国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因的克隆及序列分析

2013-09-14 12:47:46劉洋孫佳帝
生物技術(shù)通報 2013年8期
關(guān)鍵詞:克隆低溫氨基酸

劉洋 孫佳帝

低溫是經(jīng)常發(fā)生且危害嚴重的逆境因素之一,許多果樹在經(jīng)受低溫脅迫后都發(fā)生不同程度的傷害,嚴重時甚至導(dǎo)致整個植株死亡。近年來,在模式植物擬南芥中發(fā)現(xiàn)的CBF(C- repeat/ dehydration responsive element binding factor)低溫反應(yīng)途徑,使當(dāng)前果樹抗寒基因工程研究取得了重大突破。CBF轉(zhuǎn)錄因子能夠特異結(jié)合啟動子中含有CRT/DRE 的順式元件,激活COR等基因的表達,從而提高植物的抗凍力[1,2]。本研究采用生物信息學(xué)方法對來自不同種屬的植物的低溫誘導(dǎo)基因CBF1的同源性進行分析,以此為基礎(chǔ)克隆山葡萄低溫誘導(dǎo)基因CBF1,并對該基因的核苷酸序列及氨基酸序列進行分析,旨在為下一步表達載體的構(gòu)建及基因轉(zhuǎn)化奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料

植物材料為吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院選育的兩性花山葡萄(Vitis amurensisRupr.)栽培品種“雙優(yōu)”。E.coli DH5α、表達質(zhì)粒pBI121由吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)院提供??寺≥d體pMD18-T vector、T4 DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶、Taq DNA聚合酶及其他工具酶購自寶生物工程(大連)有限公司;DEPC、Tris等RNA提取試劑、植物基因組DNA小量提取試劑盒、切膠回收試劑盒、DNA清潔試劑盒、DNA Marker DL2000購自杭州維特潔生化技術(shù)公司。引物合成和測序由上海生工生物工程有限公司完成,序列測定用測序儀ABIPRISMTM377DNA Sequence進行。

1.2 方法

1.2.1 山葡萄葉片組織中總RNA的提取 以水培法培養(yǎng)山葡萄(Vitis amurensisRupr.)枝條,待枝條長出3-5片真葉時進行4℃低溫處理4h,采用CTAB法(操作方法參見《分子克隆實驗指南》第3版)提取山葡萄葉片組織總RNA。

1.2.2 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因中間片段的分離

取 5μL(≤2μg)mRNA,2μL 反轉(zhuǎn)錄酶,4μL buffer(5×),2μL dNTP mix(10mmol/L),0.5μL RNase Ribonuclease Inhibitor,3.5μL DEPC 水,70℃ 水浴變性5min,冰浴5min稍離心,慢慢混勻后,低速離心,收集液滴,42℃溫浴60min,85℃加熱10min滅活反轉(zhuǎn)錄酶,得到cDNA。以cDNA為模板進行PCR擴增,20μL的體系包括0.5μL cDNA,2μL buffer(10×),2μL Mg2+(25mmol/L),0.25μL dNTP(10mmol/L),0.5μL P1,0.5μL P2,0.25μL Taq 酶(5U/μL),14μL ddH2O,擴增引物見表 1。擴增程序如下:95℃溫育15min后,進入熱循環(huán),第 1 個循環(huán)參數(shù)為 94℃ 45s,68℃ 30s,72℃ 30s,此后每個循環(huán)的退火溫度下降1℃,共計9 個循環(huán),然后以94℃ 45s,56℃→ 61℃ 30s,72℃30 s梯度PCR 方式運行35個循環(huán),72℃延伸8min 結(jié)束。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳回收后連接到pMD18-T載體上,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,在Amp平板上挑取重組質(zhì)粒,PCR鑒定后送至大連寶生物工程公司進行測序。

1.2.3 反向PCR方法分離山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因側(cè)翼序列 根據(jù)1.2.2分離出來的CBF1基因中間片段,設(shè)計兩對特異引物(ViCBF1-F1、 ViCBF1-R1及ViCBF1-F2、ViCBF1-R2),見表1。用植物基因組DNA小量提取試劑盒(見說明書)提取山葡萄基因組DNA,應(yīng)用一種在已知序列及側(cè)翼的未知區(qū)域中沒有酶切位點的限制性內(nèi)切酶HindⅢ消化,消化體系 40μL,包括HindⅢ(30U)2μL,Buffer(10×)4μL,BSA(0.1%)4μL,DNA 20μL(1.5μg),dd-H2O 10μL,65℃處理18-20min,滅活內(nèi)在的限制性內(nèi)切酶。純化回收DNA樣品(用DNA清潔試劑盒),具體操作方法按照說明書進行,利用回收的DNA樣品作為反向PCR的模板,進行PCR擴增,擴增產(chǎn)物在1%瓊脂糖凝膠中電泳分離,回收目的片段進行克隆測序。

