張國強， 彭敏霞， 王曄愷， 周吉航， 曾 芳

(舟山醫(yī)院1肝膽外科，2超聲科，3檢驗科，4細胞分子生物學實驗室，舟山 浙江316004)

轉移抑制基因23 - H1(non - metastasis 23 -H1，nm23 -H1)參與腫瘤細胞的侵襲和轉移過程。在多種腫瘤中如結腸癌［1］、前列腺癌［2］、非小細胞肺癌［3］中，抑癌基因nm23 -H1 的低表達與腫瘤侵襲、轉移及患者預后高度相關，并且體外胃癌細胞株從低侵襲性的懸浮態(tài)向高侵襲性的黏附態(tài)轉化中也出現(xiàn)胞內(nèi)nm23 -H1 的表達降低［4］。地西他濱(decitabine，DCA)和丙戊酸鈉(valproic acid，VPA)是2 種不同機制的表觀遺傳學藥物，在多種腫瘤細胞中可聯(lián)合誘導細胞凋亡和周期阻滯［5］。我們通過2 種藥聯(lián)用觀察其對胃癌MGC -803 抑癌基因nm23 -H1表達的影響，探討其對細胞凋亡、周期影響的可能機制。

材 料 和 方 法

1 藥品、試劑和儀器

地西他濱(5 - 氮雜-2' - 脫氧胞嘧啶核苷粉劑)購自Sigma，注射用丙戊酸鈉(德巴金針)購自賽諾菲-安萬特公司，F(xiàn)ITC 標記的膜聯(lián)蛋白-碘化丙啶(Annexin V/PI)凋亡試劑盒、細胞周期分析試劑盒購自BD，DNA 提取純化試劑盒購自Promega，Trizol購自Invitrogen，One Step SYBR GreenⅠ實時熒光定量PCR 試劑盒購自TaKaRa，小牛血清和RPMI -1640 培養(yǎng)液購自碧云天生物技術研究所。nm23 -H1 上游引物5’-TGGTGAAGACGGGCCGAGTCA -3’，下游引物5’-ATCAGATGGTCGGGGATGGTAACAC-3’，產(chǎn)物長度382 bp。GAPDH 上游引物5’-AAGGTGAAGGTCGGAGTCAAC-3’，下游引物5’-GGGGTCATTGATGGCAACAATA - 3’，產(chǎn) 物 長 度102bp。熒光PCR 儀為ABI 7500，CO2培養(yǎng)箱為德國Jouan IG150 產(chǎn)品，流式細胞儀為BD FACSCalibur 產(chǎn)品，獲取軟件為CellQuest，細胞周期分析軟件為Flowjo，冰凍離心機為Eppendorf 5714R。

2 方法

2.1 細胞培養(yǎng)及藥物處理 胃癌細胞株MGC -803購自中科院上海細胞庫。用含10%小牛血清、100 U·L-1青霉素、100 mg·L-1鏈霉素的RPMI -1640培養(yǎng)液在37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，取對數(shù)期細胞備用。配制密度為1 ×108/L 的細胞懸液接種于6孔培養(yǎng)板，每孔2 ml，置37 ℃、5%CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜，按照分組分別加入終濃度為DCA 1.5 μmol·L-1、DCA 3.0 μmol·L-1、VPA 1.5 mmol·L-1、DCA 1.5 μmol·L-1+VPA 1.5 mmol·L-1和DCA 3.0 μmol·L-1+VPA 1.5 mmol·L-1，每組設6復孔，作用72 h 后各孔吸出培養(yǎng)液，PBS 洗1 次，吸棄PBS 后進行實驗。

2.2 Annexin V/PI 標記法觀察細胞凋亡 2.1 步驟中細胞用預冷PBS 洗滌棄上清，殘渣細胞收集至流式管。每管加5 μL Annexin V-FITC 和10 μL PI，避光靜置15 min，加300 μL 預冷的PBS，振蕩混勻上機檢測其早、晚期凋亡率。

