楊玉紅,王靜鳳,龍騰騰,趙 芹,楊延存,馬 琴,薛長湖
(中國海洋大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東青島 266003)
流行病學(xué)研究結(jié)果表明[1],惡性腫瘤的發(fā)生與攝入脂肪的種類和數(shù)量密切相關(guān)。最新研究發(fā)現(xiàn)[2],來自海洋魚類的DHA等n-3高度不飽和脂肪酸(n-3PUFA)具有很好的降低腫瘤發(fā)病率的作用。磷脂型DHA(DHA-PC)主要存在于烏賊的肌肉和卵中,是一種新型的天然產(chǎn)物,其中,DHA位于磷脂甘油基的C-2。DHA具有廣泛的生理活性,近年來研究發(fā)現(xiàn)DHA有抑癌活性和誘導(dǎo)癌細(xì)胞凋亡的作用[3]。磷脂主要存在于動植物細(xì)胞的生物膜和原生質(zhì)中,許多研究表明它具有抗腫瘤和免疫調(diào)節(jié)功能[4]。目前已證實DHA-磷脂脂質(zhì)體對腫瘤有明顯的抑制作用,但其作用機制尚不明確[5]。本研究利用從鳶烏賊卵中提取制備的 DHA-磷脂,觀察了DHA-PC對人肝癌HepG-2細(xì)胞凋亡的作用及對裸鼠移植瘤生長的影響,旨在進一步證實DHA-PC的抗腫瘤功效,為其在醫(yī)藥保健領(lǐng)域的開發(fā)提供實驗基礎(chǔ)和理論依據(jù)。
1.1實驗材料BALB/c♂小鼠,17~22 g,由北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供,動物合格證號為SCXK(京)2007-0001。
人肝癌細(xì)胞系HepG-2和S180肉瘤細(xì)胞株,均由山東醫(yī)學(xué)科學(xué)院細(xì)胞生物學(xué)研究所提供。HepG-2細(xì)胞于 RPMI1640培養(yǎng)液(含10%小牛血清),37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng),每3天傳代1次。S180以腹水型傳代,取接種后生長良好的S180腹水,生理鹽水稀釋,制備瘤細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞數(shù)至4×109·L-1。
1.2藥品和試劑RPMI 1640培養(yǎng)基、新生牛血清,由美國Gibco公司提供;膽固醇,由日本和光純藥工業(yè)株式會社提供;吖啶橙(acridine orange,AO)和溴化乙錠(ethidium bromide,EB),由美國Promega公司提供;環(huán)磷酰胺(cyclophosphamide,Cy),由上海華聯(lián)制藥有限公司提供;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.3儀器SFE121-50-02超臨界萃取裝置,江蘇南通華興石油儀器有限公司;6980N型氣相色譜儀,美國Agilent公司;1100型液相色譜儀,美國Agilent公司;LF-1型脂質(zhì)體制備儀,加拿大AVESTIN公司產(chǎn)品;FACS.VAN.TAGE流式細(xì)胞儀,美國BD公司產(chǎn)品;IX51倒置顯微鏡系統(tǒng)(DP72照相系統(tǒng))、BX41熒光顯微鏡系統(tǒng),Olympus產(chǎn)品;680型酶標(biāo)儀,日本BIO-RAD公司產(chǎn)品;Bj5060UV型CO2培養(yǎng)箱,德國Heraeus公司產(chǎn)品。
1.4實驗方法
1.4.1DHA-PC的制備和檢測 鳶卵粉利用超臨界CO2萃取法脫除鳶卵粉中膽固醇[CO2流量為16.7ml·(g·h)-1,萃取釜壓力25M Pa,溫度45℃,萃取時間2 h],再將上述脫膽固醇的鳶烏賊卵粉利用丙酮脫除中性脂(料液比:1∶15)后,加入95%乙醇提取卵粉中磷脂,高效液相色譜法測得該產(chǎn)物中PC的含量為90%[6],采用氣相色譜法對其進行脂肪酸分析,測得其中DHA含量為30%。
1.4.2DHA-PC脂質(zhì)體的制備 將DHA-PC與等摩爾的膽固醇用少量三氯甲烷溶于茄形瓶中,充入氮氣保護,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)成均勻薄膜,用生理鹽水震蕩混勻,經(jīng)超聲波處理形成乳白色的懸濁液,得到DHA-PC脂質(zhì)體。
