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海帶熱休克蛋白70基因體外原核表達(dá)研究

2011-07-12 08:18:46付萬冬姚建亭段德麟
關(guān)鍵詞:海帶克隆質(zhì)粒

付萬冬 ,姚建亭 ,段德麟

(1.浙江省海洋開發(fā)研究院,浙江舟山 316100;2.中國(guó)科學(xué)院海洋研究所,山東青島 266071)

熱休克蛋白是一組在結(jié)構(gòu)上高度保守的蛋白質(zhì),廣泛存在于原核和真核細(xì)胞中,正常情況下與應(yīng)激條件下都發(fā)揮重要的生理功能,但在脅迫條件(包括熱激、物理、化學(xué)和生物等脅迫因子)下,HSPs表達(dá)量顯著增加。HSPs參與維持蛋白質(zhì)空間構(gòu)象,保護(hù)細(xì)胞生命活動(dòng),折疊和跨膜運(yùn)輸新生的蛋白,修復(fù)錯(cuò)誤折疊的蛋白,幫助降解變性的蛋白,穩(wěn)定細(xì)胞骨架和核骨架、增加細(xì)胞的抵抗能力等功能。

HSP70是熱休克蛋白家族中重要成員,廣泛分布于細(xì)胞核、細(xì)胞質(zhì)、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、線粒體和葉綠體等細(xì)胞的各個(gè)部分[1-3]。HSP70在生物對(duì)逆境的適應(yīng),對(duì)減輕逆境脅迫引起的傷害和幫助生物度過不良環(huán)境中起到很大的作用。作為分子伴侶參與所有細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)的從頭合成和定位、蛋白質(zhì)的加工和錯(cuò)誤折疊蛋白質(zhì)的降解及其調(diào)節(jié)過程,因而在正常條件或脅迫條件下,對(duì)于細(xì)胞的功能和代謝都起到重要的作用[4-7]。

海帶是潮間帶典型的褐藻,有重要的經(jīng)濟(jì)價(jià)值和生態(tài)價(jià)值。固著藻類隨潮汐變化,無法逃脫不利的生活環(huán)境,面臨嚴(yán)重的環(huán)境脅迫。因此,固著藻類必須有適當(dāng)?shù)纳砩淖円詰?yīng)對(duì)環(huán)境脅迫。到目前為止,已在一些藻類中開展了有關(guān)脅迫應(yīng)激的研究[8-15],但有關(guān)HSP70在海藻抗逆環(huán)境脅迫中的作用一直未得到深入了解,因此,開展研究海藻受脅迫后,HSP70在抗逆中的作用具有重要的理論意義和潛在的應(yīng)用價(jià)值。在前期克隆得到海帶細(xì)胞質(zhì)定位的HSP70基因全長(zhǎng)cDNA序列基礎(chǔ)上[16-17],將海帶HSP70基因的開放閱讀框區(qū)域克隆到表達(dá)載體,并轉(zhuǎn)化到原核表達(dá)系統(tǒng),進(jìn)行體外表達(dá)。以期為進(jìn)一步研究藻類HSP70的生物學(xué)功能和海藻抗逆分子機(jī)制打下基礎(chǔ)。

1 材料和方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料與儀器試劑

1.1.1 材料處理

海帶cDNA由海帶總RNA為模板反轉(zhuǎn)錄合成,大腸桿菌表達(dá)菌株BL21(DE3)pLysS由本實(shí)驗(yàn)保存。

1.1.2 儀器和試劑

儀器:高壓滅菌鍋YXQ-LS-S(上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠,上海);電子天平AB104-N(梅特勒-托利多儀器有限公司,上海);臺(tái)式冷凍離心機(jī)5417R、常溫高速離心機(jī)5415D、Mastercycler Gradient PCR儀(Eppendorf儀器公司,德國(guó));電泳儀及水平電泳槽(大連捷邁科貿(mào)有限公司,遼寧);水平電泳槽AE-7300(ATTO儀器公司,日本);ImageMaster VDS成像系統(tǒng)(Pharmacia Biotech,瑞典);Millipore純水系統(tǒng)(Millipore公司,美國(guó));超低溫冰箱(三洋儀器公司,日本);超凈工作臺(tái)(蘇凈集團(tuán)安泰公司,江蘇)。

