張風(fēng)河 黃萍 楊丕山 張雪
(1.山東大學(xué)口腔醫(yī)院 口腔頜面外科;2.山東大學(xué)齊魯醫(yī)院 放療科,山東 濟(jì)南 250012)
神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)蛋白在神經(jīng)發(fā)育和功能維持方面起著重要作用,其功能作用的信號(hào)傳導(dǎo)主要是通過2種受體來完成,即酪氨酸蛋白激酶(tyrosine protein kinase,Trk)受體(TrkA、TrkB、TrkC)和p75神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)蛋白受體(p75 neurotrophin receptor,p75-NTR)。研究表明,單純抑制p75NTR并不能提高脊髓的再生[1],但在發(fā)育和周圍性神經(jīng)損傷中,p75NTR在雪旺氏細(xì)胞髓鞘化以及再髓鞘化中是必需的[2]。在周圍神經(jīng)的雪旺氏細(xì)胞中,神經(jīng)損傷是p75NTR表達(dá)的有力刺激因素[3],這提示p75NTR在周圍神經(jīng)再生調(diào)控中具有重要作用。然而,p75NTR在損傷的周圍神經(jīng)再生中是正向還是反向調(diào)控作用目前仍不清楚,本研究對(duì)p75NTR在p75NTR基因敲除小鼠面神經(jīng)損傷后再生中的作用進(jìn)行了研究。
選取由澳大利亞弗林德絲大學(xué)醫(yī)學(xué)中心提供的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物90只,其中野生型129sv小鼠和p75NTR基因敲除小鼠各45只。年齡6~8周,體重25~29 g,健康,雌性,手術(shù)后在相同標(biāo)準(zhǔn)條件下喂養(yǎng)。2種小鼠用于霍亂毒素B(cholera toxin B,CTB)順行標(biāo)記和免疫組織化學(xué)檢測(cè)各35只(其中各5只通過順行標(biāo)記方法觀察再生軸突長(zhǎng)度),用于Fast Blue逆行標(biāo)記各10只。
Olympus SZX-12解剖顯微鏡(Olympus公司,日本),Leica冷凍切片機(jī)(Leica公司,德國(guó)),微量注射器(Hamilton公司,美國(guó)),CTB、Fast Blue、鼠生長(zhǎng)相關(guān)肽43抗體(GAP43)(Sigma公司,美國(guó)),羊CTB抗體(List Biologicals公司,美國(guó)),兔抗-PGP9.5(1∶5 000)(Invitrogen公司,美國(guó)),兔抗鈣基因相關(guān)肽(rabbit anti-calcitonin gene related peptide,CGRP)(Merke公司,德國(guó))。
1.3.1 面神經(jīng)損傷及位置記錄 采用1 μL·g-1氯胺酮和0.5 μL·g-1illumxylazil腹腔注射麻醉90只小鼠,常規(guī)消毒鋪巾,在右側(cè)耳根部做1 cm弧形切口,沿著外耳道向下分離,顯微鏡下仔細(xì)分離結(jié)締組織后解剖出面神經(jīng)干,牽引開腮腺組織暴露神經(jīng)分叉及前端的分支,然后用特制的夾持鉗在距胸鎖乳突窩神經(jīng)出顱2 mm處夾持30 s,然后松開旋轉(zhuǎn)90°再夾持30 s,顯微鏡下觀察可見神經(jīng)形成透明帶的Ⅳ度損傷。左側(cè)不損傷,作為對(duì)照。為標(biāo)記神經(jīng)損傷的精確部位,將0/8絲線縫合于損傷處神經(jīng)外膜上。
1.3.2 面神經(jīng)核運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元再生的逆行標(biāo)記 在面神經(jīng)損傷手術(shù)后第4天,選取野生型129sv小鼠和p75NTR基因敲除小鼠各10只重新打開創(chuàng)口,在面神經(jīng)總干分叉處切斷,然后將近中殘端置入含有5%Fast Blue的0.2 μL一端封閉的聚氯乙烯小管中。經(jīng)固定后,分層縫合。手術(shù)后第7天,在水合氯醛腹腔麻醉下,經(jīng)心臟4%多聚甲醛全身灌注,然后取出腦干,置于4%多聚甲醛中充分固定24 h,然后依次置于10%、20%、30%的蔗糖緩沖液中過夜,-20℃冷凍連續(xù)切片(16 μm),直接貼到明膠處理過的玻片上,干燥后置于PBST溶液中清洗后封片,在熒光顯微鏡下對(duì)面神經(jīng)核運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元進(jìn)行計(jì)數(shù)分析。
