国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

雙歧桿菌對環(huán)境脅迫應(yīng)答機(jī)制的研究進(jìn)展

2013-04-13 03:46:22
中國乳業(yè) 2013年3期
關(guān)鍵詞:耐受力膽鹽雙歧

(中國農(nóng)業(yè)大學(xué)教育部-北京市共建功能乳品重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室)

雙歧桿菌是存在于人類和動物腸道菌群中的一種嚴(yán)格厭氧的革蘭氏陽性細(xì)菌。該細(xì)菌是人類的主要益生菌種屬之一,具有增強(qiáng)機(jī)體免疫力、維持腸道正常菌群平衡、改善小腸結(jié)構(gòu)、潤腸通便及延緩衰老等益生功能。因此,近幾年來與雙歧桿菌及其促生長因子有關(guān)的食品引起越來越多的關(guān)注[1]。

在生產(chǎn)加工、消化吸收的過程中,雙歧桿菌面臨著多種脅迫環(huán)境。首先,雙歧桿菌必須抵御工業(yè)生產(chǎn)中遇到的熱激、低水分活度、高滲及氧等各種脅迫;其次,雙歧桿菌進(jìn)入消化系統(tǒng)后,需要抵御胃部的酸性環(huán)境和小腸的高濃度膽鹽等脅迫,才能以足夠量的活菌數(shù)到達(dá)結(jié)腸發(fā)揮益生功能[2]。因此,對脅迫耐受力強(qiáng)的菌株將有更廣闊的產(chǎn)業(yè)化應(yīng)用前景。

根據(jù)已有報(bào)道,目前提高益生菌脅迫耐受性主要有兩種方法:一種方法是將益生菌在亞致死條件下進(jìn)行誘導(dǎo),使其產(chǎn)生脅迫耐受應(yīng)答反應(yīng),增強(qiáng)其脅迫耐受力,提高其在致死脅迫條件下存活率[3~6];另一種方法是從脅迫環(huán)境中篩選出脅迫耐受力強(qiáng)的菌株[7~10]。最近的研究表明,在脅迫條件下篩選出來的益生菌菌株能夠適應(yīng)生產(chǎn)加工中存在的脅迫環(huán)境[11]。這兩種提高益生菌脅迫耐受性方法的實(shí)質(zhì)是通過誘導(dǎo)或篩選使益生菌的脅迫應(yīng)答反應(yīng)增強(qiáng),因此研究雙歧桿菌的脅迫應(yīng)答機(jī)制對于開發(fā)高脅迫耐受性的雙歧桿菌具有重要意義。

近些年來,有學(xué)者通過蛋白質(zhì)組學(xué)等方法研究了益生菌的脅迫應(yīng)答分子機(jī)制[5,12~14],并且鑒定出一些與脅迫應(yīng)答相關(guān)的基因[15~16]。本文根據(jù)已有研究報(bào)道,對雙歧桿菌在生產(chǎn)加工及人體胃腸道中的脅迫應(yīng)答作了簡要綜述。

1 雙歧桿菌對生產(chǎn)加工過程中脅迫的應(yīng)答

噴霧干燥是含有益生菌產(chǎn)品加工過程中常用工藝,這會使細(xì)菌暴露于高溫而且有氧的環(huán)境下[17~18],對益生菌的氧、熱脅迫耐受性造成了極大的挑戰(zhàn)。另外,當(dāng)含有益生菌產(chǎn)品基質(zhì)中有其它微生物存在時(shí),又會對益生菌的生存造成競爭脅迫。首先針對雙歧桿菌在氧脅迫、高溫脅迫及競爭脅迫下的應(yīng)答機(jī)制的研究進(jìn)行綜述。

