魏希穎 ,王家穩(wěn),劉清梅,胡妍妍
(陜西師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,陜西 西安710062)
微生物資源的開發(fā)利用是繼動植物資源之后的第三大生物支柱產(chǎn)業(yè),具有可再生性.其開發(fā)利用的基礎(chǔ)首先是選育新性狀、高產(chǎn)和低能耗等特性的優(yōu)良菌株,然而直接從自然界中篩選到的原始菌株往往不能滿足工業(yè)生產(chǎn)的需求,需經(jīng)過不同的育種方法進行菌種改良以滿足生產(chǎn)所需.傳統(tǒng)誘變育種技術(shù)雖然操作簡便、技術(shù)成熟,但是存在許多不足之處,如盲目性高、工作量大、效率低等問題.運用現(xiàn)代分子生物學(xué)手段對微生物進行定向基因操作,雖然較傳統(tǒng)育種取得了一定成果,但是基因型和表型相應(yīng)背景的欠缺限制了其應(yīng)用.由此,研究開發(fā)高效定向的微生物菌種選育方法一直是微生物科學(xué)工作者們所面臨的重要課題.
基因組重排(Genome Shuffling)技術(shù)是20世紀90年代中期,美國加州Maxgen公司Cardayré等[1]首次提出的,是基于DNA Shuffling的原理[2],將傳統(tǒng)誘變技術(shù)和細胞融合技術(shù)相結(jié)合,以整個基因組作為重組對象的多親本原生質(zhì)體遞推融合技術(shù).該技術(shù)能大幅度提高微生物細胞的正向突變頻率及正向突變速度,使得人們能夠在較短的時間內(nèi)獲得高效的正向突變的菌株,它是近年發(fā)展起來的微生物育種新技術(shù),并被視為是菌株選育和代謝工程上的重大里程碑[3].
從20世紀90年代開始,微生物育種學(xué)逐漸與代謝工程、化學(xué)工程和進化工程相結(jié)合而發(fā)展起來.90年代初,美國加州Maxygen生物技術(shù)公司Cardayré等就萌發(fā)DNA重排和基因組重排育種的思路.Stemmer等[2]在1994年率先提出DNA重排技術(shù),該技術(shù)是一種體外定向進化分子的方法,在一定程度上模仿生物體自然進化過程中減數(shù)分裂期等位基因間的DNA片段交換,首先用DNAaseI將同源的DNA消化成片段,再將得到的隨機片段無引物PCR,使之重新隨機裝配從而獲得多種排列組合的突變基因庫.
基于相似的原理,Crameri等[4]在1998年將DNA重排技術(shù)延伸到DNA家族重排上,它是以來自不同種屬的同源基因進行DNA重排操作的技術(shù).該技術(shù)打破不同種屬間的遺傳界限,通過提高親本基因群中差異的組合頻率和重排子代的雜合度,以增加突變文庫的多樣性,提高突變文庫的質(zhì)量,進而有效地產(chǎn)生滿足需要的突變體.
由于生物體中的絕大部分表型受到多個基因協(xié)同調(diào)控,2002年,Zhang等[1]又進一步提出在細胞水平的基因組重排,該技術(shù)模擬自然進化的過程,將誘變育種技術(shù)和原生質(zhì)體融合技術(shù)相結(jié)合,以分子進化為核心在實驗室實現(xiàn)微生物全細胞快速定向進化.首先對出發(fā)菌株進行人工誘變,選擇目標性狀超過出發(fā)菌株的正突變體,構(gòu)成各種變異體組成的突變庫,然后將這些帶有不同有益基因的多親本菌株進行多輪遞推式原生質(zhì)體融合,這樣通過有性生殖[5-6]或基因重組在全基因范圍內(nèi)交換重組遺傳信息來合理利用突變菌庫中的基因差異,消除并淘汰有害突變,高效地積累并綜合突變庫中所有親本大部分有益變異基因,從而達到跳躍性的人工進化目標,同時獲取表型最優(yōu)的后代.Stemmer等首次將基因組重排技術(shù)應(yīng)用于弗氏鏈霉菌(Streptomyces fradiae),研究顯示僅通過兩輪遞推式融合所得到的高產(chǎn)菌株就能優(yōu)于歷經(jīng)20年經(jīng)過20輪常規(guī)誘變所獲得的高產(chǎn)菌株;之后Patnaik R等[7]應(yīng)用該技術(shù)提高了乳酸桿菌的耐酸能力和產(chǎn)量.由此可見,基因組重排可有效提高菌株間基因組的重組頻率,縮短選育周期,使獲得優(yōu)良突變株的頻率得到極大的提高.該技術(shù)不僅能改良工業(yè)菌株的生產(chǎn)特性,還能為各種各樣的微生物提供信息源和復(fù)雜的代謝調(diào)控網(wǎng)絡(luò)數(shù)據(jù),被證實是一種具有廣闊應(yīng)用前景的新技術(shù)[8].