1.3.3 神經(jīng)元計(jì)數(shù) 在熒光顯微鏡下由其他研究人員進(jìn)行雙盲計(jì)數(shù),觀察光的波長(zhǎng)為370 nm。計(jì)數(shù)時(shí)每3個(gè)連續(xù)切片計(jì)數(shù)1個(gè),只計(jì)算含有細(xì)胞核的神經(jīng)元,將得到的實(shí)驗(yàn)側(cè)和對(duì)照側(cè)面神經(jīng)核神經(jīng)元細(xì)胞總數(shù)相除,每只小鼠得到1個(gè)百分比。
1.3.4 面神經(jīng)損傷后軸突再生的順行標(biāo)記 手術(shù)后第2天,選取野生型129sv小鼠和p75NTR基因敲除小鼠各5只重新打開創(chuàng)口,在損傷近心端微量注射器注射CTB 0.2 μL,停留1 min以免滲漏。手術(shù)后第3天,水合氯醛腹腔麻醉下,經(jīng)心臟4%多聚甲醛全身灌注,取出面神經(jīng)。神經(jīng)取出后,置于4%多聚甲醛中充分固定24 h,然后依次置入10%、20%、30%的蔗糖緩沖液中過夜,-20℃冷凍連續(xù)切片(20 μm),以備做CTB免疫組織化學(xué)。
1.3.5 免疫組織化學(xué)檢測(cè) 將順行標(biāo)記3 d后以及損傷后7 d的面神經(jīng)標(biāo)本進(jìn)行冷凍切片,直接貼到明膠處理過的玻片上,待干燥后,用PBST清洗,阻斷并用20%普通馬血清(normal horse serum,NHS)進(jìn)行孵育2 h。分別加入羊CTB抗體(1∶10 000)、GAP-43(1∶500)、兔抗-PGP9.5(1∶5 000)以及CGRP過夜。PBST徹底沖洗后加入適當(dāng)?shù)腇ITC標(biāo)記二抗(1∶100)2 h,經(jīng)過充分的清洗,標(biāo)本放在熒光顯微鏡下觀察。為觀察CTB標(biāo)記的再生軸突長(zhǎng)度,在面神經(jīng)損傷處遠(yuǎn)中不同距離對(duì)標(biāo)記陽性的神經(jīng)纖維進(jìn)行測(cè)量。應(yīng)用GAP43、PGP9.5和CGRP進(jìn)行再生軸突的計(jì)數(shù),于面神經(jīng)損傷遠(yuǎn)中3 mm處獲取圖像,在選取的斷面劃一條神經(jīng)長(zhǎng)軸垂直線,對(duì)經(jīng)過此線且對(duì)3種標(biāo)記物有免疫反應(yīng)的所有再生軸突進(jìn)行計(jì)數(shù)。然后計(jì)算平均數(shù)作為每個(gè)斷面標(biāo)記纖維的數(shù)量。
采用SPSS 12.0統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,各組所獲得的平均及百分比數(shù)據(jù)進(jìn)行t檢驗(yàn)分析。
面神經(jīng)損傷后,將順行標(biāo)記物CTB注射到損傷神經(jīng)點(diǎn)的近中來標(biāo)記軸突生長(zhǎng)速度。損傷3 d后,野生型129sv小鼠軸突再生速度可以達(dá)到每天2 mm。損傷后3 d新生軸突最多可以達(dá)到6 mm。相比較而言,p75NTR基因敲除小鼠軸突生長(zhǎng)速度大大低于野生型小鼠,一般不超過每天1 mm,損傷后3 d新生軸突最多可以達(dá)到2.5 mm。
面神經(jīng)損傷7 d后,p75NTR基因敲除小鼠面神經(jīng)核運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元的數(shù)量比野生型129sv小鼠有顯著降低(圖1)。野生型129sv小鼠實(shí)驗(yàn)側(cè)運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元標(biāo)記指數(shù)為(77.8±4.5)%,p75NTR基因敲除小鼠實(shí)驗(yàn)側(cè)運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元標(biāo)記指數(shù)為(53.1±5.2)%,二者間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