1.1 氧脅迫

雙歧桿菌屬于厭氧菌,對氧氣敏感。在氧氣存在時(shí),細(xì)菌胞內(nèi)會形成等活性氧,而雙歧桿菌缺少有效的活性氧清除機(jī)制,使活性氧在細(xì)胞內(nèi)積累,進(jìn)而造成DNA及蛋白質(zhì)等分子的氧化損傷,導(dǎo)致細(xì)胞死亡[19]。然而不同的雙歧桿菌菌株對氧的敏感性有差異。通過對現(xiàn)有的菌株間耐氧性差異的研究發(fā)現(xiàn),雙歧桿菌的耐氧機(jī)制包括如下幾方面。

首先,雙歧桿菌的耐氧機(jī)制與NADH氧化酶和NADH過氧化物酶有關(guān)系。該酶在乳酸菌中參與如下反應(yīng)[20~21]:

乳酸菌通過兩個途徑將O2轉(zhuǎn)化成無毒的H2O,途徑一:通過反應(yīng)3,直接將O2轉(zhuǎn)化成H2O;途徑二:先經(jīng)過反應(yīng)2,將O2轉(zhuǎn)化成H2O2,再經(jīng)過反應(yīng)4,將H2O2轉(zhuǎn)化成H2O。NADH氧化酶普遍存在于乳酸菌中,乳酸菌的NADH氧化酶主要指NADH-H2O2氧化酶和NADH-H2O氧化酶。只有一些乳酸菌中具有NADH過氧化物酶[22]。雙歧桿菌通常具有NADH氧化酶和NADH過氧化物酶活力,由此推想,雙歧桿菌利用這兩種酶、通過這兩條途徑,進(jìn)行氧脅迫應(yīng)答,提高了耐氧性。

其次,雙歧桿菌的耐氧機(jī)制與SOD(超氧化物歧化酶)有關(guān)系。該酶可將氧化活力較高的O2-轉(zhuǎn)化成活力較低的H2O2,參加如下反應(yīng):

SOD參與雙歧桿菌的耐氧機(jī)制,主要通過如下途徑:先經(jīng)過反應(yīng)1,將O2轉(zhuǎn)化成O2-,再經(jīng)過反應(yīng)5,將O2-轉(zhuǎn)化成H2O2,最后經(jīng)過反應(yīng)4,將H2O2轉(zhuǎn)化成H2O,起到了清除活性氧的作用[19]。

再次,雙歧桿菌的耐氧機(jī)制還與環(huán)丙烷脂肪酸(CFU)有關(guān)。CFU是多數(shù)細(xì)菌細(xì)胞膜磷脂的重要組成部分。細(xì)菌的CFU通常在穩(wěn)定初期,由細(xì)胞膜磷脂上的不飽和脂肪酸(UFA)與S-腺苷甲硫氨酸在環(huán)丙烷脂肪酸合成酶作用下形成[23]。這一反應(yīng)增強(qiáng)了細(xì)胞膜的穩(wěn)定性,進(jìn)而提高了細(xì)菌的耐氧性。

有關(guān)雙歧桿菌氧脅迫的機(jī)制還在不斷的研究中。Yilei Qian等研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)培養(yǎng)基中缺乏還原劑-半胱氨酸時(shí),雙歧桿菌面臨氧脅迫,胞內(nèi)積累的多聚磷酸鹽含量增多,同時(shí)對酸脅迫的耐受力增強(qiáng)[24]。為了提高雙歧桿菌Bifidobacterium longum 105-A對氧脅迫的耐受力,Robert Matsul等將Bacillus subtilis過氧化氫酶基因KatE導(dǎo)入雙歧桿菌,結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)化株的耐氧能力有所提高[25]。

