董秋麗,夏方山,董寬虎
(山西農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,山西 太谷030801)
土壤鹽漬化是人類面臨的世界性問(wèn)題,全球約有100多個(gè)國(guó)家存在不同類型鹽堿地,占陸地面積的10%左右[1],其引起的滲透脅迫已對(duì)植物的生長(zhǎng)和產(chǎn)量造成了很大的影響。在滲透脅迫下,植物能否保持正常生長(zhǎng)狀況,關(guān)鍵在于能否維持體內(nèi)的水分平衡,而這正是通過(guò)積累一定量的溶質(zhì),降低植物體內(nèi)的水勢(shì)實(shí)現(xiàn)的[2]。脯氨酸是公認(rèn)的在細(xì)胞中起著無(wú)毒滲透保護(hù)作用的細(xì)胞相溶性物質(zhì),它被廣泛的積累在各器官中,Pro的積累受多種因素的調(diào)控,如:它自身的合成、分解,用于蛋白質(zhì)的合成及在不同器官中的運(yùn)輸[3]。植物的Pro合成、累積及代謝是一個(gè)受非生物脅迫和細(xì)胞內(nèi)Pro濃度調(diào)控的生理生化過(guò)程[4,5]。已證明植物體內(nèi)存在2條Pro合成途徑,根據(jù)起始氨基酸命名為Glu途徑和Orn途徑,P5CS和δ-OAT分別是這2個(gè)途徑的關(guān)鍵酶。支立峰等[6]用飛蛾豆(Vignaaconitifolia)中的P5CS基因轉(zhuǎn)化水稻(Oryzaglaberrima),再用250 mmol/L NaCl脅迫處理后,轉(zhuǎn)基因細(xì)胞的Pro含量提高,同時(shí)轉(zhuǎn)基因細(xì)胞的耐鹽性比野生型增強(qiáng)。陳吉寶等[7]發(fā)現(xiàn)脅迫下普通菜豆幼苗葉和根中脯氨酸合成酶基因PvP5CS2的轉(zhuǎn)錄水平快速上升,隨著脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),轉(zhuǎn)錄水平逐漸下降;在逆境脅迫下,幼苗葉和根中Pro大量積累,高峰出現(xiàn)在Pv P5CS2基因表達(dá)高峰之后。徐春波等[8]將P5CS去除反饋抑制的突變型P5CS-F129A基因轉(zhuǎn)入冰草(Agropyron)導(dǎo)致植物體中Pro含量成倍增加。這些結(jié)果均說(shuō)明,PvP5CS2基因的表達(dá)受干旱、高鹽和冷脅迫誘導(dǎo),Pro積累受PvP5CS2基因轉(zhuǎn)錄水平的調(diào)控。Roosens等[9]發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)δ-OAT基因煙草合成的Pro在無(wú)脅迫時(shí)比對(duì)照高3倍,且組成型超表達(dá)δ-OAT基因并沒(méi)有影響植物在正常條件下的生長(zhǎng);在0.2 mol/L NaCl或等滲的甘露醇脅迫下,轉(zhuǎn)基因株系積累的Pro比對(duì)照高1.5倍,而且有更高的生物量和萌發(fā)率。有研究表明,不同植物、不同組織、不同生理?xiàng)l件下2條途徑對(duì)Pro積累的貢獻(xiàn)大小存在差異[10]。Pro合成過(guò)程中究竟是哪一條途徑居于主導(dǎo)地位,還有待進(jìn)一步研究。
芨芨草(Achnatherumsplendens)屬禾本科芨芨草屬旱中生多年草本植物,也是一種泌鹽植物,具有很強(qiáng)的抗鹽堿性[11,12]。目前,對(duì)于芨芨草耐鹽性的研究很少[12,13],多見(jiàn)于種植芨芨草生態(tài)經(jīng)濟(jì)效益方面的研究。而通過(guò)生物措施進(jìn)行鹽堿地改良是經(jīng)濟(jì)長(zhǎng)久的方法,牧草在鹽堿地改良利用中具有重要作用和利用前景[14]。因此,研究芨芨草鹽脅迫下的生理變化及耐鹽性機(jī)理,對(duì)于改良鹽堿草地具有重要的實(shí)踐意義。對(duì)其苗期鹽脅迫下Pro代謝途徑進(jìn)行研究,明確在鹽脅迫下芨芨草的Pro代謝途徑及在不同器官中的運(yùn)輸,以期為鹽堿地植被恢復(fù)與改良提供科學(xué)依據(jù)。
