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流產(chǎn)模型孕鼠脾臟調(diào)節(jié)性T細(xì)胞分離純化方法的初步建立

2012-12-01 06:16殷治華趙富璽穆雅琴劉潤花王健馮婷婷齊彥
中國實(shí)用醫(yī)藥 2012年6期
關(guān)鍵詞:磁珠調(diào)節(jié)性懸液

殷治華 趙富璽 穆雅琴 劉潤花 王健 馮婷婷 齊彥

妊娠是極其復(fù)雜的生理過程,近代生殖免疫學(xué)研究認(rèn)為,正常妊娠的維持有賴于母胎免疫耐受的形成[1],一旦母胎免疫失衡,可能發(fā)生原因不明復(fù)發(fā)性流產(chǎn)(URSA)的病理妊娠。而調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(Treg細(xì)胞)對于母體免疫耐受胎兒必不可少,是調(diào)控母胎免疫耐受形成的重要因素[2]。

在不明原因復(fù)發(fā)性流產(chǎn)的研究中,探討Treg細(xì)胞中轉(zhuǎn)錄因子FoxP3對細(xì)胞因子受體表達(dá)調(diào)控的分子機(jī)制,我們是以孕鼠(流產(chǎn)模型和正常對照)脾臟淋巴細(xì)胞為研究對象的,我們可以通過CD熒光抗體標(biāo)記后,再以免疫磁珠細(xì)胞分選法(MACS)或流式細(xì)胞分選法(FACS)獲得Treg細(xì)胞。因此,建立有效的流產(chǎn)模型孕鼠脾臟淋巴細(xì)胞分離技術(shù)是進(jìn)行這些研究的先決條件。本文采用免疫磁珠細(xì)胞分選法對流產(chǎn)模型孕鼠脾臟Treg細(xì)胞進(jìn)行分離,并對流產(chǎn)模型孕鼠脾臟Treg細(xì)胞的純度和活性及獲得率進(jìn)行分析。

1 材料和方法

1.1 研究對象 經(jīng)與雄性DBA/2J孕鼠(購自北京華阜康公司)交配受孕的雌性CBA/J孕鼠(購自上海斯萊克公司),飼養(yǎng)于山西大同大學(xué)免疫研究所動物室。

1.2 主要試劑 小鼠淋巴細(xì)胞分離液;紅細(xì)胞裂解液;小鼠CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞磁珠分選試劑盒;大鼠抗小鼠CD4-FITC標(biāo)記、大鼠抗小鼠CD25-PE標(biāo)記的單克隆抗體,MS磁珠分選柱、LD磁珠分選柱。

1.3 主要儀器 流式細(xì)胞儀:美國BD FACS Calibur;超靜工作臺:新加坡ESCO;倒置顯微鏡:日本OLYMPUS CKX-31;二氧化碳恒溫培養(yǎng)箱:國產(chǎn)上海博訊HH.CP-01A;低溫冷凍臺式離心機(jī):國產(chǎn)湖南賽特湘儀TGL-20 m;免疫磁珠磁力架、MidiMACS分選器和MiniMACS分選器:德國MACS Miltnyi Biotec。

1.4 實(shí)驗(yàn)方法

1.4.1 孕鼠脾臟研磨與脾細(xì)胞懸液制備 孕鼠懷孕第9天頸椎脫臼處死,75%酒精浸泡3 min,將孕鼠置于無菌紙上,左腹側(cè)朝上,放于無菌超凈臺中;在孕鼠左腹側(cè)中部剪開孕口,撕開皮膚,暴露腹壁,可見紅色長條狀脾臟;在脾臟下側(cè)提起腹膜,剪開后上翻,暴露脾臟,用鑷子提起脾臟,眼科剪無菌分離脾臟下面的結(jié)締組織,取出脾臟,放入盛有5 ml Hank's液的培養(yǎng)皿中;制備脾細(xì)胞懸液:篩網(wǎng)研磨法:將脾臟放置篩網(wǎng)上,用2 ml注射器針芯輕輕研壓脾臟,獲細(xì)胞懸液;收集制備好的脾細(xì)胞懸液,1800rpm 4℃離心8 min;棄上清,重懸細(xì)胞,加5 ml ELS(紅細(xì)胞裂解液),混勻,室溫靜置5 min;加Hank's液至10 ml,混勻,1800 rpm 4℃離心8 min;棄上清,加Hank's液至10 ml,混勻,篩網(wǎng)過濾,1800 rpm 4℃離心8 min,棄上清;5 ml RPMI 1640 重懸細(xì)胞;計數(shù):190 μl臺盼蘭 +10 μl細(xì)胞懸液,混勻,取10 μl滴于計數(shù)板上,計數(shù)2個相對大方格內(nèi)的細(xì)胞總數(shù),并調(diào)整細(xì)胞濃度到108mol/L。