1.2 熱激

熱激是雙歧桿菌在生產(chǎn)加工中遇到的另一種脅迫,有關(guān)它的研究很多。當(dāng)熱激發(fā)生時(shí),一些雙歧桿菌如B.longum、Bifidobacterium adolescentis和Bifidobacterium breve中的幾種熱激蛋白,如分子伴侶蛋白(如DnaK)、與DNA和RNA合成及細(xì)胞分裂相關(guān)的蛋白質(zhì)的表達(dá)量增加[26]。B.longum NCC2705和B.breve UCC2003的基因序列信息已知,很多學(xué)者將這兩株菌作為熱激應(yīng)答的研究對象。B.longum NCC2705在熱激處理下(50 ℃下,3,7,12 min)全轉(zhuǎn)錄組分析顯示,有46%的基因表達(dá)量發(fā)生改變[27]。已有學(xué)者通過蛋白質(zhì)組學(xué)的方法研究了該菌株中分子伴侶蛋白系統(tǒng)(DnaK,GroEL和HtrA)[28]。菌株NCC2705也通過誘導(dǎo)smpB基因的表達(dá)來應(yīng)對熱激脅迫,smpB負(fù)責(zé)編碼與tmRNA相關(guān)的小蛋白B,因此,smpB與tmRNA基因的表達(dá)量同時(shí)上調(diào)[27]。將野生株B.longumNCC2705及其耐熱誘變株NCC2912的蛋白質(zhì)圖譜進(jìn)行對比,分析發(fā)現(xiàn)有19 種蛋白質(zhì)的表達(dá)水平有差異。其中,有些蛋白質(zhì)參與了葡萄糖代謝、蛋白質(zhì)合成等,另外還有一些蛋白質(zhì)是熱激蛋白[28~29],如分子伴侶蛋白和蛋白酶,主要是ClpC、ClpA/B、GrpE、DnaK和Fk506結(jié)合蛋白[29]。最近的研究結(jié)果表明,在熱激條件下dnaK操縱子負(fù)責(zé)調(diào)控的hspR基因發(fā)生突變,這種突變影響了hsp結(jié)合到dnaK啟動子上的能力,導(dǎo)致DnaK分子伴侶蛋白表達(dá)量上調(diào)[30]。

在B.breve的熱激應(yīng)答中,分子伴侶蛋白發(fā)揮主要的作用。Ventura等發(fā)現(xiàn),當(dāng)面對熱激時(shí),菌株UCC2003通過過量表達(dá)兩組分子伴侶蛋白來進(jìn)行應(yīng)答。第一組蛋白質(zhì)參與溫和的熱激應(yīng)答,包括GroEL、GroES、ClpC和ClpPs;第二組參與劇烈的熱激應(yīng)答,包括DnaK、GrpE、DnaJ和ClpB[16]。另外,編碼一些小熱激蛋白家族的基因hsp20在熱激后也會過量表達(dá)[31]。

1.3 其它微生物的競爭

另一個雙歧桿菌在生產(chǎn)加工中需要面對的脅迫是食品基質(zhì)中多種微生物的競爭。營養(yǎng)物質(zhì)競爭及抗菌代謝物(主要是有機(jī)酸)的積累,能夠影響微生物的生長和功能發(fā)揮。Ruiz等通過雙向電泳的方法研究發(fā)現(xiàn),B.longum和B.breve共同培養(yǎng)與單獨(dú)培養(yǎng)相比,有16 種蛋白質(zhì)表達(dá)量發(fā)生改變[32]。這些蛋白質(zhì)包括核糖體蛋白和參與碳水化合物代謝、基因調(diào)控、細(xì)胞壁生物合成和運(yùn)輸?shù)牡鞍踪|(zhì)。顯然,其它菌及發(fā)酵劑的存在會影響特定益生菌的生理功能。

2 雙歧桿菌對胃腸道中脅迫的應(yīng)答

雙歧桿菌為了在人類胃腸道中定殖,需要克服酸脅迫、膽鹽脅迫等許多不利環(huán)境,在此過程中雙歧桿菌啟動了一系列脅迫應(yīng)答機(jī)制。

2.1 酸脅迫

口服雙歧桿菌首先要經(jīng)歷的是pH值接近2.0的胃部酸環(huán)境,這將大大減少菌體的存活數(shù)量。通常,除動物雙歧桿菌外,雙歧桿菌耐受酸脅迫的能力很差[8,33]。一個很好的方法是篩選耐酸性強(qiáng)的菌株,因?yàn)樗梢栽鰪?qiáng)對其它脅迫因素的交互抗性,既包括人類胃腸道中的脅迫,也包括工藝生產(chǎn)中的脅迫[7,34]。在雙歧桿菌暴露于亞致死酸環(huán)境后,菌體產(chǎn)生耐酸應(yīng)答效應(yīng),該效應(yīng)使雙歧桿菌在致死的pH值環(huán)境下的脅迫耐受能力增強(qiáng)[35]。