1.4.3對腫瘤細(xì)胞增殖的影響 取對數(shù)生長期的HepG-2細(xì)胞,按2×103cells/well接種于96孔培養(yǎng)板。培養(yǎng)24 h后加入不同濃度的DHA-PC脂質(zhì)體(0、250、275、300、325、350、375 和 400 μmol·L-1)分別培養(yǎng)48、72、96 h后,加 MTT溶液(終濃度為0.5 g·L-1),于37℃繼續(xù)孵育4 h,棄上清液,加入酸化異丙醇200 μl/well,吹打至藍(lán)色結(jié)晶完全溶解,于酶標(biāo)儀570 nm處檢測OD值,并計算IC50值。
1.4.4細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)觀察 取對數(shù)生長期的HepG-2細(xì)胞,按2×105cells/well接種于6孔培養(yǎng)板。貼壁24 h后加入不同濃度的DHA-PC脂質(zhì)體(0、500 和1 000 μmol·L-1)。48 h 后,收集細(xì)胞,PBS洗滌2次。將細(xì)胞稀釋至1010·L-1,取100 μl細(xì)胞懸液,加入4 μl AO/EB(1 ∶1V/V),輕輕吹打混勻后取10 μl滴于載玻片上,蓋玻片封片,于倒置熒光顯微鏡下觀察、拍照。
1.4.5流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞周期分布 取對數(shù)生長期的HepG-2細(xì)胞,按2×105cells/well接種于6孔培養(yǎng)板中。待細(xì)胞貼壁后棄去培養(yǎng)基,加入不同濃度的 DHA-PC 脂質(zhì)體(0、600 和1 200 μmol·L-1)。作用48 h后,收集細(xì)胞,用PBS洗2次,輕輕打勻細(xì)胞,加預(yù)冷的75%乙醇固定24 h,PBS洗滌2次后,加入碘化丙錠(PI)染液,4℃避光染色20 min后進行流式細(xì)胞儀檢測。
1.4.6荷瘤小鼠模型的建立和動物實驗 BALB/c小鼠于右腋窩皮下接種S180瘤細(xì)胞懸液,每只0.2 ml。24 h后隨機分為模型對照組、陽性對照組以及DHA-PC低、高劑量組,并設(shè)不接種腫瘤的小鼠為正常對照組,每組10只。DHA-PC組小鼠分別灌胃不同劑量的DHA-PC脂質(zhì)體(以其中所含DHA為對照確定灌胃劑量,分別為50和200 mg·kg-1)。陽性對照組灌胃Cy(20 mg·kg-1)。正常及模型對照組灌胃生理鹽水,灌胃體積為0.01 ml·g-1,每天1次,連續(xù)14 d。小鼠末次給藥后禁食不禁水12 h,分別稱重,脫頸椎處死,仔細(xì)剝離肉瘤稱重,并計算抑瘤率:抑瘤率/%=(1-治療組平均瘤重/對照組平均瘤重)×100%。
1.5統(tǒng)計學(xué)分析數(shù)據(jù)分析采用SPSS 11.0軟件進行單因素方差分析,同時進行LSD兩兩比較,實驗結(jié)果用±s表示。
2.1對HepG-2細(xì)胞生長的抑制作用DHA-PC脂質(zhì)體作用48 h后,對HepG-2細(xì)胞生長有抑制作用,并且隨作用濃度的增加和時間的延長而遞增,具有一定的量效和時效關(guān)系(Fig 1)。經(jīng)擬合計算,HepG-2細(xì)胞經(jīng)DHA-PC脂質(zhì)體分別作用48、72和96 h 的 IC50值為 411.11、388.22 和 355.66 μmol·L-1。
Fig 1 Effects of DHA-PC on proliferation of HepG-2
2.2對HepG-2細(xì)胞凋亡的影響AO能透過細(xì)胞膜完整的細(xì)胞嵌入DNA,使之發(fā)出明亮的綠色熒光。EB僅能透過細(xì)胞膜受損的細(xì)胞嵌入DNA,發(fā)橘紅色熒光。染色后,正常細(xì)胞核染色質(zhì)著均勻的綠色;早期凋亡細(xì)胞核染色質(zhì)著綠色,呈固縮狀或圓珠狀;晚期凋亡細(xì)胞核染色質(zhì)為橘紅色,呈固縮狀或圓珠狀;非凋亡的壞死細(xì)胞核染色質(zhì)著均勻的紅色[7]。
正常對照組細(xì)胞核染色質(zhì)著綠色,核形態(tài)結(jié)構(gòu)正常。經(jīng)DHA-PC脂質(zhì)體低劑量處理48 h后,可見細(xì)胞核固縮,出現(xiàn)早期凋亡特征;而高劑量組可見細(xì)胞被EB染成紅色,核形態(tài)與早期凋亡細(xì)胞相似,為濃染的紅色碎片(核碎裂)或凋亡小體(如Fig 2箭頭所示),核染色質(zhì)出現(xiàn)著橙色并呈固縮狀,為晚期凋亡的形態(tài)(Fig 2)。表明DHA-PC具有誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡的作用。