2.3 細胞周期分析 2.1 步驟中細胞用預冷PBS 洗滌棄上清，殘渣細胞收集至流式管。每管依次加A、B、C 液，避光靜置15 min，加300 μL 預冷的PBS，振蕩混勻上機檢測，用Flowjo 軟件中的Watson(Pragmatic)模型分析細胞周期各期比例。

2.4 實時熒光定量PCR 檢測nm23 -H1 mRNA 表達 Trizol 提取總RNA，A260/280鑒定完整性和純度，反應體系20 μL:包括總RNA 2 μL，PCR 正反向引物(10 μmol/L)各1 μL，ROX Reference Dye Ⅱ0.4 μL，Primer Script One Step Enzyme Mix Ⅱ0. 8 μL，One Step SYBR RT-PCR Buffer 10 μL，加ddH2O 補足20 μL。反應條件:42 ℃5 min，95 ℃10 s，95 ℃5 s，55 ℃30 s，72 ℃ 45 s，40 個循環(huán)。2-ΔΔCt法分析nm23 -H1 mRNA 相對表達量。

3 統(tǒng)計學處理

結 果

1 Annexin V/PI 法檢測細胞凋亡

所有加藥組早期凋亡率均高于對照組，差異有統(tǒng)計學意義(P ＜0.01);VPA 1.5 mmol·L-1+DCA 1.5 μmol·L-1聯(lián)合用藥組高于DCA 1.5 μmol·L-1組和VPA 1.5 mmol·L-1組，差異有統(tǒng)計學意義(P＜0.01);VPA 1.5 mmol·L-1+DCA 3.0 μmol·L-1聯(lián)合用藥組高于DCA 3.0 μmol·L-1組和VPA 1.5 mmol·L-1組，差異有統(tǒng)計學意義(P ＜0.01)，見圖1、表1。

Figure 1. Synergistic effect of DCA and VPA on MGC-803 cell apoptosis detected by Annexin V/PI staining. A:normal control;B:DCA 1.5 μmol·L-1;C:DCA 3.0 μmol·L-1;D:VPA 1.5 mmol·L-1;E:VPA 1.5 mmol·L-1 +DCA 1.5 μmol·L-1;F:VPA 1.5 mmol·L-1 +DCA 3.0 μmol·L-1.圖1 Annexin V /PI 染色檢測地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對MGC－803 細胞凋亡的影響

表1 地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對MGC－803 細胞凋亡的影響Table 1. Synergistic effect of DCA and VPA on MGC-803 cell apoptosis (%. ±s.n=6)

表1 地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對MGC－803 細胞凋亡的影響Table 1. Synergistic effect of DCA and VPA on MGC-803 cell apoptosis (%. ±s.n=6)

＊＊ P ＜0.01 vs normal control group;▲▲P ＜0.01 vs corresponding concentration of single drug group.

Group Early stage Late stage Normal control 2.91 ±0.39 5.31 ±0.36 DCA 1.5 μmol·L -1 10.63 ±1.86＊＊ 10.93 ±1.32＊＊DCA 3.0 μmol·L -1 27.33 ±2.19＊＊ 32.84 ±3.22＊＊VPA 1.5 mmol·L -1 7.33 ±1.15＊＊ 5.23 ±1.36＊＊VPA 1.5 mmol·L -1 +DCA 1.5 μmol·L -1 33.58 ±3.88＊＊▲▲ 31.52 ±4.20＊＊▲▲VPA 1.5 mmol·L -1 +DCA 3.0 μmol·L -1 42.61 ±4.23＊＊▲▲ 38.01 ±3.86＊＊▲▲