目前已有研究表明F0F1-ATPase與雙歧桿菌的耐酸性有關(guān),該酶活性越高,雙歧桿菌耐酸性越強(qiáng),推測雙歧桿菌可能利用該酶的質(zhì)子泵功能將H+排出胞外[13,36~38];另有研究表明,在酸脅迫狀態(tài)下,雙歧桿菌的氨基酸代謝相關(guān)酶表達(dá)量升高,胞內(nèi)NH4+累積量增多,說明雙歧桿菌可能利用氨基酸答謝產(chǎn)生NH3,中和胞內(nèi)多余H+[39]。為進(jìn)一步探討雙歧桿菌的耐酸應(yīng)答機(jī)制,還有學(xué)者利用RNA-seq技術(shù)研究了雙歧桿菌在耐酸應(yīng)答中全基因組轉(zhuǎn)錄水平變化。結(jié)果表明,有500 余個基因表達(dá)水平在耐酸應(yīng)答中發(fā)生改變,對這些基因功能進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),除利用上述兩種酸脅迫應(yīng)答機(jī)制外,雙歧桿菌可能通過活躍半胱氨酸-硫胱醚代謝循環(huán)來產(chǎn)生NH3,中和胞內(nèi)多余H+;另外,與DNA和蛋白質(zhì)保護(hù)及修復(fù)相關(guān)的基因表達(dá)量升高,來避免H+對胞內(nèi)大分子的損傷。除150 個基因與直接抵御H+脅迫有關(guān),其余近400個基因的表達(dá)變化原因無法被明確解釋,其中包括群體感應(yīng)系統(tǒng)LuxS/AI-2中的luxs基因,部分蛋白激酶編碼基因及轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)蛋白編碼基因。

2.2 膽鹽脅迫

膽鹽脅迫是雙歧桿菌在胃腸道中必須克服的第二道生理屏障。雙歧桿菌通過膽鹽脅迫應(yīng)答能夠形成具有穩(wěn)定表型的耐膽鹽菌株[40],同時(shí)對其它脅迫的耐酸能力增強(qiáng)[8,9,36,41]。另外,雙歧桿菌膽鹽脅迫耐受性與其碳水化合物代謝特征[8,9,41,42],壁膜膜脂質(zhì)和蛋白質(zhì)組成[8,42],以及與腸道病原菌競爭能力有關(guān)[43,44]。

脂質(zhì)組成、膜蛋白特征和細(xì)胞壁功能在雙歧桿菌耐膽鹽脅迫中發(fā)揮著重要的作用[8,42,45]。產(chǎn)生胞外多糖是雙歧桿菌抵御膽鹽脅迫的一種機(jī)制[46,47],最近的研究表明,胞外多糖的產(chǎn)量和膽鹽脅迫耐受力之間有直接關(guān)系[46]。此外,膽鹽脅迫抑制了動物雙歧桿菌(B.animalis subsp.lactis)中與脂肪酸和磷脂合成有關(guān)酶的表達(dá)[14]。細(xì)胞膜脂質(zhì)組成的改變降低了膽鹽向細(xì)胞質(zhì)擴(kuò)散的速率,提高了菌體膽鹽耐受力。根據(jù)已有研究結(jié)果,有如下推測:雙歧桿菌的表面相關(guān)蛋白,如一些粘附素,在受膽鹽脅迫時(shí)表達(dá)量會增加。這些蛋白質(zhì)能增強(qiáng)雙歧桿菌在人類腸道中的定殖[48]。