圖1 野生型129sv小鼠和p75NTR基因敲除小鼠面神經(jīng)損傷后面神經(jīng)核運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元再生情況 熒光顯微鏡 ×100Fig 1 The regeneration of facial motoneurons in the facial nerve nucleus in wild type 129sv mice and p75NTR knockout mice fluorescence microscope ×100
為觀察神經(jīng)再生軸突數(shù)量,損傷神經(jīng)的遠(yuǎn)中部分進(jìn)行GAP43、PGP9.5和CGRP染色,2種小鼠在神經(jīng)損傷遠(yuǎn)中3 mm處再生的神經(jīng)纖維都會(huì)出現(xiàn)對(duì)這些標(biāo)記物的免疫反應(yīng)(圖2)。定量檢測(cè)表明野生型129sv小鼠對(duì)GAP43、PGP9.5及CGRP產(chǎn)生免疫反應(yīng)的纖維數(shù)量分別為27.5±3.2、38.6±4.1、20.4±2.9。而p75NTR基因敲除小鼠對(duì)GAP43、PGP9.5及CGRP產(chǎn)生免疫反應(yīng)的纖維數(shù)量分別為14.2±2.2、20.8±3.4、9.7±2.1,二者比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。
圖2 野生型129sv小鼠和p75NTR基因敲除小鼠面神經(jīng)損傷后面神經(jīng)纖維對(duì)GAP43、PGP9.5、CGRP產(chǎn)生的免疫反應(yīng) 熒光顯微鏡 ×400Fig 2 The facial nerve fibres immunoreactive for GAP43,PGP9.5 and CGRP in wild type 129sv mice and p75NTR knockout mice fluorescence microscope ×400
先前的許多研究試圖去探索p75NTR在神經(jīng)再生中的功能性作用,但所得結(jié)論是有爭(zhēng)議的,這可能歸因于研究分析所采用的不同模型和不同方法。通過一個(gè)脛腓總神經(jīng)受損的模型,Boyd等[4]發(fā)現(xiàn)p75NTR敲除的小鼠未受損的運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元數(shù)量減少但再生的運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元的相對(duì)數(shù)量卻明顯增加了。在脊神經(jīng)背根被橫切的模型中,p75NTR敲除的小鼠背角中檢測(cè)到更多的單胺能神經(jīng)元的再生和基本的傳入[5]。上述研究似乎表明p75NTR在神經(jīng)元中的存在可能會(huì)對(duì)軸突的生長(zhǎng)和再生造成阻礙。但本研究發(fā)現(xiàn)在面神經(jīng)擠壓性損傷的模型中,p75NTR基因敲除小鼠神經(jīng)元的再生速度和再生神經(jīng)元的數(shù)量明顯下降。利用在CTB下的順行追蹤技術(shù),發(fā)現(xiàn)p75NTR基因敲除小鼠軸突生長(zhǎng)速度相對(duì)于野生型小鼠來說要慢的多。利用逆行追蹤技術(shù)發(fā)現(xiàn)面神經(jīng)核中再生的運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元的數(shù)量在p75NTR基因敲除小鼠中也明顯減少。從CGRP、PGP9.5和GAP43標(biāo)識(shí)陽性的軸突中得到的數(shù)據(jù)也顯示p75NTR基因敲除小鼠外周神經(jīng)軸突再生的延遲性,從而證明p75NTR的存在是外周神經(jīng)運(yùn)動(dòng)軸突快速生長(zhǎng)的關(guān)鍵。