試劑:Taq DNA 聚合酶(附帶 PCR buffer及 dNTPs)、RNA PCR Kit(AMV)Ver.3.0、PMD-18T(大連寶生物工程有限公司,中國(guó))FastaGen小量膠回收試劑盒(飛捷生物技術(shù)有限公司,上海);pEASY-E2 Expression Kit(北京全式金生物技術(shù)有限公司,北京);LA Taq聚合酶(大連寶生物公司);DNA Marker(天根生化科技有限公司,北京);Nde I、Xho I內(nèi)切酶(Promega公司,美國(guó));其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

1.2 海帶HSP70基因ORF的克隆

1.2.1 擴(kuò)增海帶HSP70 ORF引物的設(shè)計(jì)及合成

根據(jù)已克隆測(cè)序的海帶HSP70基因核酸序列(Genbank Accession number:FJ375359),設(shè)計(jì)特異性引物擴(kuò)增海帶HSP70基因開放閱讀框,引物信息如下:上游引物L(fēng)JHSP70-EF:5′-ATGACAGCCGTCGAGGGAGAGAGCG-3′;下游引物 LJHSP70-ER:5′-GTCGATCTCCTCGATCTTGGGCCCG-3′。上游引物起始于起始密碼子,下游引物終止于終止密碼子前(不包括終止密碼子)。從海帶總RNA反轉(zhuǎn)錄成的cDNA中PCR擴(kuò)增出HSP70基因開放閱讀框,擴(kuò)增產(chǎn)物為1 971 bp。引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司協(xié)助合成。

1.2.2 PCR 擴(kuò)增海帶 HSP70 基因 ORF

根據(jù)設(shè)計(jì)的引物L(fēng)JHSP70-EF和LJHSP70-ER從海帶cDNA中擴(kuò)增HSP70 ORF。PCR反應(yīng)體系的組成(共50 μL):10×buffe(rMg2+,25 mM),5 μL;dNTP Mixture(10 mM each),2 μL;Ex Taq聚合酶(2.5 U/μL),0.25 μl;海帶 cDNA,2 μL;引物(各 10 μM),2 μL;dH2O,36.75 μL。PCR 反應(yīng)條件:預(yù)擴(kuò)增 94 ℃,3 min;擴(kuò)增反應(yīng)35個(gè)循環(huán);變性94℃,30 s;退火58℃,30 s;延伸72℃,2 min;最后延伸72℃,10 min。

1.3 HSP70表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建和鑒定

1.3.1 pEASY-E2(+)/HSP70 表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建

取PCR產(chǎn)物在1%瓊脂糖凝膠,100 V電泳30 min,在253 nm波長(zhǎng)下觀察拍照。目的產(chǎn)物用Fastagen小量DNA膠回收試劑盒純化,按說明書所示方法進(jìn)行。將純化的目的片段HSP70和pEASY-E2以體積比2:1混勻,在25℃下連接5 min。將連接好的重組質(zhì)粒命名為pEASY-E2(+)/HSP70。BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞的制備、pEASY-E2(+)/HSP70質(zhì)粒的連接和轉(zhuǎn)化等步驟參照《分子克隆實(shí)驗(yàn)指南》(第3版)。

1.3.2 pEASY-E2(+)/HSP70 表達(dá)質(zhì)粒的鑒定

(1)PCR法鑒定正確表達(dá)方向的陽性重組子

挑選陽性克隆于10 μL無菌水中,渦旋混勻作為反應(yīng)模板,15 μL PCR反應(yīng)體系組成如下:2×Taq Mixer,7.5 μL;菌液,2 μL;LJHSP70-EF(10 μM),1 μL;T7 terminator primer(10 μM),1 μL;dH2O,3.5 μL。PCR反應(yīng)條件:預(yù)擴(kuò)增94℃,3 min;擴(kuò)增反應(yīng)35個(gè)循環(huán);變性94℃,30 s;退火58℃,30 s;延伸72℃,2 min;最后延伸溫度72℃,10 min。取PCR產(chǎn)物在1%瓊脂糖凝膠,100 V電泳30 min,在253 nm波長(zhǎng)下觀察拍照。陽性克隆重組子在2 000 bp左右會(huì)有1條電泳條帶。

