KI67表達(dá)水平四組間無顯著差異(P>0.05);D組管腔細(xì)胞標(biāo)志物基因AR、CK18、CK8、PSA表達(dá)水平顯著高于其他三組(F=13.66~56.43,t=3.03~11.51,P<0.05);B組基底細(xì)胞標(biāo)志物基因CK5表達(dá)水平顯著高于其他三組(F=29.35,t=4.46~6.73,P<0.05),而基底細(xì)胞標(biāo)志物基因P63表達(dá)水平四組間無顯著差異(P>0.05)。見表1。
3 討? 論
傳統(tǒng)觀點(diǎn)認(rèn)為細(xì)胞外基質(zhì)只是一個(gè)簡單的組織細(xì)胞支持結(jié)構(gòu),但隨著研究的不斷深入,細(xì)胞外基質(zhì)的結(jié)構(gòu)復(fù)雜性和功能多樣性被逐漸認(rèn)識[8-9]。細(xì)胞外基質(zhì)是細(xì)胞賴以生存的微環(huán)境,且直接參與細(xì)胞間的力學(xué)轉(zhuǎn)導(dǎo)、信息傳遞、調(diào)節(jié)干細(xì)胞行為等一系列生物學(xué)活動(dòng)[10-11]。癌細(xì)胞的增殖、存活及其侵襲能力也在很大程度上依賴于腫瘤微環(huán)境中的細(xì)胞外基質(zhì)[12],反之癌細(xì)胞也可重塑胞外基質(zhì),兩者相互作用從而導(dǎo)致腫瘤的生長、擴(kuò)散及轉(zhuǎn)移[13-14]。不同硬度的細(xì)胞外基質(zhì)可以調(diào)節(jié)腫瘤的基因型和表型,誘導(dǎo)癌細(xì)胞表型變化[15]。腫瘤轉(zhuǎn)移的基本特征包括侵襲性、可塑性、微環(huán)境調(diào)節(jié)能力及在侵襲組織中定殖能力,這些特征都與細(xì)胞外基質(zhì)的性質(zhì)(組成、密度和硬度等)緊密相關(guān)[16-17]。
大多數(shù)前列腺癌細(xì)胞屬于管腔細(xì)胞類型,其管腔細(xì)胞標(biāo)志物AR和PSA基因表達(dá)水平較高[18]。本研究選擇人LNCaP細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,原因?yàn)長NCaP細(xì)胞系具有較為明顯的上皮細(xì)胞特性,細(xì)胞分裂速度較快[19],對雄激素較敏感[20],且表達(dá)管腔細(xì)胞的關(guān)鍵生物標(biāo)志物基因AR、PSA等,這些特點(diǎn)使其廣泛應(yīng)用于前列腺癌的研究。本研究結(jié)果顯示,不同硬度的細(xì)胞外基質(zhì)能夠影響人LNCaP細(xì)胞形態(tài),人LNCaP細(xì)胞在軟基底上較易團(tuán)聚成小細(xì)胞片,尤其是在D組基底(楊氏模量1 kPa)上形成三維類器官球狀結(jié)構(gòu),而在較硬的A組基質(zhì)(楊氏模量3 GPa)上鋪展良好,形成緊密的單層上皮細(xì)胞層,這意味著硬基底可能促進(jìn)人LNCaP細(xì)胞的相互連接和遷移。
本研究針對人LNCaP細(xì)胞增殖能力,檢測了細(xì)胞中兩種增殖標(biāo)志物基因KI67和PCNA,結(jié)果顯示B組(楊氏模量20 kPa)PCNA表達(dá)水平顯著高于A、C組(楊氏模量3、6 kPa),而另一種增殖基因KI67表達(dá)水平四組間無顯著差異。該結(jié)果表明細(xì)胞外基質(zhì)硬度對于腫瘤細(xì)胞增殖能力的調(diào)節(jié)可能是非線性的,即在某些特定細(xì)胞外基質(zhì)硬度范圍內(nèi),腫瘤細(xì)胞增殖相關(guān)基因表達(dá)才隨硬度增高而上調(diào),該結(jié)果有待后續(xù)深入研究。