試驗(yàn)用芨芨草種子于2008年10月13日采自山西省偏關(guān)縣天峰坪鎮(zhèn)梨園村的農(nóng)田地埂,海拔1 018 m,111°22′19.1″E,39°27′56.8″N。
本試驗(yàn)在山西農(nóng)業(yè)大學(xué)草業(yè)科學(xué)系日光能溫室進(jìn)行。將種子(100粒/盆)播種于蛭石與珍珠巖體積比為1∶1的塑料盆中(直徑25 cm、高20 cm),插入PVC管以便澆水及營(yíng)養(yǎng)液,置于晝夜溫度為25/17℃,相對(duì)濕度為65%~80%的溫室條件下進(jìn)行培養(yǎng)。出苗后,每隔2 d用Hoagland營(yíng)養(yǎng)液澆灌1次,處理于17:00-20:00時(shí)進(jìn)行。其余時(shí)間用蒸餾水補(bǔ)充失水,以稱重法確定失水量,當(dāng)苗齡達(dá)2~3周時(shí)每盆定苗60株。當(dāng)出苗7周后對(duì)其進(jìn)行鹽分脅迫,以0(CK),100,200,300,400和500 mmol/L NaCl 6個(gè)濃度的營(yíng)養(yǎng)液為處理液,隔天按100 mmol/L梯度進(jìn)行遞增,直至達(dá)到指定濃度,對(duì)照只灌完全營(yíng)養(yǎng)液,3次重復(fù),采用隨機(jī)區(qū)組設(shè)計(jì)。每組鹽脅迫1周后,分別采集其葉片和根系,置于-80℃冰箱保存,進(jìn)行相關(guān)指標(biāo)的測(cè)定。
1.3.1 Pro含量的測(cè)定 按照Bates等[15]的方法。
1.3.2 P5CS的測(cè)定 P5CS的抽提方法按照Kavi Kishor等[16]的方法進(jìn)行。蛋白含量以牛血清蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì),按照Bradford[17]的方法。P5CS活性測(cè)定按照 Garcia-Rios等[18]的方法進(jìn)行。
1.3.3 δ-OAT活性的測(cè)定 粗酶提取按照Roosens等[19]的方法進(jìn)行,蛋白含量以牛血清蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì),參照Bradford[17]的方法。
δ-OAT活性的測(cè)定參照Kim等[20]的方法,略做改動(dòng)。反應(yīng)體系為:50 mmol/L的磷酸緩沖液、35 mmol/L L-鳥氨酸、5 mmol/Lα-酮戊二酸和0.05 mmol/L磷酸吡哆醛混合,總體積為0.9 m L,再加入0.1 m L酶液,在25℃條件下反應(yīng)20 min后加入0.3 m L 3 mol/L的高氯酸終止反應(yīng),然后加入0.2 m L 2%茚三酮沸水中加熱20 min染色,冷卻后10 000 r/min離心棄去上清液;用1.5 m L無(wú)水乙醇溶解紅色沉淀物,離心后取上清液510 nm測(cè)定吸光值。產(chǎn)物吡咯啉-5-羧酸(P5C)與茚三酮生成的紅色物質(zhì)摩爾消光系數(shù)為16.5 L/(mmol·cm)。以每min生成0.001 mmol P5C的量為1個(gè)δ-OAT活性單位(U)。
1.3.4 ProDH的測(cè)定 參照Lutts等[21]方法提取,略做改動(dòng)。樣品加4倍體積提取緩沖液(w/v)于冰浴中研磨,提取緩沖液為0.1 mol/L Na2HPO4-KH2PO4(p H 7.8),內(nèi)含1 mmol/L EDTA,10 mmol/L巰基乙醇。勻漿液經(jīng)3層紗布過(guò)濾后3 898 r/min離心15 min。上清液加Triton X-100至終濃度0.15%,渦懸后于冰浴中放置30 min,后于19 491 r/min離心20 min,上清液測(cè)酶活性。