(2)限制性酶切分析陽性重組子

挑選正確表達(dá)方向的陽性重組子過夜培養(yǎng)。用堿裂解法提取質(zhì)粒,具體步驟參照《分子克隆實(shí)驗(yàn)指南》(第3版)。對(duì)提取的重組質(zhì)粒pEASY-E2(+)/HSP70,用Nde I和Xho I雙酶切,酶切反應(yīng)于37℃條件下保溫3~4 h,使酶切反應(yīng)完全。1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定篩選的陽性克隆并照相。陽性克隆由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行克隆片段的DNA測(cè)序,測(cè)序結(jié)果與HSP70核酸序列進(jìn)行比對(duì)。將含正確序列的陽性重組質(zhì)粒的表達(dá)菌株BL21(DE3)命名為BL21(DE3)/pEASY-E2(+)/HSP70。

1.4 海帶HSP70的體外表達(dá)和電泳檢測(cè)

將重組菌BL21(DE3)/pEASY-E2(+)/HSP70接種于5 mL含有100 μg/mL氨芐青霉素的LB液體培養(yǎng)基中,于37℃振蕩過夜培養(yǎng)。次日分別取出1 mL菌液接入3瓶50 mL相同的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)2~3 h(OD600約0.6)后,加入終濃度分別為0 mM、1 mM和5 mM的IPTG誘導(dǎo)表達(dá),于37℃振蕩培養(yǎng)不同時(shí)間,以BL21(DE3)/pEASY-E2(+)作為空白對(duì)照。每小時(shí)取出菌液1 mL,5 000×g離心10 min,收集菌體備用。

取上述不同時(shí)間階段的1 mL菌液離心得到的菌體加100 μL dH2O,分別與等體積的2×上樣緩沖液混合,100℃水浴5~8 min。上樣前8 000×g離心5 min。配制12%的SDSPAGE分離膠和5%的濃縮膠,取20 μL加樣于凝膠,在濃縮膠中20 mA,分離膠中40 mA進(jìn)行SDS-PAGE(Laemmli,1970)恒流電泳,電泳結(jié)束后將凝膠用聚丙烯酰胺凝膠染色液,染色15 min。染色結(jié)束后用脫色液將聚丙烯酰胺凝膠背景顏色脫色干凈,此時(shí)蛋白質(zhì)條帶可以清楚顯現(xiàn)出來。

2 結(jié)果與分析

2.1 PCR擴(kuò)增海帶HSP70的ORF

根據(jù)本研究得到海帶HSP70 cDNA序列信息,設(shè)計(jì)了表達(dá)海帶HSP70蛋白的引物,從海帶cDNA中擴(kuò)增出1 970 bp左右的DNA片段(圖1),和預(yù)期要擴(kuò)增的片段大小一致,是否目的片段還要進(jìn)一步驗(yàn)證以確定。

圖1 PCR擴(kuò)增海帶HSP70 ORF結(jié)果Fig.1 The result of ORF fragment of L.japonica HSP70 of PCR amplication

2.2 HSP70表達(dá)質(zhì)粒的鑒定

2.2.1 PCR 擴(kuò)增鑒定陽性的重組子

將擴(kuò)增得到的目的片段進(jìn)行了膠回收,和PMD-18T載體進(jìn)行連接,再轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,將陽性克隆送往上海生工生物工程有限公司測(cè)序。確定是擴(kuò)增的目的片段后,將回收的目的片段和/pEASY-E2表達(dá)載體連接,再轉(zhuǎn)化表達(dá)菌株BL21(DE3),挑選陽性克隆利用表達(dá)蛋白上游引物L(fēng)JHSP70-EF和表達(dá)載體T7終止引物序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增鑒定陽性的重組子。檢測(cè)結(jié)果如圖2所示。根據(jù)結(jié)果可知挑選2個(gè)陽性重組子插入方向正確,可以進(jìn)行下步蛋白表達(dá)實(shí)驗(yàn)。

