余可和 余洋 周一飛 毛誠晃 周望者
[摘要] 目的 通過動(dòng)物實(shí)驗(yàn)于體外條件下觀察補(bǔ)腎中藥對(duì)大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞增殖分化的影響。 方法 將不同濃度的補(bǔ)腎中藥方劑與骨髓基質(zhì)干細(xì)胞體外共同培養(yǎng),測(cè)定細(xì)胞增殖功能,檢測(cè)成骨細(xì)胞增殖與分化指標(biāo)(包括堿性磷酸酶、礦化結(jié)節(jié))。 結(jié)果 與空白組比較,濃度100 mg/L、200 mg/L的補(bǔ)腎中藥在不同時(shí)間段均可提高骨髓基質(zhì)干細(xì)胞增殖率(P < 0.05);與空白組比較,濃度20 mg/L、40 mg/L、100 mg/L、200 mg/L的補(bǔ)腎中藥可使ALP活性增強(qiáng)、礦化結(jié)節(jié)數(shù)量增多(P < 0.05)。 結(jié)論 較高濃度的補(bǔ)腎中藥能促進(jìn)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的成骨潛能。
[關(guān)鍵詞] 補(bǔ)腎中藥;骨髓基質(zhì)干細(xì)胞;堿性磷酸酶;礦化結(jié)節(jié)
[中圖分類號(hào)] R274 [文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼] A [文章編號(hào)] 1673-9701(2013)08-0001-03
骨質(zhì)疏松癥是中老年人最常見的慢性病之一,其特征主要表現(xiàn)為骨的微觀結(jié)構(gòu)退化、骨量減少。中醫(yī)學(xué)認(rèn)為骨質(zhì)疏松癥發(fā)生的重要原因是腎氣虛衰,補(bǔ)腎中藥方劑是治療骨質(zhì)疏松癥較為有效的藥方。目前在補(bǔ)腎中藥促進(jìn)成骨的基礎(chǔ)研究方面取得了一些成果[1],但是目前有關(guān)補(bǔ)腎中藥復(fù)方的研究仍在探索階段。本實(shí)驗(yàn)自擬對(duì)成骨有作用的補(bǔ)腎中藥進(jìn)行組合, 對(duì)體外培養(yǎng)的大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞進(jìn)行誘導(dǎo),從細(xì)胞水平檢測(cè)補(bǔ)腎復(fù)方對(duì)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的影響,觀察成骨情況。
1 材料與方法
1.1 動(dòng)物
選用出生6周齡雄性SD大鼠,體重不限,購于溫州醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,合格證書:SCXK(浙)2006-0026。
1.2 中藥藥材
藥材(淫羊霍、杜仲、骨碎補(bǔ)、補(bǔ)骨脂、黨參、熟地、川牛膝、云苓、白術(shù)、煅龍骨、炒山藥、生蠣、丹皮)購自浙江溫州地區(qū)醫(yī)藥公司。
1.3 儀器與試劑
Thermo二氧化碳培養(yǎng)箱;Nikon 倒置生物顯微鏡;掃描電鏡,上海泰思肯貿(mào)易有限公司;RPMI-1640培養(yǎng)基、胰蛋白酶、MTT試劑、地塞米松、維生素C、β-甘油磷酸鈉、四環(huán)素鹽酸鹽, 均為Sigma 公司產(chǎn)品;胎牛血清,上海勁馬生物科技有限公司;堿性磷酸酶試劑盒,南京建成生物工程研究所。
1.4 方法
1.4.1 補(bǔ)腎中藥水提取液的制備 取淫羊霍、杜仲、骨碎補(bǔ)、補(bǔ)骨脂、黨參、熟地、川牛膝、云苓、白術(shù)、煅龍骨、炒山藥、生蠣、丹皮,按比例稱重混合后,加蒸餾水浸泡并煮沸3次,每次3 h,合并濾液并濃縮,用75%乙醇沉淀后靜置于冰箱過夜,次日過濾回收乙醇,用0.5%NaOH調(diào)pH至7.0,制成含生藥1 g/mL的藥液,冷藏備用。
1.4.2 大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞的分離與培養(yǎng)鑒定[2] 取出生6周左右的雄性SD大鼠,體重不限(由溫州醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供)。頸椎脫位法處死,無菌條件下取股骨,剪斷兩骨端,無血清培養(yǎng)液吹打髓腔并沖出骨髓。將組織均勻平鋪加10%DMEM培養(yǎng)基接種于10 cm培養(yǎng)皿內(nèi),放置于5%CO2、37℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)。3 d換液1次,待細(xì)胞長(zhǎng)滿瓶底時(shí)后傳代,利用第3代細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)并用鈣鈷法進(jìn)行堿性磷酸酶染色。