活性測(cè)定反應(yīng)混合液體積為2.5 m L,內(nèi)含0.15 mol/L Na2CO3-Na HCO3(p H 10.3)緩沖液1.6 m L,0.2 m L 0.1 mol/L L-Pro,0.2 m L 0.9 mmol/L 2,6-二氯酚靛酚。30℃水浴中保溫5 min,加入0.5 m L(0.8 mg蛋白/m L)酶提取液,混合均勻后加入0.2 m L吩嗪硫酸甲酯試劑PMS(9 mg/m L,現(xiàn)配),搖勻后立即于600 nm下檢測(cè)光密度變化。以每min A600減少0.001為1個(gè)ProDH酶活單位(U)。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel 2003及SAS 8.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析處理。
隨著NaCl濃度的增加,芨芨草植株根系與葉片中Pro的含量均呈上升趨勢(shì)(表1),且均顯著高于對(duì)照(P<0.05);在同一濃度脅迫下,芨芨草葉片中Pro的含量均顯著高于根系(P<0.05),為根系的1.93~7.92倍;當(dāng)NaCl濃度為500 mmol/L時(shí),芨芨草植株根系與葉片中Pro含量均達(dá)到最大值,為303.36和585.77μg/g FW(鮮重),分別是對(duì)照的74和18倍。隨著NaCl濃度的增加,芨芨草根系中Pro含量上升的幅度大于葉片。芨芨草植株根系與葉片中Pro含量的急劇上升,說(shuō)明芨芨草對(duì)NaCl脅迫的適應(yīng)能力較強(qiáng)。
表1 NaCl脅迫下芨芨草根系與葉片Pro含量的變化Table 1 Changes of proline content in A.splendens under NaCl stress μg/g FW
除200 mmol/L NaCl濃度脅迫時(shí),芨芨草根系與葉片P5CS活性差異不顯著外(P>0.05),其他濃度脅迫下,芨芨草根系中的P5CS活性均顯著高于葉片(P<0.05)。在不同濃度NaCl脅迫下,除200 mmol/L濃度脅迫時(shí),芨芨草根系中的P5CS活性與對(duì)照差異不顯著外(P>0.05),其余濃度脅迫下,芨芨草根系中P5CS活性均顯著高于對(duì)照(P<0.05);NaCl濃度為300 mmol/L時(shí),芨芨草葉片中P5CS活性顯著高于對(duì)照外(P<0.05),其他濃度脅迫下,芨芨草葉片中P5CS活性均顯著低于對(duì)照(P<0.05)。當(dāng)NaCl濃度為300 mmol/L時(shí),芨芨草葉片與根系中P5CS活性均達(dá)到最大值,為7.44和20.81 U/mg蛋白,分別為對(duì)照的1.1和6.3倍。在NaCl的脅迫下,隨著鹽濃度的增加,芨芨草葉片P5CS的活性呈“降-升-降”的趨勢(shì)(圖1)。
圖1 NaCl脅迫下芨芨草根系與葉片P5CS活性的變化Fig.1 Changes of P5CS in A.splendens under NaCl stress
在NaCl脅迫下,芨芨草根系中的δ-OAT活性顯著高于葉片中的(P<0.05);芨芨草葉片與根系中的δ-OAT活性均顯著低于對(duì)照(P<0.05),但在不同濃度的NaCl脅迫下,δ-OAT活性的變化幅度不大。隨著鹽濃度的增加,葉片與根系中的δ-OAT活性均呈先下降后上升的趨勢(shì)。當(dāng)NaCl濃度為300和400 mmol/L時(shí),芨芨草根系與葉片中的δ-OAT活性降至最低,較對(duì)照分別降低45.87%和72.24%(圖2)。這說(shuō)明NaCl脅迫下,芨芨草中δ-OAT活性受到抑制,所以Pro含量的急劇上升可能不是通過(guò)鳥氨酸途徑合成的。