圖2 PCR檢測(cè)陽性克隆的結(jié)果Fig.2 The result of detection of positive cloning fragment by PCR

2.2.2 限制性酶切分析陽性重組子

對(duì)提取的重組質(zhì)粒pEASY-E2(+)/HSP70,用Nde I和Xho I雙酶切,結(jié)果表明陽性克隆的質(zhì)粒能被兩種酶酶切成線性的質(zhì)粒片段和目的片段(圖3)。

圖3 pEASY-E2(+)/HSP70表達(dá)質(zhì)粒的Nde I和Xho I雙酶切圖譜Fig.3 Restriction patterns of plasmid pEASY-E2(+)/HSP70 digested with Nde I and Xho I

2.3 海帶HSP70基因體外表達(dá)

將構(gòu)建好的表達(dá)質(zhì)粒pEASY-E2(+)/HSP70轉(zhuǎn)化到大腸桿菌表達(dá)菌株BL21(DE3),挑選陽性重組子進(jìn)行LB液體培養(yǎng),當(dāng)菌液的OD600約0.6時(shí),加入終濃度分別為0 mM,1 mM和5mM的IPTG在37℃下培養(yǎng)誘導(dǎo),以空載體pEASY-E2(+)重組子作為對(duì)照。每小時(shí)取樣1次,檢測(cè)外源蛋白的表達(dá)量。結(jié)果表明空載體重組子在SDS-PAGE圖譜上無72 kDa左右的蛋白條帶(圖4);無IPTG誘導(dǎo)的陽性重組子在SDS-PAGE圖譜上在72 kDa左右有1條非常微弱條帶(圖5);而陽性重組子在1 mM或5 mM的IPTG誘導(dǎo)下,SDS-PAGE圖譜上在72 kDa左右有1條明顯的條帶(圖6,圖7),這與海帶HSP70的預(yù)測(cè)分子量72.03 kDa的結(jié)果相符合,說明海帶HSP70基因在體外成功地獲得了表達(dá)。不同時(shí)間對(duì)海帶HSP70蛋白誘導(dǎo)表達(dá)結(jié)果表明,海帶HSP70蛋白的產(chǎn)生與體外誘導(dǎo)時(shí)間顯著相關(guān),未誘導(dǎo)的培養(yǎng)液中幾乎沒有HSP70蛋白的產(chǎn)生。在1 mM或5 mM的IPTG誘導(dǎo)下,伴隨誘導(dǎo)時(shí)間的增長(zhǎng),HSP70蛋白的表達(dá)量顯著增加,當(dāng)誘導(dǎo)5 h以后,基因的表達(dá)達(dá)到平臺(tái),繼續(xù)培養(yǎng),HSP70的表達(dá)并不顯著增高。本研究中,5mM的IPTG誘導(dǎo)外源蛋白HSP70的表達(dá)量要高于相應(yīng)時(shí)刻1 mM的IPTG誘導(dǎo)外源蛋白HSP70的表達(dá)量。

圖4 不同培養(yǎng)時(shí)間下,BL21(DE3)/pEASY-E2(+)的SDS-PAGE分析Fig.4 Analysis of BL21(DE3)/pEASY-E2(+)by SDSPAGE in different cultured times

圖5 無IPTG,不同培養(yǎng)時(shí)間下,BL21(DE3)/pEASY-E2(+)/HSP70的SDS-PAGE分析Fig.5 Analysis of the E.coli BL21(DE3)/pEASY-E2(+)/HSP70)by SDS-PAGE in different cultured times at IPTG concentration of 0 mM.Lane M:Protein Marker;