基因組重排的基礎(chǔ)是誘變技術(shù)與原生質(zhì)體融合技術(shù),它是傳統(tǒng)育種技術(shù)的發(fā)展和延伸.作為一種新型、快速、有效的技術(shù),其與經(jīng)典的誘變育種、原生質(zhì)體融合技術(shù)相比具有明顯的優(yōu)勢.
1.2.1 避免菌株產(chǎn)生“疲勞效應(yīng)” 傳統(tǒng)的育種技術(shù)連續(xù)的誘變會造成菌株產(chǎn)生“疲勞效應(yīng)”,而基因組重排過只需經(jīng)過一次誘變,避免了菌種因長期使用誘變劑而導(dǎo)致的自身抗性增強和產(chǎn)生“疲勞效應(yīng)”等現(xiàn)象.
1.2.2 快速、高效,省時,設(shè)備簡單 傳統(tǒng)育種技術(shù)具有較大的盲目性、隨機性、費時、費力,且菌株突變面臨回復(fù)現(xiàn)象等難題.若需得到具有單一基因正向突變的菌株,傳統(tǒng)育種技術(shù)至少需要105的變異文庫進行篩選,而基因組重排只需經(jīng)過一次誘變獲取微量的正突變株后,通過連續(xù)多次的“遞推式原生質(zhì)體融合”,進行多親本全基因組范圍內(nèi)交換重組遺傳信息,就能夠快速、高效地積累多親本全部正向突變特點的子代.該技術(shù)操作簡單,設(shè)備易得,費用低廉,應(yīng)用前景廣闊.
1.2.3 多親本的基因水平轉(zhuǎn)移 傳統(tǒng)的誘變育種實質(zhì)上是單親的變異和遺傳,需要多次誘變和篩選的繁雜過程,花費漫長的周期,才能實現(xiàn)單一菌株上發(fā)生多點有利突變.基因組重排是一種多水平遺傳方式,它通過原生質(zhì)體的遞推式融合使基因組發(fā)生高效的重組,提高了親本遺傳的多樣性,使多重優(yōu)良性狀子代出現(xiàn)的頻率更高.同時,由于繼承了原生質(zhì)體融合技術(shù)的優(yōu)點,基因組重排可以實現(xiàn)遠源親本的基因水平轉(zhuǎn)移,為微生物育種提供更加廣闊的操作空間.如Zhao等[9]將不同種的輪梗霉和黑曲霉進行融合篩選了高產(chǎn)花生四烯酸(AA)和具有利用廣譜碳源的菌株;John等[10]用德式乳桿菌(Lactobacillus delbrueckii NCIM2025)和淀粉酶產(chǎn)生菌(Bacillus amyloliquefaciensATCC23842)進行融合篩選出了高產(chǎn)L-乳酸的菌株.
1.2.4 子代菌株具有的遺傳多樣性 基因組重排源于誘變技術(shù)和原生質(zhì)體融合技術(shù),但三者最大區(qū)別在于基因組重排使用多親本、多正向突變菌株和遞推式融合,由于DNA重組的隨機性,能產(chǎn)生和積累各種各樣的正突變組合.因此經(jīng)重排后的子代菌株間的遺傳距離將高于兩親本間的遺傳距離,這將增加子代群體內(nèi)的遺傳多樣性,從而提高獲得優(yōu)良性狀菌株的概率,為進一步改良菌株提供豐富的資源,同時也能為菌株復(fù)雜的代謝網(wǎng)絡(luò)調(diào)控提供數(shù)據(jù)信息.如:El-Gendy等[11]利用RAPD技術(shù)對野生菌株、出發(fā)菌和融合菌進行遺傳多樣性分析,結(jié)果表明它們之間存在很大的差異;Xu等[12]利用AFLP技術(shù)對野生菌、出發(fā)菌和融合菌進行遺傳多樣性分析,同樣表明經(jīng)過誘變和重排后的菌株同野生菌相比存在很大的差異.
