李平法, 李生瑩, 閆福林, 牛秉軒, 詹合琴
神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子3(Neurotrophin-3,NT-3)是神經(jīng)生長(zhǎng)因子家族成員之一,其對(duì)感覺神經(jīng)元、運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元和交感神經(jīng)元的存活與功能有著十分重要的意義[1~3]。它能使受損的神經(jīng)元長(zhǎng)出側(cè)芽,促進(jìn)神經(jīng)損傷的修復(fù),應(yīng)用NT-3可使3/4的脊髓萎縮細(xì)胞發(fā)生逆轉(zhuǎn),使細(xì)胞的存活數(shù)量明顯增加[4]。
近期,國(guó)內(nèi)外學(xué)者研究發(fā)現(xiàn)NT-3與缺血性腦損傷關(guān)系密切,Zhang等將改良表達(dá)NT-3的神經(jīng)干細(xì)胞移植到嚴(yán)重局部腦缺血的大鼠體內(nèi),結(jié)果顯示存活的移植干細(xì)胞分泌高水平的 NT-3[5],Benoit等人研究發(fā)現(xiàn)在腦缺血再灌注損傷期間,具有完整結(jié)構(gòu)的補(bǔ)體C1q可以誘導(dǎo)神經(jīng)元基因的表達(dá),使NGF和NT-3表達(dá)增加,從而促進(jìn)缺血后神經(jīng)功能的恢復(fù)[6]。
本實(shí)驗(yàn)小組前期研究發(fā)現(xiàn)高翅果菊提取物L(fēng)ac-tuside B(LB)具有較好的抗腦缺血作用[7],但其作用機(jī)制不明。本研究擬從該單體化合物對(duì)大鼠缺血性腦損傷海馬和紋狀體NT-3表達(dá)的影響入手,擬闡明Lactuside B抗缺血性腦損傷的部分作用機(jī)制。
1.1 主要試劑、藥品及儀器 loading buffer和RT-PCR試劑盒(寶生物工程大連有限公司),DEPC液、溴化乙錠(美國(guó)Sigma公司),瓊脂糖(西班牙Biowest公司),50×TAE緩沖液(廣州威佳科技有限公司),D2000DNA分子量標(biāo)記物(北京天根生化有限公司)和 Trizol(美國(guó) Invertrogen公司),無水乙醇、異丙醇和氯仿(天津市德恩化學(xué)試劑有限公司);AG PCR擴(kuò)增儀(德國(guó)Eppendorf公司),DYY-7C型水平電泳儀(北京市六一儀器廠),UV-2102PC紫外分光光度計(jì)(尤尼柯上海儀器有限公司),TGL-16G-A臺(tái)式高速低溫離心機(jī)(上海安亭科學(xué)儀器廠),MDF-U4086S超低溫冰箱(日本 SANYO公司),TOCAN240凝膠成像系統(tǒng)(上海領(lǐng)成生物科技有限公司);尼莫地平注射液(山東方明藥業(yè)股份有限公司),水合氯醛粉劑(天津市瑞金特化學(xué)品有限公司);LB(由新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院藥學(xué)院藥化教研室閆福林教授提供,為白色粉末狀,純度>98%)。
1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物、分組與給藥 動(dòng)物采用健康清潔Ⅱ級(jí)雄性SD大鼠,體重280~320g,購自河南省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,動(dòng)物合格證號(hào):SYXK(豫)2005-0012。動(dòng)物隨機(jī)被分為:假手術(shù)組、模型組、陽性藥物對(duì)照組、LB低劑量組(12.5mg/kg)、中劑量組(25mg/kg)和高劑量組(50mg/kg),共6組,8只/組。所有動(dòng)物于再灌后每天給藥1次,均按5ml/kg腹腔注射給藥。假手術(shù)組、模型組分別給予等體積的蒸餾水,陽性對(duì)照組給予尼莫地平(1mg/kg),LB低、中、高劑量組分別給予相應(yīng)劑量的實(shí)驗(yàn)藥物。各組動(dòng)物于再灌注24h和72h后分別處死4只,進(jìn)行RT-PCR實(shí)驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)過程對(duì)動(dòng)物的處理符合中華人民共和國(guó)科學(xué)技術(shù)部2006年頒布的《關(guān)于善待實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的指導(dǎo)性意見》。
1.3 大鼠大腦中動(dòng)脈阻塞線的制備 1.5號(hào)日本漁線(DaDong Yang制造),直徑 0.2mm,剪成5cm的數(shù)小段,將其末端靠近火焰燒圓,在長(zhǎng)2.0cm處做標(biāo)記,放入肝素鈉溶液中浸泡備用。