圖6 1 mM IPTG誘導(dǎo)不同時(shí)間后,BL21(DE3)/pEASYE2(+)/HSP70的SDS-PAGE分析Fig.6 Analysis of the E.coli BL21(DE3)/pEASY-E2(+)/HSP70)by SDS-PAGE in different induced times at IPTG concentration of 1 mM.Lane M:Protein Marker;

圖7 5 mM IPTG,不同誘導(dǎo)時(shí)間,BL21(DE3)/pEASY-E2(+)/HSP70的SDS-PAGE分析Fig.7 Analysis of the E.coli BL21(DE3)/pEASY-E2(+)/HSP70)by SDS-PAGE in different induced times at IPTG concentration of 5 mM.Lane M:Protein Marker;

3 討論

重組子成功構(gòu)建是實(shí)現(xiàn)基因體外表達(dá)的關(guān)鍵。根據(jù)海帶HSP70基因的蛋白序列分析,將編碼HSP70成熟肽的開放閱讀框序列克隆到pEASY-E2表達(dá)載體上并轉(zhuǎn)化到大腸桿菌BL21(DE3)中。轉(zhuǎn)化子經(jīng)PCR篩選、序列測(cè)定以及SDS-PAGE電泳等多重鑒定,結(jié)果顯示,HSP70基因的插入方向正確、序列結(jié)構(gòu)完整、且基因片斷正確的插入到表達(dá)載體相應(yīng)的位置,成功地構(gòu)建了海帶HSP70基因的重組子。SDS-PAGE電泳分析顯示,與無插入片段的陰性對(duì)照相比,在預(yù)測(cè)大小區(qū)域內(nèi),有72 kDa蛋白插入,證明海帶HSP70重組蛋白獲得了表達(dá)。

重組蛋白的高效表達(dá),是體外獲得大量重組蛋白的基礎(chǔ)。體外表達(dá)受多種因素影響,包括培養(yǎng)溫度,誘導(dǎo)時(shí)間,誘導(dǎo)劑量等。不同誘導(dǎo)時(shí)間對(duì)重組蛋白表達(dá)的影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,經(jīng)IPTG誘導(dǎo),菌體很快就能產(chǎn)生重組蛋白,重組蛋白的產(chǎn)量隨誘導(dǎo)時(shí)間而增加。約5 h后,其表達(dá)量達(dá)到平臺(tái)期,過長(zhǎng)時(shí)間的表達(dá),重組蛋白的產(chǎn)量并沒有顯著增加。由于選擇質(zhì)粒帶有氨卞青霉素的抗性,在重組蛋白的表達(dá)過程中,氨卞青霉素具有很強(qiáng)的選擇作用,保證了重組質(zhì)粒的正常生長(zhǎng)。但是,氨卞青霉素本身很不穩(wěn)定,在細(xì)菌培養(yǎng)液中容易被降解,而失去對(duì)重組質(zhì)粒的保護(hù)。因此在重組蛋白的表達(dá)過程中,縮短培養(yǎng)時(shí)間對(duì)保證重組蛋白的純度、預(yù)防污染,都有重要的意義。

重組蛋白的純化方法很多,包括葡聚糖層析、等電點(diǎn)分離、親和層析、透析等多種技術(shù)。一般地,為獲得較高純度的蛋白質(zhì),一般需要結(jié)合一種或幾種不同的純化技術(shù)共同進(jìn)行。本研究選用的表達(dá)載體是pEASY-E2,其上帶有6個(gè)組氨酸,6個(gè)組氨酸在高pH值時(shí)與Ni親和柱形成共價(jià)結(jié)合,從而可將其它菌體雜蛋白逐漸洗脫掉。然后逐漸降低pH,在低pH條件下6個(gè)組氨酸與Ni親和柱分離,從而將重組蛋白洗脫,最終獲得較純的重組蛋白。獲得的經(jīng)純化的重組蛋白,須經(jīng)離體和在體的活性鑒定,才可最終確定其生物學(xué)活性和潛在應(yīng)用價(jià)值,這部分的研究工作正在進(jìn)行中。

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