1.2.5 產(chǎn)生的子代穩(wěn)定性與安全性高 由于基因組重排是模擬自然進化的過程,通過原生質(zhì)體融合將多親本不同的有益基因融合重組積累正突變基因,同時降低或消除了有害、中性突變.如Stephen B del Cardayré所說:“它原本就是在自然界中實實在在發(fā)生的事情,我們只是幫助這些菌株打破了它們之間的界限,加快了它們的遺傳物質(zhì)組合在一起的速度”[1].因此該技術(shù)篩選出的菌株的穩(wěn)定性更高.相對基因工程菌株而言,該技術(shù)是利用生化手段讓親本中優(yōu)良的基因自然地集中在一起,不存在利用外來基因進行拼接的可能,因此經(jīng)基因組重排產(chǎn)生的菌株的安全性亦更高.
1.2.6 無須對菌種遺傳背景十分清楚,有效地對由“多基因”調(diào)控的性狀進行改良DNA重組技術(shù)、定向進化工程、代謝工程和系統(tǒng)生物學(xué)手段等,使人們有可能直接得到理想中的優(yōu)良性狀,在一定程度上達到了定向進化的目的,但這些技術(shù)手段都是建立在對目標菌株遺傳背景深入了解的基礎(chǔ)上,需要花費巨額的費用和較長的時間代價去探索其遺傳規(guī)律.基因組重排則無須了解微生物生命活動的深層調(diào)控機制,它以細胞內(nèi)整套基因組為對象,可進行隨機地交換重組整合,通過篩選最佳的“組合”,加快定向進化的速率,對于“多基因”調(diào)控的性狀改良效果明顯,能夠達到快速育種的目的.
基因組重排充分結(jié)合傳統(tǒng)誘變育種和細胞工程的優(yōu)勢,具有快速高效改良工業(yè)菌種表型的能力[2,6],還能為各種各樣的微生物提供信息源和復(fù)雜的代謝調(diào)控網(wǎng)絡(luò)數(shù)據(jù).目前,基因組重排主要應(yīng)用于提高微生物代謝產(chǎn)物產(chǎn)率,增強菌株對環(huán)境的耐受性,提高底物利用率和范圍,改變代謝途徑產(chǎn)生新的代謝產(chǎn)物等.
經(jīng)過基因組重排后能夠有效的優(yōu)化和調(diào)節(jié)多基因控制的性狀來提高產(chǎn)量.Hida等[13]通過基因組重排,對鏈霉菌(Streptomyces sp.U121)采用NTG誘變,然后進行3輪原生質(zhì)體遞推融合后篩選到一高產(chǎn)菌株3-61,其產(chǎn)羥甲基檸檬酸的產(chǎn)量比野生菌株提高5倍;El-Gendy等[11]對諾卡氏菌(Nocardia sp.ALAA 2000)采用EMS和UV進行誘變,經(jīng)過3輪重排后篩選到一株高產(chǎn)綾霉素的融合菌F3/22,其產(chǎn)量比野生菌提高了19倍;Zhang等[14]采用基因組重排對謝曼(氏)丙酸桿菌(Propionibacterium shermanii)進行改造,使其產(chǎn)維生素B12的能力比出發(fā)菌株提高61%;Gong等[15]通過基因組重排對纖維堆囊菌(Sorangium cellulosum)進行改造,使抗癌新藥埃博霉素B(epothilone B)的產(chǎn)量比野生菌提高了130倍.
目前,基因組重排已經(jīng)成功應(yīng)用于提高菌株對酸、鹽、底物、溫度、產(chǎn)物等因素的耐受性.如通過基因組重排提高菌株對酸的耐受性[7,15,16-17];啤酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)耐乙醇和高產(chǎn)乙醇能力[5,6];Cao等[18-19]分別對魯氏接合酵母(Zygosaccharomyces rouxii)和假絲酵母(Candida versatilis)進行基因組重排篩選出具有耐鹽和廣譜pH的融合菌株;Xu等[12]用基因組重排獲得了具有提高產(chǎn)普納霉素的始旋鏈霉菌(Streptomyces pristinaespiralis)對普納霉素的耐受性;Shi等采用基因組重排獲取的融合子可以在55℃下正常生長和能耐受25%(V/V)的乙醇[20].