1.4 大鼠缺血性腦損傷模型的制備及模型成功判定指標(biāo) 大鼠大腦中動(dòng)脈缺血再灌注損傷模型的制備參照Longa[8]線栓法和本組實(shí)驗(yàn)方法制備大鼠大腦中動(dòng)脈缺血再灌注損傷模型(動(dòng)物麻醉采用10%的水合氯醛),將預(yù)先制備好的阻塞線插入頸內(nèi)動(dòng)脈(intemal carotid artery,ICA),插入長(zhǎng)度為2.0cm,假手術(shù)組阻塞線插入ICA長(zhǎng)度為0.5cm,將動(dòng)物傷口處縫合后回籠飼養(yǎng)。所有動(dòng)物均阻塞2h后再把阻塞線球端拉回頸外動(dòng)脈進(jìn)行再灌注,動(dòng)物在手術(shù)清醒后和處死前根據(jù)Zea-longa評(píng)分法[8]進(jìn)行神經(jīng)缺損癥狀評(píng)分。
1.5 RT-PCR方法檢測(cè)NT-3基因的轉(zhuǎn)錄水平取所需實(shí)驗(yàn)大鼠斷頭取腦,快速分離出雙側(cè)海馬和紋狀體(取殼核和尾狀核的全部條紋狀組織)在液氮中磨碎,Trizol抽提總RNA,檢測(cè)其純度和濃度保證所提的RNA無降解和污染。用TaKaRa pime-Script TM RT-PCR試劑盒合成cDNA模板,以β-actin基因作為內(nèi)參基因。PCR反應(yīng)溶液為50μl,上下游引物(見表1)各0.5μl(100μmol/L)。PCR 反應(yīng)條件為:95℃ 5min;95℃ 30s、50℃ 30s、72℃ 1min,30個(gè)循環(huán);72℃ 10min。PCR產(chǎn)物在2%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳,凝膠成像分析儀拍照記錄后用Quantity One圖像分析軟件測(cè)定各條帶灰度,以擴(kuò)增的特異性目的片段灰度值與同時(shí)擴(kuò)增的內(nèi)參β-actin片段灰度值的比值作為特異性擴(kuò)增目的片段的半定量檢測(cè)值,每組每只實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,求其平均值。
2.1 大腦中動(dòng)脈缺血再灌注模型成功的判定和LB對(duì)大鼠神經(jīng)行為學(xué)評(píng)分的影響 手術(shù)動(dòng)物麻醉清醒后,假手術(shù)組大鼠活動(dòng)正常,無神經(jīng)功能缺損癥狀。模型組大鼠則出現(xiàn)不同程度的神經(jīng)缺損表現(xiàn),如左側(cè)前肢屈曲內(nèi)收、爬行時(shí)向左側(cè)劃圈、站立時(shí)向左側(cè)傾倒和意識(shí)喪失等,神經(jīng)行為學(xué)評(píng)分在1~4分之間。LB各劑量組在缺血再灌注24h和72h后,均可降低大鼠的神經(jīng)行為學(xué)評(píng)分,與模型組比較有顯著性差異(P<0.05或 P<0.01),其中劑量組作用較強(qiáng),與陽性藥物對(duì)照組比較有顯著性差異(P<0.05或 P <0.01);用藥72h后 LB 低、中劑量組神經(jīng)行為學(xué)評(píng)分低于用藥24h,中劑量組有顯著性差異(P <0.05或 P <0.01)(見表2)。
2.2 LB對(duì)大鼠缺血性腦損傷海馬組織各時(shí)段NT-3 mRNA的影響 實(shí)驗(yàn)顯示:LB各劑量組均能增加海馬NT-3 mRNA的表達(dá),與模型組比較有顯著性差異(P<0.05或 P<0.01),其低、中劑量組作用較好優(yōu)于陽性對(duì)照藥(P<0.05或 P<0.01),用藥72h較用藥24h的作用更強(qiáng),兩者相比有顯著性差異(見表3、圖1)。
2.3 LB對(duì)缺血性腦損傷大鼠紋狀體各時(shí)段NT3 mRNA的影響 結(jié)果顯示:LB各劑量組均能增加紋狀體NT-3 mRNA的表達(dá),與模型組比較有顯著性差異(P<0.05或 P<0.01),其中、低劑量組優(yōu)于陽性對(duì)照藥(P<0.05或 P<0.01),用藥72h較用藥24h的作用更強(qiáng),兩者相比有顯著性差異(見表4、圖2)。
表1 NT-3和β-actin的上下游引物
表2 LB對(duì)缺血性腦損傷大鼠神經(jīng)缺損癥狀評(píng)分的影響±s)
表2 LB對(duì)缺血性腦損傷大鼠神經(jīng)缺損癥狀評(píng)分的影響±s)
與模型組比較*P <0.05,**P <0.01;與陽性藥物對(duì)照組比較#P <0.05,##P <0.01;與用藥24h比較 ΔP <0.05,ΔΔP <0.01
組別 藥物劑量(mg/kg)時(shí)間麻醉清醒后24h 72h假手術(shù)組模型組陽性對(duì)照組LB低劑量組LB中劑量組LB高劑量組--112.525500.00 ±0.003.72 ±0.453.95 ±0.353.26 ±0.853.98 ±0.633.99 ±0.520.00 ±0.003.60 ±0.512.61 ±0.52*2.11 ±0.48**2.00 ±0.51**#2.41 ±0.49**0.00 ±0.003.69 ±0.712.58 ±0.53*Δ 2.05 ±0.58**1.40 ±0.67**##Δ 2.35 ±0.92**Δ