細(xì)胞膜是膽鹽的主要靶位點(diǎn)之一,細(xì)胞能夠通過細(xì)胞膜上外排泵解除膽鹽的毒性。雙歧桿菌中已報(bào)道了兩個膽鹽外排泵——Ctr和BetA,它們與膽鹽的耐受性有直接聯(lián)系[49]。不同的雙歧桿菌對膽鹽脅迫應(yīng)答的機(jī)制不同[14]。長雙歧桿菌(B.longum)中大多數(shù)與糖酵解途徑相關(guān)的酶在膽鹽脅迫時(shí)會過量表達(dá),而動物雙歧桿菌(B.animalis)中僅有幾種酶表達(dá)量會上調(diào),如木酮糖-5-磷酸/果糖-6-磷酸磷酸轉(zhuǎn)酮酶和甘油醛-3-磷酸脫氫酶。這一研究結(jié)果說明,在應(yīng)對膽鹽脅迫時(shí),長雙歧桿菌(B.longum)消耗葡萄糖的能力增強(qiáng),而動物雙歧桿菌(B.animalis)的葡萄糖消耗能力減弱。

動物雙歧桿菌(B.animalis)膽鹽耐受力還與膽鹽水解酶產(chǎn)量和活性有關(guān)[50]。膽鹽水解酶負(fù)責(zé)膽鹽的早期解離,但目前為止,它在膽鹽脅迫應(yīng)答中的作用機(jī)制還不清楚[51]。有研究表明,雖然膽鹽水解酶的表達(dá)量并不受膽鹽的調(diào)節(jié),但是其在耐膽鹽中也發(fā)揮了一些作用。相反,在體內(nèi)試驗(yàn)中已經(jīng)證實(shí),在長雙歧桿菌(B.longum)的細(xì)胞內(nèi)積累的膽鹽水解酶在兔子的胃腸道中存在,說明除膽鹽外其它因子可能誘導(dǎo)了膽鹽水解酶的表達(dá)[52]。

3 小結(jié)與展望

雙歧桿菌的脅迫應(yīng)答很復(fù)雜,包含一個錯綜復(fù)雜的應(yīng)對各種環(huán)境脅迫的機(jī)制網(wǎng)絡(luò)。雙歧桿菌在食品中的應(yīng)用很廣泛,但是有關(guān)脅迫應(yīng)答的分子機(jī)制研究卻很少。近十年來,由功能基因組和蛋白質(zhì)組數(shù)據(jù)支持的生理學(xué)分析,為我們提供了一些雙歧桿菌應(yīng)對環(huán)境脅迫的分子信息。這一領(lǐng)域在未來的研究中,必須充分利用細(xì)菌基因組項(xiàng)目和人類微生物組計(jì)劃的大量數(shù)據(jù),這將有利于理解雙歧桿菌在人類宿主中的生存。另外,脅迫應(yīng)答的研究中,通過建立應(yīng)對不良環(huán)境的耐脅迫表型,產(chǎn)生良好的菌株性能,將使我們了解影響雙歧桿菌性能的因素及如何合理的提高,同時(shí)也為益生菌的功能性研究提供了信息。

[1]仝千秋,楊國宇,郭爽,等. 雙歧桿菌在乳制品生產(chǎn)中存在的問題和對策. 中國乳業(yè),2005(5):53-55.

[2]Ruiz L,Ruas-Madiedo P,Gueimonde M,et al. How do bifidobacteria counteract environmental challenges? Mechanisms involved and physiological consequences. Genes and Nutrition,2011,6(3):307-318.

[3]Ananta E,Knorr D. Evidence on the role of protein biosynthesis in the induction of heat tolerance of Lactobacillus rhamnosus GG by pressure pre-treatment. International Journal of Food Microbiology,2004,96(3):307-313.

[4]Teixeira P,Castro H,Kirby R. Inducible thermotolerance in lactobacillus-bulgaricus.Letters in Applied Microbiology,1994,18(4):218-221.