在NaCl脅迫下,芨芨草葉片中ProDH酶的活性均顯著高于根系中的(P<0.05),且均顯著高于對(duì)照(P<0.05)。隨著NaCl濃度的增加,芨芨草葉片中ProDH的活性呈先上升后下降的趨勢(shì),當(dāng)NaCl濃度為200 mmol/L時(shí),ProDH活性達(dá)到最大值,為66.04 U/g FW,是對(duì)照的1.7倍。芨芨草根系中的ProDH活性隨著NaCl濃度的增加變化不明顯,在濃度為100 mmol/L時(shí),芨芨草根系中ProDH的活性上升到最大值為30.47 U/g FW,且顯著高于對(duì)照外(P<0.05),其他濃度脅迫下,均差異不顯著(P>0.05)。當(dāng) NaCl濃度為300 mmol/L時(shí),芨芨草根系中ProDH 活性最小,為21.95 U/g FW,是對(duì)照的86.30%(圖3)。
在鹽脅迫下,Pro是公認(rèn)的滲透保護(hù)劑,各組織中游離Pro含量的多少,直接關(guān)系到其抗逆性的強(qiáng)弱。Pro能防止水分散失,保護(hù)膜結(jié)構(gòu)的完整性,所以細(xì)胞內(nèi)Pro的升高可作為植物抗性的指標(biāo)[22]。近年來(lái)對(duì)鹽脅迫下植物的生理代謝調(diào)節(jié)方面的研究表明,在鹽脅迫的條件下胞質(zhì)內(nèi)產(chǎn)生大量的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì),在正常生長(zhǎng)條件下,植物體內(nèi)的游離Pro含量較低,但在鹽堿脅迫下,游離Pro的含量明顯增加[23]。陳托兄等[24]也指出:抗鹽植物中游離Pro多集中于代謝旺盛的光合器官和生殖器官,其Pro的含量是其他部位的數(shù)倍到數(shù)十倍,在鹽逆境下植物優(yōu)先保護(hù)其光合器官和生殖器官,這是植物對(duì)鹽漬生境的一種生態(tài)適應(yīng)對(duì)策。張金林等[25]研究表明:NaCl脅迫下,湖南稷子(Echinochloacrusgalli)地上部的游離Pro是根中的10倍多。吳欣明等[26]研究表明:隨NaCl濃度的升高,7份羊茅屬(Festuca)植物葉綠素和光合速率呈遞減趨勢(shì),Pro呈增高趨勢(shì)。孟林等[27]同樣證實(shí)了NaCl脅迫下,34份偃麥草屬(Elytrigia)植物種質(zhì)材料葉片的Pro隨脅迫濃度的增加而呈遞增趨勢(shì),這與本試驗(yàn)研究結(jié)果一致(表1)。芨芨草葉片中的Pro含量顯著高于根系中的,可能是由于在鹽逆境下植物為優(yōu)先保護(hù)其光合器官和生殖器官,將根系中合成的Pro運(yùn)輸?shù)饺~片。這與全先慶等[28]得出的Pro大多在植物的根中合成,而產(chǎn)物大部分被運(yùn)輸?shù)降厣喜糠值难芯拷Y(jié)果一致。造成芨芨草植株地上部Pro積累的原因還可能與植株地上部光呼吸乙醇酸途徑的激活和Glu脫氫酶的活化相關(guān)[15],還有待進(jìn)一步的研究。Pro含量的大量增加,提高了緩解滲透脅迫的能力,從而增強(qiáng)了芨芨草植株在NaCl脅迫下的抗逆性。
圖2 NaCl脅迫下芨芨草根系與葉片δ-OAT活性的變化Fig.2 Changes ofδ-OAT in A.splendens under NaCl stress
圖3 NaCl脅迫下芨芨草根系與葉片ProDH活性的變化Fig.3 Changes of ProDH in A.splendens under NaCl stress