表3 LB對(duì)缺血性腦損傷大鼠海馬NT-3 mRNA表達(dá)的影響±s)
表3 LB對(duì)缺血性腦損傷大鼠海馬NT-3 mRNA表達(dá)的影響±s)
與模型組比較*P<0.05,**P<0.01;與陽性藥物對(duì)照組比較#P <0.05,##P <0.01;與用藥24h 比較 ΔP <0.05,ΔΔP <0.01
組別 藥物劑量(mg/kg)IR 24h IR 72h假手術(shù)組模型組陽性對(duì)照組LB低劑量組LB中劑量組LB高劑量組--112.525500.17 ±0.050.24 ±0.010.37 ±0.02**0.50 ±0.02**##0.61 ±0.04**##0.33 ±0.01**#0.18 ±0.010.21 ±0.010.57 ±0.01**0.83 ±0.05**##ΔΔ 0.97 ±0.06**##ΔΔ 0.45 ±0.01**
表4 LB對(duì)缺血性腦損傷大鼠紋狀體NT-3 mRNA表達(dá)的影響
圖1 Lactuside B對(duì)缺血性腦損傷大鼠海馬NT-3 mRNA表達(dá)的影響(PCR電泳圖)
圖2 LB對(duì)缺血性腦損傷大鼠紋狀體NT-3 mRNA表達(dá)影響(PCR電泳圖)
缺血性腦損傷是由于各種原因引起的腦部供血減少或中斷而導(dǎo)致的以神經(jīng)感覺和運(yùn)動(dòng)障礙為主的一類腦血管性疾病,臨床上多見于腦血栓形成或腦栓塞,其它如藥物中毒、心臟驟停等原因也可導(dǎo)致不同程度的腦缺血性損傷。
缺血性腦損傷有著復(fù)雜的病理生理過程,由于腦血流的急性中斷和隨后的再灌注發(fā)生,可導(dǎo)致不同腦區(qū)的神經(jīng)細(xì)胞廣泛損傷。腦缺血后神經(jīng)損害主要發(fā)生在大腦皮質(zhì)和紋狀體[9,10],海馬部位的神經(jīng)元也易受累[11,12]。
有研究認(rèn)為神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子-3(NT-3)在保護(hù)神經(jīng)細(xì)胞、避免其損傷死亡的過程中起著一個(gè)重要的作用,缺血性腦損傷的危險(xiǎn)因素可下調(diào)其在腦部的表達(dá)[13]。也有研究發(fā)現(xiàn),腦缺血后海馬 NT-3維持一定水平在某時(shí)間范圍內(nèi)有利于腦缺血[14]。
雖然NT-3對(duì)于缺血性腦損傷的保護(hù)作用早已被人們所認(rèn)知,但許多研究證實(shí)腦缺血后皮質(zhì)、海馬部位的 NT-3表達(dá)減少[15,16],此可能是腦組織對(duì)缺血損害的一種防御性反應(yīng)。本實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),缺血性腦損傷24h和72h后模型組動(dòng)物的NT-3 mRNA在海馬和紋狀體卻表達(dá)增多,主要原因可能為本實(shí)驗(yàn)所采用的時(shí)間點(diǎn)與其它研究有較大的差別,以往NT-3在腦組織的基因或蛋白表達(dá)研究都是在腦缺血后十幾分鐘或幾小時(shí)之內(nèi)取材,而本實(shí)驗(yàn)依據(jù)給藥需要設(shè)置的時(shí)間點(diǎn)較長(zhǎng)。Yang等研究報(bào)道,用核酶保護(hù)和原位雜交法檢測(cè)短暫性腦缺血大鼠海馬神經(jīng)元時(shí)發(fā)現(xiàn)NT-3的表達(dá)趨勢(shì)是先下降后上升[17],故本實(shí)驗(yàn)結(jié)果與其它研究結(jié)果并不背離。
本實(shí)驗(yàn)研究還發(fā)現(xiàn),在缺血性腦損傷大鼠的海馬和紋狀體組織,Lactuside B各劑量組均能增加其NT-3 mRNA的表達(dá),且中、低劑量組優(yōu)于陽性對(duì)照藥,用藥72h NT-3 mRNA表達(dá)更多。實(shí)驗(yàn)結(jié)果提示:Lactuside B良好的抗腦缺血作用與其能夠上調(diào)、維持海馬和紋狀體NT-3 mRNA的表達(dá)有關(guān),但兩部位NT-3 mRNA的表達(dá)與其蛋白的表達(dá)是否一致,尚需在以后的實(shí)驗(yàn)中去研究證實(shí)。
目前,對(duì)于缺血性腦損傷的有效治療除了在治療窗內(nèi)進(jìn)行溶栓外,其它的藥物治療主要傾向于神經(jīng)功能的保護(hù),但能見諸于臨床并有確切作用的藥物很少。有關(guān)Lactuside B抗缺血性腦損傷的作用和作用機(jī)制的研究,將為其作為神經(jīng)功能保護(hù)的潛在新藥提供一定的理論基礎(chǔ)和實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
[1] Friedman WJ,Ibanez CF,Hallbook F,et al.Differential actions of neurotrophins in the locus coeruleus and basal forebrain[J].Exp Neurol,1993,119(1):72 - 78.