腫瘤細(xì)胞的可塑性是近年來前列腺癌研究領(lǐng)域的熱點(diǎn)之一。本研究結(jié)果顯示,D組細(xì)胞的管腔細(xì)胞標(biāo)志物AR、CK8、CK18、PSA表達(dá)最高,表明軟細(xì)胞外基質(zhì)環(huán)境更有利于管腔細(xì)胞的表型維持和生長。另外,B組細(xì)胞的基底細(xì)胞標(biāo)志物CK5表達(dá)水平顯著高于其他三組,該結(jié)果表明基底軟硬程度可調(diào)節(jié)LNCaP細(xì)胞的可塑性。在B組細(xì)胞外基質(zhì)中,人LNCaP細(xì)胞同時(shí)具備管腔細(xì)胞和基底細(xì)胞的特征,呈現(xiàn)出中間態(tài)細(xì)胞的特征。中間態(tài)細(xì)胞是人胚胎發(fā)育過程中短暫出現(xiàn)的一種細(xì)胞類型,在成人前列腺組織中數(shù)量減少,中間態(tài)細(xì)胞可能是前列腺癌的重要細(xì)胞來源。本研究結(jié)果提示細(xì)胞外基質(zhì)硬度的增強(qiáng)可能在前列腺癌中間態(tài)細(xì)胞形成的調(diào)控中發(fā)揮作用。
另外,本研究具有一定的局限性,如體外實(shí)驗(yàn)與體內(nèi)真實(shí)情況具有一定差異。本研究所利用的體外模型是基于不同厚度的細(xì)胞外基質(zhì)所呈現(xiàn)硬度(楊氏模量)的不同[21-22],然而體內(nèi)影響細(xì)胞外基質(zhì)的腫瘤微環(huán)境更為復(fù)雜,如細(xì)胞外基質(zhì)的重排、交聯(lián)、沉積及特定細(xì)胞外基質(zhì)蛋白的降解等[23-24],另外體內(nèi)外細(xì)胞外基質(zhì)的蛋白成分也有一定差異[25]。上述差異是本研究難以模擬的部分,有待后續(xù)研究進(jìn)一步改進(jìn)。
本研究比較了四種不同硬度的細(xì)胞外基質(zhì)對人LNCaP細(xì)胞的可塑性影響,發(fā)現(xiàn)硬度較低(楊氏模量1 kPa)的細(xì)胞外基質(zhì)環(huán)境能較好維持前列腺細(xì)胞的管腔細(xì)胞特征,而硬度較高(楊氏模量20 kPa)的細(xì)胞外基質(zhì)能使人LNCaP細(xì)胞呈現(xiàn)出中間態(tài)細(xì)胞表型,或許是導(dǎo)致前列腺癌發(fā)生的因素之一。
[參考文獻(xiàn)]
[1]SHENOY S. Cell plasticity in cancer: A complex interplay of genetic, epigenetic mechanisms and tumor micro-environment[J]. Surg Oncol, 2020,34:154-162.
[2]YAM G H, PEH G S, SINGHAL S, et al. Dental stem cells: A future asset of ocular cell therapy[J]. Expert Rev Mol Med, 2015,17:e20.
[3]KARAMANOS N K, THEOCHARIS A D, PIPERIGKOU Z, et al. A guide to the composition and functions of the extracellular matrix[J]. FEBS J, 2021,288(24):6850-6912.
[4]EMON B, BAUER J, JAIN Y, et al. Biophysics of tumor microenvironment and cancer metastasis——A mini review[J]. Comput Struct Biotechnol J, 2018,16:279-287.
[5]HAYWARD M K, MUNCIE J M, WEAVER V M. Tissue mechanics in stem cell fate, development, and cancer[J]. Dev Cell, 2021,56(13):1833-1847.
[6]KANG J N, MANNA F L, BONOLLO F, et al. Tumor microenvironment mechanisms and bone metastatic disease progression of prostate cancer[J]. Cancer Lett, 2022,530:156-169.