1.4.3 細(xì)胞增殖功能測(cè)定 采用MTT法[3]測(cè)定補(bǔ)腎中藥方劑對(duì)大鼠成骨細(xì)胞增殖的影響。細(xì)胞消化傳代后,調(diào)整細(xì)胞濃度加入96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,每孔加入培養(yǎng)液,放入5% CO2 37℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。24 h后顯微鏡下觀察細(xì)胞生長(zhǎng)合適后,分別換入含1 mg/L、10 mg/L、20 mg/L、40 mg/L、100 mg/L、200 mg/L補(bǔ)腎中藥的DMEM培養(yǎng)基,共6組,每組12孔;對(duì)照為空白組,為單用20ng/mL的地塞米松。含不同濃度補(bǔ)腎方劑培養(yǎng)1、3、7、10 d。采用MTT法于490 nm波長(zhǎng),在酶標(biāo)儀上測(cè)試各孔光吸收值。本檢測(cè)方法重復(fù)3次,分別計(jì)算對(duì)照組與實(shí)驗(yàn)組的增殖率。
1.4.4 細(xì)胞功能的表達(dá) 大鼠骨髓基質(zhì)干以每孔1×105個(gè)/孔的密度被接種于6孔培養(yǎng)板,加入培養(yǎng)液,3 d后分別換入含0 mg/L、1 mg/L、10 mg/L、20 mg/L、40 mg/L、100 mg/L、200 mg/L補(bǔ)腎中藥的DMEM培養(yǎng)基,定期更換培養(yǎng)液及干預(yù)藥物,不進(jìn)行傳代直至檢測(cè)。
①細(xì)胞分化功能測(cè)定(ALP活性測(cè)定) 分別取各組(藥液濃度分別為0 mg/L、1 mg/L、10 mg/L、20 mg/L、40 mg/L、100 mg/L、200 mg/L,共7組)培養(yǎng)至第7天的成骨細(xì)胞,倒除原培養(yǎng)液,經(jīng)胰蛋白酶消化后吸出消化液,加入0.9%NaCl吹打后低溫凍溶至破碎,離心后上清液行酶免法測(cè)定堿性磷酸酶含量。②細(xì)胞礦化功能測(cè)定 同上述方法培養(yǎng)至第14天,利用von Kossa染色法顯示礦化結(jié)節(jié)。培養(yǎng)14 d后采用多聚甲醛進(jìn)行固定。以直徑>200 μm邊界清晰的結(jié)節(jié),為礦化結(jié)節(jié)的計(jì)數(shù)標(biāo)準(zhǔn)[1]。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
采用SPSS16.0軟件處理,數(shù)據(jù)以(x±s)表示,多組間采用方差分析,然后行兩兩t檢驗(yàn),以P < 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 成骨細(xì)胞的鑒定
倒置相差顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài),培養(yǎng)1 d后大部分的細(xì)胞為圓形,大小不等漂浮于培養(yǎng)液;培養(yǎng)2 d后部分細(xì)胞貼壁,形態(tài)主要為梭形、多角形或紡錘形等幾種形狀(圖1)。培養(yǎng)后7 d貼壁細(xì)胞增多可見偽足,瓶底長(zhǎng)滿梭形或多角形細(xì)胞(圖2);10 d可見貼壁細(xì)胞形多呈梭形(圖3)。von Kossa染色礦化結(jié)節(jié)(圖4)。
2.2 補(bǔ)腎中藥方劑對(duì)大鼠MSCs增殖的影響
如表1所示,在1 d時(shí)100 mg/組高于空白組(t = 6.21,P < 0.001),且200 mg/組也高于空白組(t = 10.27,P < 0.001),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05);在3 d時(shí)濃度為20 mg/L(t = 6.89,P < 0.001)、40 mg/L(t = 6.63,P < 0.001)、100 mg/L(t = 14.49,P < 0.001)、200 mg/L(t = 22.21,P < 0.001)的OD值均高于空白組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05);在7 d時(shí)濃度為20 mg/L(t = 15.39,P < 0.001)、40 mg/L(t = 24.36,P < 0.001)、100 mg/L(t = 32.84,P < 0.001)、200 mg/L(t = 29.80,P < 0.001) 的OD值均高于空白組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.05);在10 d時(shí)濃度為20 mg/L(t = 38.80,P < 0.001)、40 mg/L(t = 45.13,P < 0.001)、100 mg/L(t = 37.79,P < 0.001)、200 mg/L(t = 49.71,P < 0.001)的OD值均高于空白組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。