2 地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對MGC－803 細胞細胞周期的影響

SubG1期:VPA 1.5 mmol·L-1+DCA 1.5 μmol·L-1聯(lián)合用藥組(15.39% ±0.73%)和VPA 1.5 mmol·L-1+ DCA 3.0 μmol·L-1聯(lián) 合 用 藥 組(18.79% ±1.26%)均高于各自的單藥組，差異有統(tǒng)計學意義(P ＜0.01);G0/G1期:VPA 1.5 mmol·L-1+ DCA 1.5 μmol·L-1聯(lián) 合用 藥 組(61.55% ±2.38%)和VPA 1.5 mmol·L-1+DCA 3.0 μmol·L-1聯(lián)合用藥組(66.75% ±2.48%)均高于各自的單藥組，差異有統(tǒng)計學意義(P ＜0.01);S 期:VPA 1.5 mmol·L-1+ DCA 1.5 μmol·L-1聯(lián) 合 用 藥 組(11.17% ±0.94%)和VPA 1.5 mmol·L-1+ DCA 3.0 μmol·L-1聯(lián)合用藥組(6.97% ±1.10%)均低于各自的單藥組，差異有統(tǒng)計學意義(P ＜0.01);G2/M 期:VPA 1.5 mmol·L-1+DCA 1.5 mmol·L-1聯(lián)合用藥組(11.89% ± 3.08%)和VPA 1.5 mmol·L-1+ DCA 3.0 μmol·L-1聯(lián)合用藥組(8.50% ±2.81%)均低于各自的單藥組，差異有統(tǒng)計學意義(P＜0.01)，見圖2、表2。

3 地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對MGC－803 細胞中nm23－H1 mRNA 表達的影響

所有加藥組nm23 - H1 mRNA 均高于對照組，差異有統(tǒng)計學意義(P ＜0.01);VPA 1.5 mmol·L-1+DCA 1.5 μmol·L-1聯(lián)合用藥組高于DCA 1.5 μmol·L-1組和VPA 1.5 mmol·L-1組，差異有統(tǒng)計學意義(P ＜0.01);VPA 1.5 mmol·L-1+DCA 3.0 μmol·L-1聯(lián)合用藥組高于DCA 3.0 μmol·L-1組和VPA 1.5 mmol·L-1組，差異有統(tǒng)計學意義(P ＜0.01)，見表3。

Figure 2. Synergistic effect of DCA and VPA on cell cycle of MGC-803 cells.A:normal control;B:DCA 1.5 μmol·L -1;C:DCA 3.0 μmol·L -1;D:VPA 1.5 mmol·L -1;E:VPA 1.5 mmol·L -1 +DCA 1.5 μmol·L -1;F:VPA 1.5 mmol·L -1 +DCA 3.0 μmol·L -1.圖2 地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對MGC－803 細胞周期的影響

表2 地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對MGC－803 細胞周期的影響Table 2. Synergistic effect of DCA and VPA on cell cycle of MGC-803 cells (%. ±s.n=6)

表2 地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對MGC－803 細胞周期的影響Table 2. Synergistic effect of DCA and VPA on cell cycle of MGC-803 cells (%. ±s.n=6)

* P ＜0.05，＊＊P ＜0.01 vs normal control group;▲▲P ＜0.01 vs corresponding concentration of single drug group.

Group SubG1 G0/G1 S G2/M Normal control 2.49 ±0.75 50.77 ±1.78 19.76 ±1.04 26.98 ±1.59 DCA 1.5 μmol·L -1 7.39 ±0.59＊＊ 53.60 ±3.76 18.38 ±0.63 20.64 ±3.87*DCA 3.0 μmol·L -1 11.29 ±1.25＊＊ 57.64 ±2.81＊＊ 14.55 ±1.18＊＊ 16.52 ±2.83＊＊VPA 1.5 mmol·L -1 4.15 ±1.32＊＊ 51.28 ±1.79 19.52 ±0.61 25.05 ±2.53 VPA 1.5 mmol·L -1 +DCA 1.5 μmol·L -1 15.39 ±0.73＊＊▲▲ 61.55 ±2.38＊＊▲▲ 11.17 ±0.94＊＊▲▲ 11.89 ±3.08＊＊▲▲VPA 1.5 mmol·L -1 +DCA 3.0 μmol·L -1 18.78 ±1.26＊＊▲▲ 66.75 ±2.48＊＊▲▲ 6.97 ±1.10＊＊▲▲ 8.50 ±2.81＊＊▲▲