1.4.2 免疫熒光抗體標(biāo)記及磁珠分選 磁珠陽性分選CD+4T 細(xì)胞:1 ×108個細(xì)胞用100 μl的1640 重懸,加入10 μl CD4-FITC,混勻,4℃ ~8℃孵育 15 min,再加入 1 ml RPMI,混勻,1000 r/min離心10 min,棄上清,重懸于80 μl的1640中。細(xì)胞懸液中加入40 μl CD4磁珠,混勻4℃ ~8℃孵育20 min,buffer洗滌后1000 r/min離心10 min,棄上清,沉淀,用500 μl buffer重懸。將LD磁珠分選柱置于分選器中,2 ml buffer過柱,然后將細(xì)胞懸液加入其中,收集從分選柱中流出的細(xì)胞,得到CD4+細(xì)胞。

磁珠陽性分選CD+CD+T細(xì)胞和陰性分選CD+CD-425425T細(xì)胞:計數(shù)從分選柱中流出的CD4+T細(xì)胞,調(diào)細(xì)胞濃度,得量為 1 ×107個細(xì)胞。用 90 μl buffer重懸,加入 10 μL CD25磁珠,混勻,4~8℃孵育15 min,將MS磁珠分選柱置于分選器中,500 μl buffer過柱,然后將細(xì)胞懸液加入其中,用3 500 μl buffer洗柱,收集流下來的細(xì)胞懸液和洗柱液,此收集液即為CD4+CD25-T細(xì)胞,留作轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn)用。然后將柱子放入收集管中,移開磁場,向柱子中再加入1 ml buffer,用塞子快速將磁珠標(biāo)記的CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞沖出柱子。

細(xì)胞計數(shù):190 μl臺盼蘭 +10 μl細(xì)胞懸液,混勻,取10 μl滴于計數(shù)板上,計數(shù)2個相對大方格內(nèi)的細(xì)胞總數(shù)。觀察細(xì)胞存活率。細(xì)胞存活率計算公式如下:細(xì)胞存活率=染色陰性細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù)100%。

1.4.3 流式細(xì)胞儀檢測 取1 105個細(xì)胞用抗CD4-FITC、抗CD25-PE的抗體雙色標(biāo)記,室溫避光孵育30 min后,用PBS液洗滌重懸,上流式細(xì)胞儀檢測分選的CD4+CD25+T細(xì)胞和CD4+CD25-細(xì)胞T的純度。

2 結(jié)果

流產(chǎn)模型孕鼠脾臟細(xì)胞經(jīng)過多次免疫磁珠細(xì)胞分選法兩步分選得到CD4+/CD25

+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞純度為(93.51.1)%,T細(xì)胞純度為(96.60.6)%,如圖1、圖2。

圖1 分選后的調(diào)節(jié)性T細(xì)胞,CD4+/CD25+

圖2 分選后的CD4+/CD25-細(xì)胞

3 討論

CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(Treg細(xì)胞)是一類具有調(diào)節(jié)功能的T細(xì)胞群體,其可能通過抑制CD4+/CD8+T細(xì)胞,B細(xì)胞增生,抑制抗原提呈細(xì)胞(APC),如子宮樹突狀細(xì)胞(uDCs)和單核細(xì)胞成熟,抑制子宮NK細(xì)胞的細(xì)胞毒作用,以及Ig、細(xì)胞因子的產(chǎn)生等來維持母體對孕體的免疫耐受[3],Zenclussen 等[4,5]發(fā)現(xiàn)自然流產(chǎn)模型小鼠中 Treg 細(xì)胞在數(shù)量和功能上比正常妊娠模型小鼠都顯示有一定程度的下降,妊娠誘導(dǎo)的Treg細(xì)胞在母胎耐受中起到了至關(guān)重要的作用,由于該類細(xì)胞調(diào)節(jié)免疫的機(jī)理尚未得到完全闡明,因此分離、培養(yǎng)和擴(kuò)增Treg細(xì)胞,已成為目前研究母胎免疫耐受的重要內(nèi)容之一。