隨著濃度的增高,補(bǔ)腎中藥方劑對(duì)大鼠MSCs增殖的影響有促進(jìn)作用。
2.3 對(duì)礦化結(jié)節(jié)數(shù)的影響
如表2所示,選取第14天,濃度20 mg/L組、40 mg/L組、100 mg/組、200 mg/組的礦化結(jié)節(jié)數(shù)與空白組比較,差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.05)。說明隨著補(bǔ)腎中藥濃度的提高,其促進(jìn)成骨作用逐步增強(qiáng)。
3 討論
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞是存在于骨髓中的間充質(zhì)干細(xì)胞,它具有多向分化潛能,能夠自我更新,可在體外培養(yǎng)。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞在一定的誘導(dǎo)條件下可以向軟骨細(xì)胞、成骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞、心肌細(xì)胞等多個(gè)方向分化[4]。成骨細(xì)胞是體內(nèi)骨形成的主要細(xì)胞也是骨代謝的重要功能細(xì)胞,對(duì)維持骨的代謝平衡非常重要[5]。成骨細(xì)胞功能障礙或數(shù)量減少,都會(huì)導(dǎo)致骨組織代謝異常、骨質(zhì)疏松等多種疾病的發(fā)生。骨質(zhì)疏松癥在中醫(yī)學(xué)上被認(rèn)為是腎氣虛衰所致,因此近年來越來越多的研究利用補(bǔ)腎中藥來治療骨質(zhì)疏松癥。
本研究發(fā)現(xiàn),不同濃度組的補(bǔ)腎中藥均可促進(jìn)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的增殖, 增強(qiáng)堿性磷酸酶的活性。堿性磷酸酶是骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化的主要特征性酶,也是最早出現(xiàn)的指標(biāo),其由成骨細(xì)胞產(chǎn)生并可反映分化程度的高低。目前比較普遍的觀點(diǎn)認(rèn)為,堿性磷酸酶在體外的鈣化中起著關(guān)鍵的作用[6],堿性磷酸酶活性的高表達(dá)標(biāo)志著成骨細(xì)胞的分化成熟[7]。相較于堿性磷酸酶,礦化結(jié)節(jié)為骨形成的標(biāo)志,它的形成代表了細(xì)胞進(jìn)一步成骨分化成熟[8]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,不同濃度的補(bǔ)腎中藥在不同程度上能刺激骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的增殖分化成骨。
傳統(tǒng)醫(yī)學(xué)認(rèn)為“腎主藏精”,腎精可以生骨養(yǎng)髓的。本方劑所涵蓋的多味補(bǔ)腎中藥中部分作為單味中藥在體外有促進(jìn)向骨髓基質(zhì)干細(xì)胞成骨分化的作用。殷曉雪等[9]的研究發(fā)現(xiàn)淫羊藿可以上調(diào)BMP-2基因的表達(dá),促進(jìn)成骨細(xì)胞的增殖和分化。徐展望等[10]的研究發(fā)現(xiàn)補(bǔ)骨脂能促進(jìn)大鼠成骨細(xì)胞的增殖。張立等[11]的研究發(fā)現(xiàn)杜仲也能通過刺激成骨細(xì)胞的增殖分化促進(jìn)骨的重建。此外,Wang等[12]的研究指出骨碎補(bǔ)能促進(jìn)人成骨細(xì)胞增殖作用。本實(shí)驗(yàn)中的補(bǔ)腎中藥是在上述單味補(bǔ)腎藥物的基礎(chǔ)上經(jīng)過組合構(gòu)成,它能夠促進(jìn)大鼠體外骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增殖及其向成骨細(xì)胞分化。