[2] Hohn A,Leibrock J,Bailey K,et al.Identification and characterization of a novel member of the nerve growth factor/brain-derived neurotrophic factor family[J].Nature,1990,344(6264):339 - 341.
[3] Farinas I,Jones KR,Backus C,et al.Severe sensory and sympathetic deficits in mice lacking neurotrophin-3[J].Nature,1994,369(6482):658-661.
[4] Bradbury EJ,King VR,Simmons LJ,et al.NT-3,but not BDNF,prevents atrophy and death of axotomized spinal cord projection neurons[J].Eur JNeurosci,1998,10(10):3058 - 3068.
[5] Zhang ZH,Wang RZ,Wang RZ,et al.Transplantation of neural stem cells modified by human neurotrophin-3 promotes functional recovery after transient focal cerebral ischemia in rats[J].Neurosci Lett,2008,444(3):227 -230.
[6] Benoit ME,Tenner AJ.Complement protein C1q-mediated neuroprotection is correlated with regulation of neuronal gene and microRNA expression[J].JNeurosci,2011,31(9):3459 -3469.
[7] 詹合琴,郭蘭青,崔建敏,等.高翅果菊化學(xué)成分及l(fā)actuside B的抗腦缺血活性研究[J].中草藥,2010,41(5):692-696.
[8] Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al.Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats[J].Stroke,1989,20:84-91.
[9] Hou SW,Wang YQ,Xu M,et al.Functional integration of newly generated neurons into striatum after cerebral ischemia in the adult rat brain[J].Stroke,2008,39:2837 -2844.
[10] Tanaka K,Wada N,Ogawa N,et al.Chronic cerebral ischemia-repoperfusion induces transient reversible monoaminergic changes in the rat brain[J].Neurochem Res,2000,25(2):313 - 320.
[11] Sasaki T,Hamada J,Shibata M,et al.Inhibition of nitric oxide production during global ischemia ameliorates ischemic damage of pyramidal neurons in the hippocampus[J].Keio JMed,2001,50(3):82-87.
[12] Ray AM,Benham CD,Roberts JC,et al.Capsazepine protects against neuronal injury caused by Oxygen Glucose Deprivation by Inhibiting 1h[J].J Neurosci,2003,23(31):10146 -10153.
[13] Yang JT,Chang CN,Wu JH,et al.Cigarette smoking decreases neurotrophin-3 expression in rat hippocampus after transient forebrain ischemia[J].Neurosci Res,2008,60(4):431 -438.
[14] Yang JT,Chang CN,Lee TH,et al.Hyperbaric oxygen treatment decreases post-ischemic neurotrophin-3 mRNA down-regulation in the rat hippocampus[J].Neuroreport,2001,12(16):3589 -3592.
[15] Takeda A,Onodera H,Yamasaki Y,et al.Decreased expression of neurotrophin-3 mRNA in the rat hippocampus following transient forebrain ischemia[J].Brain Res,1992,569(1):177 -180.
[16] 李宗敏,李 莉,陳立君,等.局部亞低溫對(duì)大鼠局灶腦缺血再灌注后神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子-3表達(dá)的影響[J].國(guó)際病理科學(xué)與臨床雜志,2009,29(1):6 -9.
[17] Yang JT,Chang CN,Lee TH,et al.Effect of dexamethasone on the expression of brain-derived neurotrophin factor and neurotropuin-3 messenger ribonucleic acid after forebrain ischemia in the rat[J].Crit Care Med,2002,30(4):913 -918.