2.3對HepG-2細(xì)胞周期的影響DHA-PC可明顯影響HepG-2細(xì)胞的周期分布。與正常對照組相比,不同劑量DHA-PC作用48 h后,細(xì)胞SubG1+G0/G1比例明顯增加,分別較正常對照組提高了3.4%和21.83%;細(xì)胞S期變化不明顯,G2/M期明顯減少;DHA-PC低、高劑量組在G1期前均出現(xiàn)典型的凋亡峰,分別高出正常組1.95%和25.88%(見Tab 1和Fig 3)。表明DHA-PC能夠改變細(xì)胞的周期,將細(xì)胞阻滯在G0/G1期,使其無法進入S期和M期,抑制細(xì)胞增殖。
Fig 2 Effects of DHA-PC on apoptotic morphology of HepG-2(40×object)
Fig 3 Effects of DHA-PCon the cell cycle distribution of HepG-2
2.4對S180荷瘤小鼠抑瘤率的影響不同劑量的DHA-PC均能抑制小鼠S180肉瘤的生長。其中DHA-PC組低、高劑量的抑瘤率分別為33.53%和48.35%,見Tab 2。表明DHA-PC在體內(nèi)具有較好的抑制腫瘤生長的作用。
Tab 1 Effects of DHA-PCon the cell cycle distribution of HepG-2
Tab 2 Effects of DHA-PC on growth of tumor in mice(n=10,±s)
Tab 2 Effects of DHA-PC on growth of tumor in mice(n=10,±s)
**P<0.01 vs model control group
Model control - 1.864±0.233 -Positive control 20 0.866±0.033**53.53±1.76 DHA-PC medium dosage 50 1.240±0.05** 33.53±2.88 DHA-PC high dosage 200 0.960±0.06**48.35±2.4
近年來,DHA和磷脂及其衍生物的抗腫瘤作用受到了廣泛關(guān)注。許多研究證明[8-11]DHA能抑制直腸癌、前列腺癌、乳腺癌等多種腫瘤的增殖,減慢移植瘤生長,并能誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡。林彬等[12]的研究證實DHA能進入細(xì)胞內(nèi)抑制HepG-2細(xì)胞的生長增殖并誘導(dǎo)其凋亡。磷脂具有兩親分子結(jié)構(gòu),是細(xì)胞膜的構(gòu)成物質(zhì)之一,能夠與細(xì)胞膜結(jié)合,因此結(jié)合有磷脂的物質(zhì)更易于通過細(xì)胞膜進入細(xì)胞內(nèi)發(fā)揮作用。DHA的磷脂分子能夠以結(jié)合形態(tài)由細(xì)胞直接攝取,在細(xì)胞內(nèi)分解為DHA與磷脂,顯示出增效作用[13]。目前已證實[14],DHA-磷脂對細(xì)胞分化具有誘導(dǎo)作用。本實驗MTT結(jié)果顯示,DHA-PC能夠抑制HepG-2細(xì)胞的生長和抑制小鼠S180肉瘤的生長,說明DHA-PC具有明顯的抑瘤效應(yīng)。
大量研究證實,細(xì)胞周期調(diào)控異常與細(xì)胞癌變密切相關(guān)。細(xì)胞分化的主要標(biāo)志是合成特異性的功能蛋白,出現(xiàn)細(xì)胞類型的功能性改變,同時進行細(xì)胞表型的形態(tài)結(jié)構(gòu)變化,這些標(biāo)志性變化均在G1期由細(xì)胞分化完成。腫瘤細(xì)胞去分化的一個重要特征就是G1→S期卡點失常,進入 S期的細(xì)胞異常增多[15-16]。本實驗結(jié)果表明,DHA-PC可使 HepG-2細(xì)胞周期停滯于G0/G1期,提示DHA-PC對HepG-2細(xì)胞的增殖抑制作用與其改變細(xì)胞周期分布,減少DNA合成和有絲分裂,促進腫瘤細(xì)胞分化有關(guān)。另外,細(xì)胞周期的調(diào)節(jié)既影響細(xì)胞分裂又影響細(xì)胞凋亡,許多凋亡的刺激信號在細(xì)胞凋亡之前可誘發(fā)細(xì)胞周期阻滯,與此同時,細(xì)胞周期調(diào)控的異常也被視為腫瘤發(fā)生的一個重要原因,因此,通過細(xì)胞周期阻滯來誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡成為抗腫瘤的一個新靶點[17-19]。樓健穎等[20]報道DHA對胃癌細(xì)胞AGS的增殖具有明顯抑制作用,且AGS經(jīng)DHA處理后細(xì)胞阻滯于G0/G1期,并誘發(fā)明顯的凋亡峰。本實驗結(jié)果也證實,DHA-PC能夠誘發(fā)HepG-2細(xì)胞出現(xiàn)明顯的凋亡形態(tài)。由此,我們認(rèn)為DHA-PC是通過細(xì)胞周期阻滯抑制HepG-2細(xì)胞增殖、并誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡來發(fā)揮抗腫瘤作用的。