實(shí)驗(yàn)中如何獲得大量Treg細(xì)胞是進(jìn)行研究的前提條件。我們采用密度梯度離心法,從孕鼠脾臟組織中分離外周血單個核細(xì)胞,包括淋巴細(xì)胞、少量的單核細(xì)胞、中性粒細(xì)胞及混雜的紅細(xì)胞和血小板。其原理是利用各種細(xì)胞大小、密度、表面電荷、黏附能力等的差異進(jìn)行分離[6],本實(shí)驗(yàn)采用小鼠淋巴細(xì)胞分離液作為分離純化試劑。

對于用于體外擴(kuò)增的Treg細(xì)胞,目前常用的分選方法是免疫磁珠分選和流式細(xì)胞分選。免疫磁珠分選一般用CD4、CD25抗原作為分選標(biāo)記來純化小鼠的Treg細(xì)胞,其原理是將包被有關(guān)抗體的磁珠與待分離細(xì)胞充分作用,這樣借助于抗體磁珠,將與相應(yīng)的細(xì)胞結(jié)合成:細(xì)胞-抗體-磁珠復(fù)合物,該細(xì)胞在磁場中運(yùn)動與其他細(xì)胞產(chǎn)生明顯差別。如采用層析的方法,將層析柱放于強(qiáng)磁場中,與磁珠結(jié)合的細(xì)胞運(yùn)動將受限,而未與磁珠結(jié)合的細(xì)胞將先被洗脫下出來,再將該柱移出磁場,與結(jié)合的細(xì)胞也將被洗脫下來,達(dá)到分離目的。

免疫磁珠分選和常用的流式細(xì)胞分選相比,具有快速、高效、對靶細(xì)胞的活性和功能干擾少的優(yōu)點(diǎn),流式細(xì)胞分選雖然可以同時對2個甚至更多的CD熒光抗體標(biāo)記信號一次性進(jìn)行分選,分離純度高,但分離速度慢,細(xì)胞最終獲得率低,對細(xì)胞損傷較大,對于功能性的表面分子有激惹作用。綜合看來,我們采用免疫磁珠兩步分選來得到調(diào)節(jié)性T細(xì)胞和T細(xì)胞,對于孕鼠脾臟淋巴細(xì)胞的分離純化,取得較好的分離效果,細(xì)胞純度和活性均較高,為通過流產(chǎn)模型孕鼠(和正常對照)來進(jìn)行復(fù)發(fā)性自然流產(chǎn)的相關(guān)性研究提供了方法學(xué)基礎(chǔ)。

[1]Tafuri A,Alferink J,Moller P,et al.T cell awareness of paternal alloantigena during pregnancy.Science,1995,270(5236):630-633.

[2]邱麗華,林其德.調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞與原因不明復(fù)發(fā)性流產(chǎn)的相關(guān)性研究.中華婦產(chǎn)科雜志,2004,39(12):816-818.

[3]Zhao FX,Zhang YY,Liu RH,et al.Effect of CD86 blockage on the expressions of TGF-&1,MMP-9,TIMP-3 and PAI-1 proteins and outcome of pregnancy in murine abortion-prone model.J Microbiol Immunol,2006,4(2):137-145.

[4]Zenclussen A C,Gerlof K,Zenclussen M C,et al.Abnormal T cell reactivity against paternal antigens in spontaneous abortion:Adoptive transfer of pregnancy-induced CD4+CD25+T regulatory cells prevents fet al rejection in a murine abortion model.Am J Pathol,2005,166(3):811-822.

[5]Zenclussen A C.T regulatory cells in murine pregnancy.J Repord Immunol,2005,65(2):101-110.

[6]張誠,陳幸華,張曦,等.不同明膠濃度及淋巴細(xì)胞分離液對人臍血源黏附細(xì)胞原代培養(yǎng)的影響.中國實(shí)驗(yàn)血液學(xué)雜志,2008,16(6):1437-1441.

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