成都信息工程學(xué)院資源環(huán)境學(xué)院 譚顯東 段婭寧 王君君 羊依金
通過固態(tài)發(fā)酵技術(shù)將中藥渣轉(zhuǎn)變?yōu)榈鞍罪暳?,可以實現(xiàn)中藥渣的完全利用,所獲得的飼料產(chǎn)品適口性好,營養(yǎng)豐富,并且具有防病保健的功效(劉鳳梅等,2011;譚顯東等,2010、2008;秦嶺等,2008;王兵等,2007;楊威,2006)。
有研究認為,混菌發(fā)酵更具有優(yōu)勢,一方面,混菌發(fā)酵能夠充分利用不同菌株基因產(chǎn)物,完成單個菌種難以完成的復(fù)雜代謝作用;另一方面,酶促作用生成的糖立即被發(fā)酵糖的微生物所利用,因此有利于維持降解產(chǎn)物較低的濃度,消除降解產(chǎn)物對酶合成的阻遏作用和反應(yīng)終產(chǎn)物對酶的反饋抑制,縮短發(fā)酵過程(邱立友,2008;陳洪章和徐建,2004)。為了考察酵母菌的加入對康寧木霉發(fā)酵三七渣的影響,試驗采用康寧木霉/熱帶假絲酵母對其進行混菌發(fā)酵,分析其發(fā)酵動力學(xué)過程,并將混菌發(fā)酵過程與單菌發(fā)酵過程進行比較。
1.1 菌種康寧木霉(Trichoderma koningii 3.2774)由四川大學(xué)建筑與環(huán)境學(xué)院提供;熱帶假絲酵母(Candida tropicalis)由河北科技大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院提供。
1.2 培養(yǎng)基 PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯浸取液1.0 L,葡萄糖20.0 g,瓊脂15.0 g,pH自然,121℃滅菌20 min,用于康寧木霉的培養(yǎng);土豆汁培養(yǎng)基:土豆汁1.0 L,葡萄糖20.0 g,pH自然,121℃滅菌20 min,用于熱帶假絲酵母的培養(yǎng)。除特別說明外,本試驗所用固態(tài)培養(yǎng)基組成為:過60目篩的三七渣 10.0 g, 固液比為 1∶2,(NH4)2SO40.5 g,KH2PO40.02 g,K2HPO40.025 g,MgSO40.005 g,NaCl 0.005 g。初始pH自然,121℃滅菌30 min,用于固態(tài)發(fā)酵試驗。
1.3 三七渣 三七渣由四川省某中成藥廠提統(tǒng)供,濕物料經(jīng)烘干、粉碎、過60目篩后置于干燥器中備用。本試驗所用藥渣中主要成分含量如下:淀粉33.13%,粗蛋白質(zhì)12.28%,真蛋白質(zhì)9.97%,還原糖0.35%。本文中若無特別說明,藥渣質(zhì)量均以絕干物料計量。
1.4 種子液 康寧木霉采用PDA平板培養(yǎng)基在30℃下恒溫培養(yǎng)3~3.5 d后刮下,將其制成濃度為2×107個/mL的孢子懸液;熱帶假絲酵母采用土豆汁培養(yǎng)基在30℃下恒溫培養(yǎng)約16 h,制成濃度為2×107個/mL的菌懸液。接種量定義如下:10 g三七渣培養(yǎng)基中接入1 mL菌懸液 (或孢子懸液),稱為10%的接種量,依此類推。
1.5 試驗方法
1.5.1 固態(tài)發(fā)酵法 康寧木霉純種發(fā)酵:取若干個容量為250 mL的錐形瓶,每個錐形瓶中裝入含10 g三七渣的固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基,將其高溫滅菌冷卻后接入1 mL康寧木霉孢子懸液,然后進行恒溫培養(yǎng):培養(yǎng)溫度為30℃,培養(yǎng)時間為10 d。試驗開始后每隔12 h按次序取出其中的部分錐形瓶用于分析測試發(fā)酵培養(yǎng)物的pH、淀粉酶活、干重、淀粉含量、粗蛋白質(zhì)含量、真蛋白含量、還原糖含量、總糖含量??祵幠久?熱帶假絲酵母混菌發(fā)酵:除了接種條件(先接入1 mL康寧木霉孢子懸液,恒溫培養(yǎng)24 h后再接入1 mL的熱帶假絲酵母菌懸液)與康寧木霉純種發(fā)酵過程有所區(qū)別外,其余過程均相同的;試驗結(jié)果為3個平行樣試驗結(jié)果的平均值。