基因組重排同樣適用于提高菌株對底物的利用能力和范圍.Burkhard[21]等應(yīng)用基因組重排篩選到一株更高效利用甘油的菌株,使其產(chǎn)物1,3-丙二醇產(chǎn)量相較原始菌提高80%;Dai等[22]利用基因組重排對Sphingobium chlorophenolicum ATCC39723表型改良,經(jīng)過3輪基因組重排后,篩選的融合菌比野生菌對五氯苯酚具有更高利用率;Zhao等[9]利用基因組重排對輪梗霉和黑曲霉進行3輪重排,篩選到一株能利用8種碳源和6種氮源的融合菌;Kang等[23]經(jīng)過3輪遞推融合篩選到一株高效利用淀粉水解液達97.9%的融合菌株.
應(yīng)用基因組重排還可以改變菌株的代謝途徑產(chǎn)生新的代謝產(chǎn)物.Cao等[18]利用基因組重排對魯氏接合酵母(Zygosaccharomyces rouxii)進行3輪重排后篩選到一株能高產(chǎn)香味化合物和新化合物 的融合菌株;Wang等[24]對一株產(chǎn)紫杉醇的內(nèi)生真菌(Tuberculariasp.TF5)用UV和NTG對原生質(zhì)體誘變建立突變庫,經(jīng)過1輪重排,篩選到一株突變株(M-741)能產(chǎn)生3種新的倍半萜類(Sesquiterpenoids)化合物,另一株重排融合菌(G-444)能產(chǎn)生新的18種其他化合物,其中有10種化合物是在TF5中沒有檢測到的物質(zhì).
基因組重排在應(yīng)用過程中存在的問題:(1)首先在選擇遺傳變異足夠豐富的突變體進行原生質(zhì)體遞推融合時,正突變基因組文庫的篩選和篩選模型的建立存在一定困難;(2)在遞推融合過程中原生質(zhì)體的形成率、再生率、活性及其融合菌株高效、高通量篩選模型的建立限制了基因組重排的廣泛應(yīng)用;(3)基因組重排應(yīng)用菌種改良過程中,由于基因組片段重組也是隨機的并不具備定向性,在積累有益突變時也會產(chǎn)生一些中性和有害突變體,有時甚至喪失固有的優(yōu)良性狀,如何高效、定向的篩選目的表型融合菌存在著一定的困難和挑戰(zhàn);(4)基因組重排目前普遍運用于同種單親本菌株,對于不同種多親本細胞之間的報道還是很少,且存在同源性越差,重組頻率越低的問題;(5)雖然基因組重排可以快速、高效的改進工業(yè)生產(chǎn)菌種或優(yōu)化代謝途徑,但是僅僅通過基因組重排人們很難了解發(fā)生改進或優(yōu)化的原因及分子機制.
基因組重排利用原有基因進行交換重組,這是在傳統(tǒng)育種、原生質(zhì)體融合以及DNA重排的基礎(chǔ)上對微生物育種技術(shù)的一次革命性的改進,隨著基因組重排的不斷成熟,各種普適的高通量、高效快速篩選策略的出現(xiàn)必將促進基因組重排的廣泛應(yīng)用,選育出更加適合工業(yè)生產(chǎn)的菌種;同時隨著生物信息學(xué)、代謝工程、基因工程、功能基因組學(xué)等其他生物技術(shù)與之相結(jié)合,必將揭示基因型和表型的關(guān)系以及代謝途徑得到優(yōu)化的分子機制,甚至發(fā)現(xiàn)代謝網(wǎng)絡(luò)中一些未知的調(diào)節(jié)機制,同時該技術(shù)還有可能成為以后新型化合物開發(fā)中的一個有力工具.特別是在目前的研究發(fā)展中,基因組重排被廣泛應(yīng)用于提高許多新型藥用微生物的產(chǎn)量,以滿足人們對藥物的需求,同時也解決了眾多藥物資源缺乏的困境.該技術(shù)在今后的藥物微生物菌種選育和其他工業(yè)微生物育種研究過程中將得到進一步的應(yīng)用和發(fā)展.
[1]Zhang Yingxin,Perry K,Vinci V A,et al.Genome shuffling leads to phenotypic improvement in bacteria[J].Nature,2002,415:644-646.
[2]Stemmer Willem P C.Rapid evolution of a protein in vitro by DNA shuffling[J].Nature,1944,370:389-391.
[3]Stephanopoulos G.Metabolic engineering by genome shuffling[J].Nature Biotechnology,2002,20:666-668.
[4]Crameri A,Raillard S A,Bermudez E,et al.Stemmer.DNA shuffling of a family of genes from diverse species accelerates directed evolution[J].Nature,1998,391:288-291.
[5]Hou Lihua.Novel methods of genome shuffling in Saccharomyces cerevisiae[J].Biotechnology Letters,2009,31:671-677.