目前,DHA-PC抑制腫瘤細(xì)胞增殖的機制引起了國內(nèi)外學(xué)者的廣泛關(guān)注。Kafrawy等[21]研究了DHA-PC對于體外培養(yǎng)的T27A鼠白血病細(xì)胞的作用,發(fā)現(xiàn)DHA-PC能夠結(jié)合到細(xì)胞膜上并改變其結(jié)構(gòu),從而抑制腫瘤細(xì)胞的生長。Hossain等[22]報道DHA-PC能夠誘導(dǎo)CaCO-2細(xì)胞適度凋亡,發(fā)現(xiàn)與凋亡有關(guān)的DNA得到降解,證實這種天然物質(zhì)對于癌細(xì)胞的凋亡有較高的生物活性。細(xì)胞凋亡是一個多階段、多系統(tǒng)參與的極其復(fù)雜的過程,有關(guān)DHA-PC對細(xì)胞周期進程中相關(guān)基因和蛋白表達(dá)的影響及其具體的分子機制尚在進一步的研究中。
[1]Terry P D,Rohan T E,Wolk A.Intakes of fish and marine fatty acids and the risks of cancers of the breast and prostate and of other hormone-related cancers:a review of the epidemiologic evidence[J].Am J Clin Nutr,2003,77:532-43.
[2]Bang H O,Dynerg J,Hjoroe N.The composition of food consumed by Greenland Eskimos[J].Acta Med Scand,1976,200(1-2):69-73.
[3]Schley P D,Jijon H B,Robinson L E,F(xiàn)ield C J.Mechanisms of omega-3 fatty acid-induced growth inhibition in MDA-MB-231 human breast cancer cells[J].Breast Cancer Res Treat,2005,92(2):187-95.
[4]徐玉佩,周家春.磷脂及其衍生物的功能特性探討[J].中國食品添加劑,1998,4:10-2.
[4]Xu Y P,Zhou J C.The functional properties of phospholipids and their derivatives[J].China Food Addit,1998,4:10-2.
[5]Fukunaga K,Hossain Z,Takahashi K.Marine phosphatidylcholine suppresses 1,2-dimethylhydrazine-induced colon carcinogenesis in rats by inducing apoptosis[J].Nutr Res,2008,28(9):635-40.
[6]Park C W,Kwon S J,Han J J,et al.Transesterification of phosphatidylholine with eicosapentaenoic acid ethyl ester using phospholipase A2 in organic solvent[J].Biotechnol Lett,2000,22:147-50.
[7]陳麗娟,盛瑞蘭,汪承亞.AO/EB熒光染色法測定HHT誘導(dǎo)的HL-60細(xì)胞凋亡[J].南京醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(中文版),1997,17(5):514-6.
[7]Chen L J,Sheng R L,Wang C Y.HTT-induced Apoptosis in HL-60 cells detected by Methods of AO/EB fluorescent staining[J].Acta Acad Med Nanjing,1997,17(5):514-6.