根尖部位是感知脅迫最敏感部位,植株受到的脅迫往往最先由根部感知,在此狀況下,其生理反應(yīng)可能與葉片的生理反應(yīng)不盡相同[4]。在NaCl脅迫下,除根系P5CS的活性顯著高于對(duì)照外(P<0.05),芨芨草葉片中P5CS的活性、根系與葉片δ-OAT的活性均顯著低于對(duì)照(P<0.05)。由此可見(jiàn),芨芨草Pro的積累主要在根系中以谷氨酸途徑合成。研究表明,在滲透脅迫和低氮條件下谷氨酸途徑占主導(dǎo)地位,而在非脅迫條件及高氮條件下鳥氨酸又居于主導(dǎo)地位[29]。黃誠(chéng)梅等[30]的研究也表明,滲透脅迫下,甘蔗(Saccharumofficinarum)幼苗葉片Pro生物合成以谷氨酸-Pro途徑為主。這與本試驗(yàn)結(jié)論相一致。當(dāng)NaCl的濃度高于300 mmol/L時(shí),葉片P5CS的活性開(kāi)始下降,可能是由于Pro濃度的大量增加,其活性受到Pro含量的反饋抑制[31]。ProDH是植物體內(nèi)控制Pro降解的關(guān)鍵酶,在滲透脅迫時(shí)其表達(dá)活性受到抑制[30]。在NaCl脅迫下,芨芨草葉片中的ProDH的活性顯著高于根系(P<0.05),主要是由于ProDH基因被Pro誘導(dǎo)而被滲透脅迫抑制[2]??梢?jiàn),芨芨草Pro含量的積累是由合成和降解綜合作用的結(jié)果。
NaCl脅迫下,芨芨草植株葉片的Pro含量顯著高于根系,芨芨草Pro含量隨NaCl脅迫濃度的增加而增加,當(dāng)NaCl濃度達(dá)500 mmol/L時(shí),Pro含量最大。
芨芨草植株根系P5CS活性顯著高于對(duì)照,在同一濃度脅迫下,根系活性均高于葉片;隨著NaCl濃度的增加,δ-OAT活性呈降低趨勢(shì),均顯著低于對(duì)照;葉片ProDH活性高于對(duì)照,而根系ProDH活性較對(duì)照變化不太明顯。
NaCl脅迫下,芨芨草植株內(nèi)Pro的積累主要以谷氨酸途徑為主。
[1]燕麗萍,夏陽(yáng),梁慧敏,等.轉(zhuǎn)BADH基因苜蓿T1代遺傳穩(wěn)定性和抗鹽性研究[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2009,18(6):65-71.
[2]許祥明,葉和春,李國(guó)鳳.脯氨酸代謝與植物抗?jié)B透脅迫的研究進(jìn)展[J].植物學(xué)通報(bào),2000,17(6):536-542.
[3]Akihiro U,Yuko Y Y,Tetsuko T.Salt stress enhances proline utilization in the apical region of barley roots[J].Biochemical and Biophysical Research Communications,2007,355:61-66.
[4]李玲,余光輝,曾富華.水分脅迫下植物脯氨酸累積的分子機(jī)理[J].華南師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2003,1:126-134.
[5]趙瑞雪,程鈺宏,董寬虎,等.植物脯氨酸及其合成酶系研究進(jìn)展[J].草業(yè)科學(xué),2008,25(2):90-96.
[6]支立峰,陳明清,余濤,等.p5cs轉(zhuǎn)化水稻細(xì)胞系的研究[J].湖北師范學(xué)院學(xué)報(bào),2005,25(14):39-51.
[7]陳吉寶,景蕊蓮,毛新國(guó),等.普通菜豆PvP5CS2基因?qū)δ婢趁{迫的應(yīng)答[J].作物學(xué)報(bào),2008,34(7):1121-1127.
[8]徐春波,米福貴,王勇.轉(zhuǎn)基因冰草植株耐鹽性研究[J].草地學(xué)報(bào),2006,14(1):20-23.
[9]Roosens N H,Bitar F A,Loenders K,etal.Overexpression of ornithineδ-arninotransferase increase proline biosynthesis and confers osmotolerance in transgenic plants[J].Molecular Breeding,2002,9:73-80.
[10]趙福庚,劉友良.脅迫條件下高等植物體內(nèi)脯氨酸代謝及調(diào)節(jié)的研究進(jìn)展[J].植物學(xué)通報(bào),1999,16(5):540-546.