p75NTR在外周神經(jīng)中促進(jìn)軸突生長(zhǎng)的機(jī)制可能和受傷后雪旺氏細(xì)胞中神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子濃度變化有關(guān)。周圍神經(jīng)受損后,雪旺氏細(xì)胞中的神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子和p75NTR將會(huì)上調(diào)[6]。其原因是p75NTR在雪旺氏細(xì)胞中扮演神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子聚集底物的角色,可以在局部建立神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子梯度方面起關(guān)鍵作用。研究發(fā)現(xiàn)p75NTR在衛(wèi)星細(xì)胞中的上調(diào)與因外周神經(jīng)損傷而侵犯脊神經(jīng)背根神經(jīng)節(jié)形成籃狀結(jié)構(gòu)的異常去甲腎上腺素能神經(jīng)再生相關(guān)聯(lián)[7]。由于籃狀結(jié)構(gòu)的形成需要p75NTR的表達(dá),表明神經(jīng)膠質(zhì)中p75NTR與軸突再生和生長(zhǎng)有關(guān)。雪旺氏細(xì)胞表面p75NTR的缺失將會(huì)導(dǎo)致神經(jīng)損傷后的神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子梯度的喪失和再生軸突生長(zhǎng)的延遲或側(cè)突軸突的生長(zhǎng)。
另外,在雪旺氏細(xì)胞和外周神經(jīng)元中p75NTR可能會(huì)產(chǎn)生受體介入膜內(nèi)蛋白水解作用(the receptormediated intramembrane proteolysis,RIP)[8-9]。RIP在髓鞘伴蛋白質(zhì)引起的軸突崩解的小腦神經(jīng)元中是需要的[10]。p75NTR的RIP產(chǎn)物在細(xì)胞外可能會(huì)中和髓鞘抑制因子對(duì)再生神經(jīng)元的作用和促進(jìn)神經(jīng)元的再生。但是,仍無法解釋對(duì)神經(jīng)再生起積極作用的p75NTR不僅僅在受損的雪旺氏細(xì)胞和衛(wèi)星神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞中表達(dá),其同時(shí)也在運(yùn)動(dòng)和感覺神經(jīng)元中高度表達(dá)。p75NTR在神經(jīng)元表達(dá)的同時(shí)顯示了促進(jìn)和抑制作用。當(dāng)外周神經(jīng)也表達(dá)髓鞘抑制因子時(shí),這些神經(jīng)元中的p75NTR可以通過NgR/LINGO-1/p75NTR受體通道對(duì)這些抑制因子作出反應(yīng)導(dǎo)致軸突崩解[11]。本研究發(fā)現(xiàn)p75NTR基因敲除小鼠的軸突再生出現(xiàn)延遲,表明NgR/LINGO-1/p75NTR信號(hào)在外周神經(jīng)中不是顯性的。但是需要利用條件性敲除的模型或體外培養(yǎng)模型作進(jìn)一步的研究去區(qū)分神經(jīng)元p75NTR和神經(jīng)膠質(zhì)p75NTR對(duì)神經(jīng)再生和軸突生長(zhǎng)的作用。
p75NTR還可以通過調(diào)節(jié)雪旺氏細(xì)胞遷移來影響周圍神經(jīng)發(fā)育。雪旺氏細(xì)胞對(duì)軸突生長(zhǎng)具有重要作用,生長(zhǎng)期軸突和雪旺氏細(xì)胞之間具有雙向信號(hào)調(diào)節(jié)。因此,雪旺氏細(xì)胞可以調(diào)控軸突發(fā)育,軸突也可以反向調(diào)控雪旺氏細(xì)胞的遷移[12]。對(duì)軸突及其相關(guān)的雪旺氏細(xì)胞進(jìn)行電鏡觀察,發(fā)現(xiàn)在發(fā)育中的軸突上雪旺氏細(xì)胞數(shù)量確實(shí)減少,這表明在發(fā)育中的軸突上雪旺氏細(xì)胞的再髓鞘化被嚴(yán)重破壞,這說明p75NTR對(duì)雪旺氏細(xì)胞發(fā)育以及神經(jīng)元具有多功能的調(diào)節(jié)作用[13]。由于p75NTR在神經(jīng)元和雪旺氏細(xì)胞中都有表達(dá),因此在神經(jīng)的發(fā)育中p75可能在動(dòng)態(tài)的雙向活動(dòng)中有重要作用。
致謝:感謝澳大利亞弗林德絲大學(xué)周新富教授在本研究中的幫助。
[1]Song XY,Zhong JH,Wang X,et al.Suppression of p75NTR does not promote regeneration of injured spinal cord in mice[J].J Neurosci,2004,24(2):542-546.