表3 地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對HL－60 細胞中nm23－H1 mRNA 表達的影響Table 3. Synergistic effect of DCA and VPA on nm23 -H1 mRNA expression in MGC-803 cells (±s.n=6)

表3 地西他濱聯(lián)合丙戊酸鈉對HL－60 細胞中nm23－H1 mRNA 表達的影響Table 3. Synergistic effect of DCA and VPA on nm23 -H1 mRNA expression in MGC-803 cells (±s.n=6)

＊＊P ＜0.01 vs normal control group;▲▲P ＜0.01 vs corresponding concentration of single drug group.

Group nm23-H1/GAPDH Normal control 0.43±0.12 DCA 1.5 μmol·L -1 0.96±0.21＊＊DCA 3.0 μmol·L -1 1.31±0.20＊＊VPA 1.5 mmol·L -1 0.69±0.09＊＊VPA 1.5 mmol·L -1 +DCA 1.5 μmol·L -1 1.84±0.46＊＊▲▲VPA 1.5 mmol·L -1 +DCA 3.0 μmol·L -1 2.88±0.42＊＊▲▲

討 論

nm23 -H1 可通過多信號通路調(diào)控細胞活性、生長、分化，目前的研究顯示B 細胞中nm23 -H1 通過上調(diào)凋亡蛋白如caspase -3、caspase -9、Bcl -X 及P53、P21 表達進而影響細胞凋亡，以及通過下調(diào)cyclin D1 表達水平引起細胞G0/G1期阻滯［6］。本研究顯示，DCA 和VPA 2 種藥物能促進細胞凋亡和G0/G1期阻滯，并且和DCA 呈一定的劑量依賴性。DCA和VPA 除了直接作用于細胞活性以外，兩藥聯(lián)用還能間接增強部分腫瘤細胞的對外部處理因素的敏感性，如Lee 等［7］觀察到兩藥聯(lián)用能增強結腸癌細胞和乳腺癌細胞的輻射敏感性。本研究顯示，2 種藥物能共同作用于促胃癌細胞MGC -803 細胞凋亡，并且早期/中晚期凋亡率均呈DCA 劑量依賴性，其中可能和共同促抑癌基因nm23 -H1 的表達有關。在體外，在腫瘤細胞中通過載體過表達nm23 -H1 也能顯示細胞多種活性受到抑制［8］。DCA 和VPA 雖都作用于轉錄調(diào)節(jié)，但DCA 主要通過抑制甲基化轉移酶抑制劑，而VPA 主要通過抑制組蛋白去乙?；?，但對胃癌細胞的研究發(fā)現(xiàn)，高甲基化的、轉錄靜止的基因通過組蛋白去乙?；敢种苿┖虳NA 甲基轉移酶抑制劑處理后能再活化，但僅用組蛋白去乙酰化酶抑制劑則收效甚微。這一研究提示了DNA 甲基化在轉錄調(diào)控中占主導地位，它可以通過不依賴于組蛋白去乙?；姆绞揭种苹虻霓D錄［9］。

目前臨床胃癌的一線化療方案的順鉑、表柔比星、氟尿嘧啶等藥物多為細胞周期特異性或非特異性藥物，通過干擾細胞分裂某一特定或多個時期實現(xiàn)對腫瘤細胞的增殖抑制，對正常細胞帶有非特異性殺傷作用，副作用多。研究發(fā)現(xiàn)用表觀遺傳學藥物治療幾種類型的血液腫瘤，起效快，副作用小，優(yōu)于傳統(tǒng)的化療藥物，但在實體瘤如胃癌中療效卻不如血液腫瘤穩(wěn)定，我們認為可能和血液系統(tǒng)腫瘤細胞的分散相有利于充分接觸藥物有關。雖然本研究中觀察到nm23 -H1 基因得到了激活，但由于表觀遺傳學藥物具有激活多種抑癌基因的效果，故我們不排除兩藥聯(lián)合作用于MGC -803 細胞凋亡中有其它抑癌基因的參與。

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