[5]Anastasiou R,Leverrier P,Krestas L,et al. Changes in protein synthesis during thermal adaptation of Propionibacterium freudenreichii subsp shermanii. International Journal of Food Microbiology,2006,108(3):301-314.

[6]Dong X Z,Xin Y H,Jian W Y,et al.Bifidobacterium thermacidophilum sp nov.,isolated from an anaerobic digester. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology,2000(50):119-125.

[7]Carmen C M,Sanz Y. Method for direct selection of potentially probiotic Bifidobacterium strains from human feces based on their acidadaptation ability. Journal of Microbiological Methods,2006,66(3):560-563.

[8]Margolles A,Garcia L,Sanchez B,et al. Characterisation of a Bifidobacterium strain with acquired resistance to cholate - A preliminary study. International Journal of Food Microbiology,2003,82(2):191-198.

[9]Noriega L,Gueimonde M,Sanchez B,et al. Effect of the adaptation to high bile salts concentrations on glycosidic activity,survival at low PH and cross-resistance to bile salts in Bifidobacterium. International Journal of Food Microbiology,2004,94(1):79-86.

[10]Niven C F,Buettner L G,Evans J B. Thermal tolerance studies on the heterofermentative lactobacilli that cause greening of cured meat products. Applied Microbiology,1954,2(1):26-29.

[11]Fiocco D,Capozzi V,Goffin P,et al.Improved adaptation to heat,cold,and solvent tolerance in Lactobacillus plantarum. Applied Microbiology and Biotechnology,2007,77(4):909-915.

[12]Prasad J,McJarrow P,Gopal P. Heat and osmotic stress responses of probiotic Lactobacillus rhamnosus HN001(DR20)in relation to viability after drying. Applied and Environmental Microbiology,2003,69(2):917-925.

[13]Sanchez B,Champomier V M C,Collado M D C,et al. Low-pH adaptation and the acid tolerance response of Bifidobactetium longum biotype longum. Applied and Environmental Microbiology,2007,73(20):6450-6459.

[14]Sanchez B,Champomier V M C,Stuer L B,et al. Adaptation and response of Bifidobacterium animalis subsp lactis to bile:a proteomic and physiological approach. Applied and Environmental Microbiology,2007,73(21):6757-6767.

[15]De A M,Di C R,Huet C,et al. Heat shock response in lactobacillus plantarum. Applied and Environmental Microbiology,2004,70(3):1336-1346.

[16]Ventura M,Canchaya C,Zhang Z,et al. How high G+C Gram-positive bacteria and in particular bifidobacteria cope with heat stress:protein players and regulators. Fems Microbiology Reviews,2006,30(5):734-759.

[17]Carvalho A S,Silva J,Ho P,et al.Relevant factors for the preparation of freezedried lactic acid bacteria. International Dairy Journal,2004,14(10):835-847.

[18]Simpson P J,Stanton C,F(xiàn)itzgerald G F,et al. Intrinsic tolerance of Bifidobacterium species to heat and oxygen and survival following spray drying and storage. Journal of Applied Microbiology,2005,99(3):493-501.

[19]桂仕林,孟祥晨,張久龍. 雙歧桿菌的耐氧機(jī)制. 食品工業(yè)科技,2008,207(7):280-283.

[20]Condon S. Responses of lactic-acid bacteria to oxygen. Fems Microbiology Reviews,1987,46(3):269-280.

[21]Talwalkar A,Kailasapathy K. The role of oxygen in the viability of probiotic bacteria with reference to L. acidophilus and Bifidobacterium spp. Current Issues in Intestinal Microbiology,2004,5(1):1-8.

[22]Thomas E L,Pera K A. Oxygen-metabolism of streptococcus-mutans - uptake of oxygen and release of superoxide and hydrogen-peroxide.Journal of Bacteriology,1983,154(3):1236-1244.

[23]Grogan DW,Cronan JE. Microbiology and Molecular Biology Reviews,1997,61(4):429-441.