[2]Song XY,Zhou FH,Zhong JH,et al.Knockout of p75(NTR)impairs re-myelination of injured sciatic nerve in mice[J].J Neurochem,2006,96(3):833-842.
[3]Johnson EM Jr,Taniuchi M,DiStefano PS.Expression and possible function of nerve growth factor receptors on Schwann cells[J].Trends Neurosci,1988,11(7):299-304.
[4]Boyd JG,Gordon T.A dose-dependent facilitation and inhibition of peripheral nerve regeneration by brain-derived neurotrophic factor[J].Eur J Neurosci,2002,15(4):613-626.
[5]Scott AL,Borisoff JF,Ramer MS.Deafferentation and neurotrophin mediated intraspinal sprouting:A central role for the p75 neurotrophin receptor[J].Eur J Neurosci,2005,21(1):81-92.
[6]Funakoshi H,Frisén J,Barbany G,et al.Differential expression of mRNAs for neurotrophins and their receptors after axotomy of the sciatic nerve[J].J Cell Biol,1993,123(2):455-465.
[7]Zhou XF,Li HY.Roles of glial p75NTR in axonal regeneration[J].J Neurosci Res,2007,85(8):1601-1605.
[8]Ahmed Z,Mazibrada G,Seabright RJ,et al.TACE-induced cleavage of NgR and p75NTR in dorsal root ganglion cultures disinhibits outgrowth and promotes branching of neurites in the presence of inhibitory CNS myelin[J].FASEB J,2006,20(11):1939-1941.
[9]Ahmed Z,Suggate EL,Brown ER,et al.Schwann cell-derived factor-induced modulation of the NgR/p75NTR/EGFR axis disinhibits axon growth through CNS myelinin vivoandin vitro[J].Brain,2006,129(Pt 6):1517-1533.
[10]Domeniconi M,Zampieri N,Spencer T,et al.MAG induces regulated intramembrane proteolysis of the p75 neurotrophin receptor to inhibit neurite outgrowth[J].Neuron,2005,46(6):849-855.
[11]Pot C,Simonen M,Weinmann O,et al.Nogo-A expressed in Schwann cells impairs axonal regeneration after peripheral nerve injury[J].J Cell Biol,2002,159(1):29-35.
[12]Bhattacharyya A,Brackenbury R,Ratner N.Axons arrest the migration of Schwann cell precursors[J].Development,1994,120(6):1411-1420.
[13]Mandemakers WJ,Barres BA.Axon regeneration: It′s getting crowded at the gates of TROY[J].Curr Biol,2005,15(8):R302-R305.