[7]YU Y L, LENG Y, SONG X Y, et al. Extracellular matrix stiffness regulates microvascular stability by controlling endothelial paracrine signaling to determine pericyte fate[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2023,43(10):1887-1899.
[8]PANG B R, ZHU Y, NI J, et al. Extracellular vesicles: The next generation of biomarkers for liquid biopsy-based prostate cancer diagnosis[J]. Theranostics, 2020,10(5):2309-2326.
[9]SEIM I, JEFFERY P L, THOMAS P B, et al. Whole-genome sequence of the metastatic PC3 and LNCaP human prostate cancer cell lines[J]. G3, 2017,7(6):1731-1741.
[10]BARTZ R, ZHOU J, HSIEH J T, et al. Caveolin-1 secreting LNCaP cells induce tumor growth of caveolin-1 negative LNCaP cells in vivo[J]. Int J Cancer, 2008,122(3):520-525.
[11]LI L, HE M Z, TANG X M, et al. Proteomic landscape of the extracellular matrix in the fibrotic kidney[J]. Kidney Int, 2023,103(6):1063-1076.
[12]ARWERT E N, HOSTE E, WATT F M. Epithelial stem cells, wound healing and cancer[J]. Nat Rev Cancer, 2012,12(3):170-180.
[13]LI Z H, LEI L, FEI L R, et al. TRIP13 promotes the proliferation and invasion of lung cancer cells via the Wnt signaling pathway and epithelial-mesenchymal transition[J]. J Mol Histol, 2021,52(1):11-20.
[14]SHEN J M, SUN C, WANG Z C, et al. Sequential receptor-mediated mixed-charge nanomedicine to target pancreatic cancer, inducing immunogenic cell death and reshaping the tumor microenvironment[J]. Int J Pharm, 2021,601:120553.
[15]STANTON A E, TONG X M, YANG F. Extracellular matrix type modulates mechanotransduction of stem cells[J]. Acta Biomater, 2019,96:310-320.
[16]PANDEY N, ANASTASIADIS P, CARNEY C P, et al. Nanotherapeutic treatment of the invasive glioblastoma tumor [JP2]microenvironment[J]. Adv Drug Deliv Rev, 2022,188:114415.
[17]YAMADA K M, SIXT M. Mechanisms of 3D cell migration[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2019,20(12):738-752.
[18]CHAUDHURI O, KOSHY S T, BRANCO DA CUNHA C, et al. Extracellular matrix stiffness and composition jointly regulate the induction of malignant phenotypes in mammary epithelium[J]. Nat Mater, 2014,13(10):970-978.
[19]KATARA G K, KULSHRESTHA A, MAO L Q, et al. Mammary epithelium-specific inactivation of V-ATPase reduces stiffness of extracellular matrix and enhances metastasis of breast cancer[J]. Mol Oncol, 2018,12(2):208-223.
[20]GKRETSI V, STYLIANOPOULOS T. Cell adhesion and matrix stiffness: Coordinating cancer cell invasion and metastasis[J]. Front Oncol, 2018,8:145.
[21]LIU Y Y, LV J D, LIANG X Y, et al. Fibrin stiffness mediates dormancy of tumor-repopulating cells via a Cdc42-driven Tet2 epigenetic program[J]. Cancer Res, 2018,78(14):3926-3937.
[22]TOROK N J. P300, a new player in mechanosensitivity and activation of cancer-associated fibroblasts[J]. Gastroenterology, 2018,154(8):2025-2026.
[23]WONG H Y, SHENG Q H, HESTERBERG A B, et al. Single cell analysis of cribriform prostate cancer reveals cell intrinsic and tumor microenvironmental pathways of aggressive disease[J]. Nat Commun, 2022,13(1):6036.
[24]SAMARIJA I, KONJEVODA P. Extracellular matrix- and integrin adhesion complexes-related genes in the prognosis of prostate cancer patients' progression-free survival[J]. Biomedicines, 2023,11(7):2006.
[25]SUCKOW M A, HILES M C. Use of conditioned extracellular matrix as a tissue-engineered tumor matrisome for prostate cancer and melanoma immunotherapy[J]. Anticancer Res, 2023,43(1):335-341.