1.5.2 分析方法 粗蛋白質(zhì)的測定:采用凱氏定氮法測定(張麗英,2010);真蛋白質(zhì)的測定:發(fā)酵樣品先進行醇洗去除其中的無機氮 (胡艷麗和王克然,2007),再采用凱氏定氮法測定 (張麗英,2010)。還原糖、總糖的測定:采用3,5-二硝基水楊酸法(俞建瑛等,2005);粗酶液的提取與酶活的測定:準確稱取1.00 g發(fā)酵培養(yǎng)物(濕基),將其溶于pH為4.6的50 mL 0.2 mol/L乙酸-乙酸鈉緩沖液中,在40℃恒溫空氣浴中振蕩浸提1 h,然后經(jīng)四層紗布過濾后,將濾液在5000 r/min條件下離心10 min,取上清液制成粗酶液,置于冰箱中待用。淀粉酶活力參照(陳毓荃2002)提供的方法進行測定;淀粉的測定:酸水解法(中華人民共和國衛(wèi)生部、中國國家標準化管理委員會,2009)。
2.1 真蛋白質(zhì)含量的動態(tài)變化 由圖1可知,發(fā)酵過程中發(fā)酵培養(yǎng)物真蛋白質(zhì)含量的變化大致可以分為三個階段:第一個階段:發(fā)酵0~24 h期間,真蛋白質(zhì)含量幾乎無變化;第二個階段:發(fā)酵24~72 h期間,真蛋白質(zhì)含量增長迅速;第三個階段:發(fā)酵72~192 h期間,真蛋白質(zhì)含量增長緩慢,特別是在168~192 h,真蛋白質(zhì)含量基本無變化。在發(fā)酵0~144 h期間,混菌發(fā)酵體系與單菌發(fā)酵體系的真蛋白質(zhì)含量基本相同;在發(fā)酵末期(156~192 h),單菌發(fā)酵體系的真蛋白質(zhì)含量比混菌發(fā)酵體系要高出近兩2百分點。
圖1 發(fā)酵培養(yǎng)物真蛋白質(zhì)含量的動態(tài)變化
2.2 產(chǎn)品收率的動態(tài)變化 由圖2可知,隨發(fā)酵時間的延長產(chǎn)品收率不斷下降。在發(fā)酵0~108 h期間,產(chǎn)品收率下降較快;在發(fā)酵156~192 h期間,產(chǎn)品收率幾乎不再變化,并且混菌發(fā)酵體系的產(chǎn)品收率比單菌發(fā)酵體系高出大約3個百分點。
2.3 還原糖和總糖含量的動態(tài)變化 由圖3可知,發(fā)酵過程中總糖含量不斷降低,還原糖含量先升高,到達峰值后又逐漸下降。混菌發(fā)酵體系還原糖含量先于單菌發(fā)酵體系達到峰值,并且混菌體系的峰值略高于單菌體系;在發(fā)酵12~84 h期間,混菌發(fā)酵體系的總糖含量低于單菌發(fā)酵系統(tǒng),說明酵母菌的加入在發(fā)酵前期可以促進總糖的消耗,提高還原糖生成的速率。
2.4 pH的動態(tài)變化 由圖4可知,單菌發(fā)酵系統(tǒng)和混菌發(fā)酵系統(tǒng)的pH下降趨勢基本一致,但是在發(fā)酵36~72 h期間混菌發(fā)酵體系的pH明顯低于單菌發(fā)酵體系,這與發(fā)酵前期酵母菌對總糖代謝的促進作用相關(guān)。
2.5 淀粉酶活力的動態(tài)變化 由圖5可知,發(fā)酵初期(0~36 h),單菌和混菌發(fā)酵體系的淀粉酶活力均比較低,且差距不大;此后,單菌體系的酶活力均要高于混菌體系。原因可能是發(fā)酵初期,生物量相對較少,體系中的營養(yǎng)組分能夠同時滿足多種微生物生長的需要,但是到了發(fā)酵中后期,隨著生物量的增加,混菌體系中酵母菌會與康寧木霉競爭有限的營養(yǎng)物質(zhì),從而在一定程度上影響康寧木霉的生長和產(chǎn)酶。
2.6 淀粉含量的動態(tài)變化 由圖6可知,在發(fā)酵60 h以后,單菌發(fā)酵體系的淀粉含量一直低于混菌發(fā)酵體系;由此說明在發(fā)酵中后期,與混菌發(fā)酵體系相比,單菌發(fā)酵體系更能促進淀粉的水解和利用,這與發(fā)酵中后期酵母菌與康寧木霉競爭營養(yǎng)物質(zhì)從而影響康寧木霉產(chǎn)酶相關(guān)。
采用康寧木霉/熱帶假絲酵母混菌固態(tài)發(fā)酵三七渣生產(chǎn)蛋白飼料的動力學(xué)研究結(jié)果表明,與康寧木霉純種發(fā)酵相比,康寧木霉/熱帶假絲酵母混菌固態(tài)發(fā)酵三七渣生產(chǎn)蛋白飼料無明顯優(yōu)勢。在發(fā)酵前期,混菌發(fā)酵體系可以在一定程度上促進總糖消耗、提高還原糖生成的速率;在發(fā)酵中后期,單菌發(fā)酵體系的酶活力和真蛋白質(zhì)含量更高。
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