[24]Qian Y,Borowski W J,Calhoon W D.Intracellular granule formation in response to oxidative stress in Bifidobacterium. International Journal of Food Microbiology,2011,145(1):320-325.

[25]Matsui R,Cvitkovitch D. Acid tolerance mechanisms utilized by Streptococcus mutans.Future Microbiology,2010,5(3):403-417.

[26]Schmidt G,Zink R. Basic features of the stress response in three species of bifidobacteria:B-longum,B-adolescentis,and B-breve. International Journal of Food Microbiology,2000,55(1-3):41-45.

[27]Rezzonico E,Lariani S,Barretto C,et al.Global transcriptome analysis of the heat shock response of Bifidobacterium longum. Fems Microbiology Letters,2007,271(1):136-145.

[28]Savijoki K,Suokko A,Palva A,et al.Effect of heat-shock and bile salts on protein synthesis of Bifidobacterium longum revealed by S-35 methionine labelling and two-dimensional gel electrophoresis. Fems Microbiology Letters,2005,248(2):207-215.

[29]Guillaume E,Berger B,Affolter M,et al. Label-free quantitative proteomics of two Bifidobacterium longum strains. Journal of Proteomics,2009,72(5):771-784.

[30]Berger B,Moine D,Mansourian R,et al. HspR Mutations Are Naturally Selected in Bifidobacterium longum when successive heat shock treatments are applied. Journal of Bacteriology,2010,192(1):256-263.

[31]Ventura M,Canchaya C,Zhang Z,et al.Molecular characterization of hsp20,encoding a small heat shock protein of Bifidobacterium breve UCC2003. Applied and Environmental Microbiology,2007,73(14):4695-4703.

[32]Ruiz L,Sanchez B,de los Reyes-Gavilan C G,et al. Coculture of Bifidobacterium longum and Bifidobacterium breve alters their protein expression profiles and enzymatic activities.International Journal of Food Microbiology,2009,133(1-2):148-153.

[33]Kelly A L,Zeece M. Applications of novel technologies in processing of functional foods.Australian Journal of Dairy Technology,2009,64(1):12-15.

[34]Sanz Y. Ecological and functional implications of the acid-adaptation ability of Bifidobacterium:A way of selecting improved problotic strains. International Dairy Journal,2007,17(11):1284-1289.

[35]Maus J E,Ingham S C. Employment of stressful conditions during culture production to enhance subsequent cold- and acid-tolerance of bifidobacteria. Journal of Applied Microbiology,2003,95(1):146-154.

[36]Sanchez B,Reyes G,Margolles A. The F1F0-ATPase of Bifidobacterium animalis is involved in bile tolerance. Environmental Microbiology,2006,8(10):1825-1833.

[37]Matsumoto M,Ohishi H,Benno Y. H+-ATPase activity in Bifidobacterium with special reference to acid tolerance. International Journal of Food Microbiology,2004,93(1):109-113.

[38]Ventura M,Canchaya C,Van S D,et al. Bifidobacterium lactis DSM 10140:Identification of the atp(atpBEFHAGDC)operon and analysis of its genetic structure,characteristics,and phylogeny. Applied and Environmental Microbiology,2004,70(5):3110-3121.

[39]Van de G M,Serror P,Chervaux C,et al. Stress responses in lactic acid bacteria.Antonie Van Leeuwenhoek International Journal of General and Molecular Microbiology,2002,82(1-4):187-216.

[40]Sanchez B,Ruiz L,De los R G C G,et al.Proteomics of stress response in Bifidobacterium.Frontiers in Bioscience,2008(13):6905-6919.

[41]Ruas M P,Hernandez B A,Margolles A,et al. A bile salt-resistant derivative of Bifidobacterium animalis has an altered fermentation pattern when grown on glucose and maltose. Applied and Environmental Microbiology,2005,71(11):6564-6570.

[42]Ruiz L,Sanchez B,Ruas M P,et al.Cell envelope changes in Bifidobacterium animalis ssp lactis as a response to bile. Fems Microbiology Letters,2007,274(2):316-322.