[11]董社琴.芨芨草的生物學(xué)特性與生態(tài)經(jīng)濟(jì)效益[J].科技情報(bào)開(kāi)發(fā)與經(jīng)濟(jì),2004,14(4):190.
[12]陶錦,王果平,陳韓飛,等.鹽脅迫下芨芨草種子萌發(fā)中有機(jī)物及酶活性的變化[J].石河子大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2004,22(6):504-506.
[13]王果平,康喜亮,陶錦,等.不同鹽濃度對(duì)芨芨草種子萌發(fā)過(guò)程中幾種生理指標(biāo)的影響[J].干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究,2006,24(2):139-142.
[14]張耿,高洪文,王贊,等.偃麥草屬植物苗期耐鹽性指標(biāo)篩選及綜合評(píng)價(jià)[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2007,16(4):55-61.
[15]Bates L S,Waldren R P,Teare I D.Rapid determination of free proline for water stress studies[J].Plant Soil,1973,39:205-207.
[16]Kavi Kishor P B K,Hong Z,Miao G,etal.Overexpression of 1-pyrroline-5-carboxylate synthetase increases proline over production and confers osmo-tolerance in transgenic plants[J].Plant Physiology,1995,108:1387-1394.
[17]Bradford M M.A rapid and sensitive method for the qantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding[J].Analytic Biochemistry,1976,72:248-254.
[18]Garcia-Rios M,F(xiàn)ujita T,Larosa P C,etal.Cloning of a polycistronic cDNA from tomato encodingγ-glutamy kinase andγglutamyl phosphate reductase[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of USA,1997,94:8249-8254.
[19]Roosens N H,Thu T T,Iskandar H M,etal.Isolation of theomithine-δ-aminotransferase cDNA and effect of salt stress on its expression inArabidopsisthaliana[J].Plant Physiology,1998,117:263-271.
[20]Kim H R,Rho H W,Park J W,etal.Assay of ornithine aminotransferase with ninhydrin[J].Ana1ytical Biochemistry,1994,223:205-207
[21]Lutts S,Kinet J M,Bouharnlont J.NaCl-induced senescence in leaves of rice cultivars differing in salinity resistance[J].Annals of Botany,1999,78:389-398.
[22]李紅,李波,趙洪波,等.誘變處理苜蓿愈傷組織抗堿性的研究[J].草業(yè)科學(xué),2009,26(7):32-35.
[23]張永鋒,梁正偉,隋麗,等.鹽堿脅迫對(duì)苗期紫花苜蓿生理特性的影響[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2009,18(4):230-235.
[24]陳托兄,張金林,陸妮,等.不同類型抗鹽植物整株水平游離脯氨酸的分配[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2006,15(1):36-41.
[25]張金林,陳托兄,嚴(yán)學(xué)兵,等.烯效唑(S3307)對(duì)湖南稷子整株水平Na+、K+選擇性和游離脯氨酸分配的影響[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2006,15(2):42-47.
[26]吳欣明,王運(yùn)琦,劉建寧,等.羊茅屬植物耐鹽性評(píng)價(jià)及其對(duì)鹽脅迫的生理反應(yīng)[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2007,16(6):67-73.
[27]孟林,尚春艷,毛培春,等.偃麥草屬植物種質(zhì)材料苗期耐鹽性綜合評(píng)價(jià)[J].草業(yè)學(xué)報(bào),2009,18(4):67-74.
[28]全先慶,張渝潔,單雷,等.高等植物脯氨酸代謝研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通報(bào),2007,1:14-18.
[29]Delauney A J,HuC A A,Kishor P B K,etal.Cloning of ornithine-aminotransferase cDNA fromVignaaconitifoliaby trans-complementation inEscherichiacoliand regulation of proline biosynthesis[J].Journal of Biological Chemistry,1993,268:18673-18678.
[30]黃誠(chéng)梅,楊麗濤,江文,等.聚乙二醇脅迫對(duì)甘蔗生長(zhǎng)前期葉片水勢(shì)及脯氨酸代謝的影響[J].干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究,2008,26(1):205-208.
[31]王桂花,米福貴,劉娟,等.P5CS基因在蒙農(nóng)雜種冰草植株中的表達(dá)及耐鹽性研究[J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),2007,22(4):33-36.