[6]Wang Haiyong,Hou Lihua.Genome shuffling to improve fermentation properties of top-fermenting yeast by the improvement of stress tolerance[J].Food Science and Biotechnology,2010,19(1):145-150.
[7]Patnaik R,Louie S,Gavrilovic V,et al.Genome shuffling of Lactobacillus for improved acid tolerance[J].Nature Biotechnology,2002,20:707-712.
[8]Petri R,Schmidt-Dannert C.Dealing with complexity:evolutionary engineering and genome shuffling[J].Current Opinion in Biotechnology,2004,15:298-304.
[9]Zhao Mo,Dai Chuanchao,Guan Xianyue,et al.Genome shuffling amplifies the carbon source spectrum and improves arachidonic acid production in Diasporangium sp. [J].Enzyme and Microbial Technology,2009,45:419-425.
[10]John R P,Gangadharan D,Nampoothiri K M.Genome shuffling of Lactobacillus delbrueckii mutant and Bacillus amyloliquefaciens through protoplasmic fusion for L-lactic acid production from starchy wastes[J].Bioresource Technology,2008,99:8008-8015.
[11]El-Gendy M M,El-Bondkly A M.Genome shuffling of marine derived bacterium Nocardia sp.ALAA 2000 for improved ayamycin production[J].Antonie van Leeuwenhoek,2011,99(4):773-780.
[12]Xu Bo,Jin Zhihua,Wang Hengzeng,et al.Evolution of Streptomyces pristinaespiralis for resistance and production of pristinamycin by genome shuffling[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2008,80:261-267.
[13]Hida H,Yamada T,Yamada Y.Genome shuffling of Streptomyces sp.U121for improved production of hydroxycitric acid[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2007,73:1387-1393.
[14]Zhang Ying,Liu Jianzhong,Huang Junsheng,et al.Genome shuffling of Propionibacterium shermanii for improving vitamin B12production and comparative proteome analysis[J].Journal of Biotechnology,2010,148:139-143.
[15]Gong Guoli,Sun Xin,Liu Xinli,et al.Mutation and a high-throughtput screening method for improving the production of Epothilones of Sorangium[J].Journal of Industrial Microbiology &Biotechnology,2007,34:615-623.
[16]Zheng Huijie,Gong Jixian,Chen Tao,et al.Strain improvement of Sporolactobacillus inulinus ATCC15538 for acid tolerance and production of D-lactic acid by genome shuffling[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2010,85:1541-1549.
[17]Wang Yuhua,Li Yan,Pei Xiaolin,et al.Genomeshuffling improved acid tolerance and L-lactic acid volumetric productivity in Lactobacillus rhamnosus[J].Journal of Biotechnology,2007,129:510-515.
[18]Cao Xiaohong,Hou Lihua,Lu Meifang,et al.Genome shuffling of Zygosaccharomyces rouxii to accelerate and enhance the flavour formation of soy sauce[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,2010,90:281-285.
[19]Cao Xiaohong,Hou Lihua,Lu Meifang,et al.Improvement of soy-sauce flavour by genome shuffling in Candida versatilis to improve salt stress resistance[J].International Journal of Food Science and Technology,2010,45:17-22.
[20]Shi Dengjian,Wang Changlu,Wang Kuiming.Genome shuffling to improve thermotolerance,ethanol tolerance and ethanol productivity of Saccharomyces cerevisiae[J].Journal of Industrial Microbiology &Biotechnology,2009,36:139-147.
[21]Otte B,Grunwaldt E,Mahmoud O,et al.Genome shuffling in clostridium diolis DSM 15410for improved 1,3-propanediol production[J].Applied and Environmental Microbiology,2009,75(24):7610-7616.
[22]Dai Minghua,Copley S D.Genome shuffling improves degradation of the anthropogenic pesticide pentachlorophenol by Sphingobium chlorophenolicum ATCC 39723[J].Applied and Environmental Microbiology,2004,70(4):2391-2397.
[23]Kang Jianxiong,Chen Xijuan,Chen Wunran,et al.Enhanced production of pullulan in Aureobasidium pullulans by a new process of genome shuffling[J].Process Biochemistry,2011,46:792-795.
[24]Wang Mingzi,Liu Shaosong,Li Yaoyao,et al.Protoplast mutation and genome shuffling induce the endophytic fungus Tubercularia sp.TF5to produce new compounds[J].Current Microbiology,2010,61:254-260.