通過本實(shí)驗(yàn)可以發(fā)現(xiàn),補(bǔ)腎中藥對(duì)骨髓基質(zhì)干細(xì)胞增值的影響。在低濃度不但沒有毒害作用,而且隨著濃度的增加,細(xì)胞增值作用遞增。中藥具有誘導(dǎo)分化的作用,和空白組相比(空白組也加入了誘導(dǎo)成骨液),中藥有誘導(dǎo)基質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞分化的作用。中期的ALP和細(xì)胞分化成熟晚期的礦化結(jié)節(jié)表明,藥物對(duì)細(xì)胞的分化成熟作用明顯,特別是對(duì)成骨晚期的骨礦化,補(bǔ)腎中藥顯示出極佳的促成骨作用。
[參考文獻(xiàn)]
[1] 金慰芳,朱文菁,王洪復(fù),等. 補(bǔ)腎中藥HUECS對(duì)培養(yǎng)成骨細(xì)胞增殖、分化及礦化功能的影響[J]. 中國骨質(zhì)疏松雜志,2001,7(8):9-10.
[2] 補(bǔ)腎方劑對(duì)大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞增殖與分化的影響[J]. 中國藥物與臨床,2007,7(5):329-331.
[3] 張榮華,舒曉春. 中藥復(fù)方補(bǔ)腎活血液對(duì)成骨細(xì)胞影響的實(shí)驗(yàn)研究[J]. 中國病理生理雜志,2003,19(6):769-772.
[4] Mahmood A,Lu D,Wang L,et al. Intracerebral transplantation of marrow stromal cells cultured with neurotrophic factors promotes functional recovery in adult rats subjected to traumatic brain injury[J].Neurotrauma,2002,9(12):1609-1617.
[5] Iwamoto J,Sato Y,Takeda T,et al. Bone quality and vitamin K2 in type 2 diabetes:Review of preclinical and clinical studies[J]. Nutrition Reviews,2011,69(3):162-1676.
[6] Hwang R,Lee EJ,Kim MH,et al. Calcyclin,a Ca2+ ion-binding protein,contributes to the anabolic effects of simvastatin on bone[J]. J Bio Chem,2004,279(20):21239-21247.
[7] Nguyen H,Qian JJ,Bhatnagar RS,et al. Enhanced cell attachment and osteoblastic activity by P15 peptide coated matrix in hydrogels[J]. Biochem Biophys Res Commun,2003,311(1):179-186.
[8] Bellows CG,Aubin JE,Heersche JN,et al. Mineralized bone nodules formed in vitro from enzymatically released rat calvaria cell populations[J]. Calcif Tissue Int,1986,38(3):143-154.
[9] 殷曉雪,陳仲強(qiáng),黨耕町,等. 淫羊藿苷對(duì)人成骨細(xì)胞增殖與分化的影響[J]. 中國中藥雜志,2005,30(4):289-291.
[10] 徐展望,張建新,譚國慶,等. 中藥骨碎補(bǔ)提取液對(duì)兔骨髓基質(zhì)細(xì)胞體外成骨分化的影響[J]. 中醫(yī)正骨,2006,18(6):15-17.
[11] 張立,葛煥琦,白立緯,等. 杜仲葉醇防治糖尿病合并去勢(shì)大鼠骨質(zhì)疏松癥的實(shí)驗(yàn)研究[J]. 中國老年學(xué)雜志,2003,23(6):370-372.
[12] Wang XL,Wang NL,Zhang Y,et al. Effects of eleven flavonoids from the osteoprotective fraction of Drynaria fortunei(Kunze) J. Sm. on osteoblastic proliferation using an osteoblast-like cells line[J]. Chem Pharm Bull(Tokyo),2008,56(1):46-51.
(收稿日期:2013-01-10)