[8]Jude S,Roger S,Martel E,et al.Dietary long-chain omega-3 fatty acids of marine origin:a comparison of their protective effects on coronary heart disease and breast cancers[J].Prog Biophys Mol Biol,2006,90(1-3):299-325.
[9]Kelavkar U P,Hutzley J,Dhir R,et al.Prostate tumor growth and recurrence can be modulated by the ω-6:ω-3 ratio in diet:athymic mouse xenograft model simulating radical prostatectomy[J].Neoplasia,2006,8(2):112-24.
[10]Shirota T,Haji S,Yamasaki M,et al.Apoptosis in human pancreatic cancer cells induced by eicosapentaenoic acid[J].Nutrition,2005,21(10):1010-7.
[11]Chen Z Y,Istfan N W.Docosahexaenoic acid is a potent inducer of apoptosis in HT-2 colon cancer cells[J].Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids,2000,63(5):301-8.
[12]林 彬,吳力群,曹景玉.DHA對人肝癌HepG2細(xì)胞的生長抑制作用觀察[J].山東醫(yī)藥,2009,49(10):36-7.
[12]Lin B,Wu L Q,Cao J Y.Effects of DHA on inhibiting the proliferation of HepG2 cells[J].Shandong Med J,2009,49(10):36-7.
[13]秦德元.酶法合成EPA/DNA型卵磷脂[J].食品信息與技術(shù),2004,12:47.
[13]Qin D Y.Enzymatic synthesis of phosphatidylcholine containing EPA and DHA[J].Food Inform Technol,2004,12:47.
[14]Ishigamori H,Hosokawa M,Kohno H,et al.Docosahexaenoic acidcontaining phosphatidylethanolamine enhances HL-60 cell differentiation by regulation of c-jun and c-myc expression[J].Mol Cell Biochem,2005,275(1-2):127-33.
[15]Mehta K,Mcqueen T,Neamati N,et al.Activation of retinoid receptors RARα and RXRα induces differentiation and apoptosis,respectively,in Hela60 cells[J].Cell Growth Differ,1996,7:179-86.
[16]Shao Z M,Dawson M I,Li X S ,et al.P53 independent G0/G1arrest and apoptosis induced by a novel retinoid in human breast cancer cells[J].Oncogene,1995,11:493.
[17]Shiotani A,Iish H,Ishiguro S,et al.Epithelial cell turnover in relation to ongoing damage of the gastric mucosa in patients with early gastric cancer increase of cell proliferation in paramaligant lesions[J].J Gastroenterol,2005,40(4):337-44.
[18]李紅喆.中藥誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡的研究進展[J].醫(yī)學(xué)綜述,2003,9(3):135.
[18]Li H Z.Research Advances on Carcinoma cells apoptosis Induced by Chinese Medicine[J].Med Recapitul,2003,9(3):135.
[19]周曉麗,宋政軍,王旭艷.丹參酮ⅡA對人胃腺癌細(xì)胞SGC-7901增殖、凋亡的影響[J].西安交通大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2007,28(5):511.
[19]Zhou X L,Song Z J,Wang X Y.The effect of TanshinoneⅡA on proliferation and apoptosis of human gastric adenocarcinoma cell line SGC-7901[J].J Xi'an Jiaotong Univ(Med Sci),2007,28(5):511.
[20]樓健穎,吳 丹,林漢庭,等.ω-3多不飽和脂肪酸二十二碳六烯酸對胃癌細(xì)胞株AGS生長和增殖的影響[J].中華普通外科雜志,2007,22(8):613-5.
[20]Lou J Y,Wu D,Lin H T,et al.Effects of docosahexaenoic acid on the growth of a gastric cancer cell lines AGSin vitro[J].Chin J General Surg,2007,22(8):613-5.
[21]Kafrawy O,Zerouga M,Stillwell W,et al.Docosahexaenoic acid in phosphatidylcholine mediates cytotoxicity more effectively than other ω-3 and ω-6 fatty acids[J].Cancer Lett,1998,132(1-2):23-29.
[22]Hossain Z,Konishi M,Hosokawa M,et al.Effect of polyunsaturated fatty acid-enriched phosphatidylcholine and phosphatidyl serine on butyrate-induced growth inhibition differentiation and apoptosis in Caco-2 cells[J].Cell Biochem Funct,2006,24(2):159-65.