1.2.4 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因全長DNA及cDNA的克隆 根據(jù)方法2.3得到的山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因的側(cè)翼序列,在其側(cè)翼序列設(shè)計一對特異引物(ViCBF1-F3 、ViCBF1-R3),見表 1。以山葡萄基因組DNA為模板進行PCR擴增,擴增產(chǎn)物在1%瓊脂糖凝膠中電泳分離,回收目的片段進行克隆測序。

在ViCBF1基因的ORF設(shè)計一對特異引物(ViCBF1-F4 、ViCBF1-R4)(表 1)。以反轉(zhuǎn)錄 cDNA為模板進行RT-PCR擴增,獲得山葡萄CBF1基因的全長cDNA 序列。

表1 克隆CBF1基因所用引物

1.2.5 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因的序列分析 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因序列相似性比較在http://ncbi.nlm.nih.gov網(wǎng)站上用BLAST進行,根據(jù)目的基因核苷酸序列用Primer 5.0軟件推導(dǎo)出目的基因的氨基酸序列,并進行序列分析。

2 結(jié)果

2.1 山葡萄總RNA的提取與mRNA的分離

山葡萄植物細胞中含酚類化合物,并且多糖含量比較高,為此在本試驗在CTAB原方法的基礎(chǔ)上增加PVP(聚乙烯吡咯烷酮)含量,因為PVP中的CO-N=基有很強的結(jié)合多酚化合物的能力,能有效地去除多酚對RNA提取的干擾,從而獲得純度較高的山葡萄RNA,如圖1所示,23S 核糖體RNA 與18S核糖體RNA 的帶型清晰銳利,它們的亮度比基本上呈2∶1 關(guān)系,不存在蛋白質(zhì)、多糖和酚類物質(zhì)的明顯干擾。

2.2 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因中間片段及側(cè)翼序列的獲得

以mRNA反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物cDNA為模板進行電泳,通過PCR獲得cDNA的擴增片段,將擴增產(chǎn)物重組到pMD18-T克隆載體上進行測序,測序結(jié)果為758bp。根據(jù)序列信息,設(shè)計兩對側(cè)翼序列嵌套引物,反向PCR獲得一長度約為750bp的片段(圖2);測序結(jié)果為753bp(圖3)所示,其中有546bp是與上述已經(jīng)分離出來目的基因中間片段的重疊區(qū)域(圖3中的陰影部分即是)。圖3中的方框部分是新擴增出來的片段,長度為206bp,雙下劃線部分的6bp是HindⅢ酶切位點,HindⅢ的實際酶切位點是AAGCTT,而在本試驗中由于此酶產(chǎn)生了星號活性,此位點變?yōu)锳TGCTT(雙下劃線),剩余的200bp新擴增出來的片段,其中有94bp是目的基因的5'端片段(即方框中雙下劃線右側(cè)序列,106bp目的基因的3'端片段(即方框中雙下劃線左側(cè)序列)。

圖1 4℃低溫處理4h山葡萄的RNA的提取

圖2 RT-PCR產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳

圖3 反向PCR測序結(jié)果

2.3 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因全長DNA及 cDNA的克隆

以山葡萄基因組DNA為模板,引物ViCBF1-F3、ViCBF1-R3(表1)。進行PCR擴增,得到的PCR產(chǎn)物比較特異,無雜帶,無降解現(xiàn)象(圖4)。以山葡萄mRNA反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物cDNA為模板進行電泳,引物ViCBF1-F4、ViCBF1-R4(表1),PCR獲得cDNA的擴增片段,如圖5所示。測序結(jié)果所得到的序列與我們用基因組擴增所得到的序列在編碼區(qū)內(nèi)完全一致,這說明山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因在編碼區(qū)內(nèi)沒有內(nèi)含子。與所報道的其他植物中CBF1基因在編碼區(qū)內(nèi)沒有內(nèi)含子的結(jié)論完全一致。過程受此區(qū)域的控制。位于C末端的轉(zhuǎn)錄激活區(qū)酸性氨基酸含量較高,位于第237-251個氨基酸之間,其pI在3.6-3.9之間,這一區(qū)域在轉(zhuǎn)錄激活中起主要作用。

圖4 目的基因全長的PCR分析

圖5 目的基因的cDNA克隆的PCR產(chǎn)物

2.4 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因核苷酸序列及推導(dǎo)的氨基酸序列分析

山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因序列全長為910bp,編碼區(qū)長為753bp,無內(nèi)含子。山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因的核苷酸序列及推測的氨基酸序列,如圖6所示。CBF1轉(zhuǎn)錄因子屬于AP2/EREBP類轉(zhuǎn)錄因子,其一級結(jié)構(gòu)中含有AP2 DNA結(jié)合域(圖6中的陰影部分),它由79個氨基酸殘基組成,在不同的植物中非常保守,山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因與其他幾種植物中的CBF1基因的同源性主要歸因于它們的AP2 DNA結(jié)合域的高度同源。預(yù)測的堿性核定位信號位于N末端區(qū)域,位于第36-75個氨基酸之間,富含精氨酸和賴氨酸,CBF1轉(zhuǎn)錄因子進入細胞核的