[43]Gueimonde M,Margolles A,Reyes G C,et al. Competitive exclusion of enteropathogens from human intestinal mucus by Bifidobacterium strains with acquired resistance to bile - A preliminary study. International Journal of Food Microbiology,2007,113(2):228-232.

[44]Gueimonde M,Noriega L,Margolles A,et al. Ability of Bifidobacterium strains with acquired resistance to bile to adhere to human intestinal mucus. International Journal of Food Microbiology,2005,101(3):341-346.

[45]Gomez Z A,Kociubinski G,Perez P,et al.Effect of bile on the lipid composition and surface properties of Bifidobacteria. Journal of Applied Microbiology,2002,93(5):794-799.

[46]Alp G,Aslim B. Relationship between the resistance to bile salts and low pH with exopolyaccharide(EPS)production of Bifidobacterium spp. isolated from infants feces and breast milk. Anaerobe,2010,16(2):101-105.

[47]Ruas M P,Gueimonde M,Arigoni F,et al.Bile affects the synthesis of exopolysaccharides by Bifidobacterium animalis. Applied and Environmental Microbiology,2009,75(4):1204-1207.

[48]Candela M,Bergmann S,Vici M,et al. Binding of human plasminogen to Bifidobacterium. Journal of Bacteriology,2007,189(16):5929-5936.

[49]Gueimonde M,Garrigues C,van Sinderen D,et al. Bile-inducible efflux transporter from Bifidobacterium longum NCC2705,conferring bile resistance. Applied and Environmental Microbiology,2009,75(10):3153-3160.

[50]Noriega L,Cuevas I,Margolles A,et al.Deconjugation and bile salts hydrolase activity by Bifidobacterium strains with acquired resistance to bile. International Dairy Journal,2006,16(8):850-855.

[51]Grill J P,Perrin S,Schneider F. Bile salt toxicity to some bifidobacteria strains:Role of conjugated bile salt hydrolase and pH. Canadian Journal of Microbiology,2000,46(10):878-884.

[52]Yuan J,Wang B,Sun Z,et al. Analysis of host-inducing proteome changes in Bifidobacterium longum NCC2705 grown in vivo.Journal of Proteome Research,2008,7(1):375-385.

猜你喜歡
耐受力膽鹽雙歧
乳桿菌在膽鹽 MRS 培養(yǎng)基中的傳代穩(wěn)定性
Ligilactobacillus sp.BD7642關(guān)鍵膽鹽水解酶的發(fā)掘
提高乳酸菌耐膽鹽能力的研究
生物化工(2020年3期)2020-01-07 23:51:31
心理干預(yù)對孕婦早孕反應(yīng)的能力和耐受力影響分析
模擬深埋條件下復(fù)合性沖擊傷生命耐受力與傷情特點(diǎn)研究——重要臟器血清生化指標(biāo)的變化
災(zāi)害醫(yī)學(xué)與救援(電子版)(2016年3期)2016-03-11 20:18:05
動態(tài)血?dú)夥治鰧υu估胸外科手術(shù)患者耐受力的探討
雙歧桿菌三聯(lián)活菌聯(lián)合多潘立酮治療新生兒喂養(yǎng)不耐受40例
產(chǎn)細(xì)菌素雙歧桿菌的篩選及其分泌條件研究
抗性淀粉在雙歧桿菌作用下的體外降解
桦川县| 富宁县| 石狮市| 广汉市| 莱西市| 霍林郭勒市| 文化| 晋州市| 眉山市| 健康| 阿坝县| 西吉县| 永兴县| 明水县| 湖南省| 黄陵县| 襄汾县| 安庆市| 义乌市| 方正县| 营口市| 湟源县| 台江县| 溧阳市| 文化| 腾冲县| 遂平县| 西城区| 五指山市| 阿克| 潮安县| 和龙市| 岳普湖县| 莱州市| 绥阳县| 阳原县| 葫芦岛市| 湖州市| 土默特左旗| 铜山县| 榆社县|