圖6 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1的核苷酸序列及其相應(yīng)的氨基酸序列

2.5 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因的氨基酸序列分析

根據(jù)開放閱讀框的密碼子翻譯,推測該基因編碼一個含有251個氨基酸的多肽,分子量約為27.503kD,等電點偏低,pI=3.11,屬酸性蛋白。

表2 氨基酸成分組成成分

通過氨基酸組成分析得知,山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因中絲氨酸的濃度較高,達到13.55%,而堿性氨基酸賴氨酸和精氨酸的濃度分別為6.37%和6.77%,酸性氨基酸谷氨酸和天冬氨酸的濃度分別為5.58%和6.77%(表2)。

2.6 山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因氨基酸序列比較

Blast軟件分析表明,山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因與其他幾種植物的CBF1有著很高的相似性,其中與茄科辣椒屬中的簇生椒(Capsicum annuum)、鹽芥(Thellungiella salsuginea)、橡膠樹(Heavea brasiliensis)、葡萄(Vitis vinifera)、擬南芥(Arabidopsis thaliana)、水稻(Oryza sativa)蘋果(Malus×domestica)、大麥(Hordeum vulquare)、馬藺(Iris lactea var. chinensis)等植物的CBF1基因的氨基酸同源性達到80.7%。如圖7所示,在不同植物中AP2/EREBP區(qū)域內(nèi)是高度保守的,它含有1個由約60-70個氨基酸殘基組成的非常保守的DNA結(jié)合域(DNA-binding domain),主要功能是調(diào)節(jié)低溫、干旱、高鹽等脅迫條件下的應(yīng)答反應(yīng)。而且在AP2/EREBP結(jié)構(gòu)域的上游和下游分別有兩段保守序列,即PKK/RPAGRxKFxETRHP和DSAWR,在預(yù)測由擬南芥編碼產(chǎn)生的140多種 AP2/EREBP域蛋白中,只有CBF1、CBF2和CBF3才具有這兩段短多肽序列,因而稱其為CBF蛋白的特征序列,而在AP2/EREBP區(qū)域的兩側(cè)氨基酸序列總體上看沒有明顯的同源性。

圖7 十種植物低溫誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因的氨基酸序列比較

3 討論

近 3年來,在擬南芥[3]、油菜[3]、水稻[4]和番茄[5]等植物中發(fā)現(xiàn)了CBF1轉(zhuǎn)錄激活因子,本研究采用生物信息學(xué)方法對所能獲得的低溫誘導(dǎo)植物的CBF1基因序列進行了系統(tǒng)分析,進而獲得了不同低溫誘導(dǎo)植物的CBF1基因的共同結(jié)構(gòu)域,藉此合成兼并引物,并以山葡萄葉片組織為材料,采用RT-PCR和反向PCR技術(shù)成功獲得了山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因,在GenBank上的登錄號為DQ517296,并采用Blast軟件分析對大麥(Hordeum vulquare)、水稻(Oryza sativa)等10種低溫誘導(dǎo)植物的CBF1基因的氨基端序列進行了比對,其同源性達到80.7%,這也說明基因進化的保守性。該研究的核心技術(shù)在于:兼并引物的設(shè)計及兼并引物條件下PCR條件的設(shè)置。該方法與慣常使用的同源序列法的不同點在于以大量低溫誘導(dǎo)植物的CBF1基因的相似性為基礎(chǔ),采用梯度PCR方法,無須要求引物序列的完全匹配,對同源性的要求較低。此外,本研究采用反向PCR的方法一次性獲得目的基因的側(cè)翼序列即非編碼區(qū)部分,該方法只需要提取基因組DNA進行單酶切和自身環(huán)化,從而簡化了分離未知基因的步驟。

比較分析現(xiàn)有的低溫誘導(dǎo)的植物CBF1基因序列發(fā)現(xiàn),CBF1基因中含有高度保守的AP2/EREBP結(jié) 構(gòu) 域[6,7],AP2/EREBP 家 族 的 轉(zhuǎn) 錄 因 子 是 與環(huán)境脅迫應(yīng)答反應(yīng)等有關(guān)的一系列轉(zhuǎn)錄因子。在山葡萄AP2/EREBP域的上游和下游存在PKK/RPAGRxKFxETRH和DSAWR特征序列,在擬南芥[8]編碼產(chǎn)生的140多種AP2/EREBP域蛋白中,只有CBF1、CBF2、CBF3才具有這兩段短多肽序列,兩序列在進化程度不同的物種[9,10]中保守存在。因此,推測這兩段序列為CBF蛋白的特征序列,在CBF基因抗寒性功能研究中發(fā)揮非常重要的作用。結(jié)合本研究的結(jié)果及CBF1同源基因研究方面的文獻,可以推測這樣一種可能:即存在一種和CBF 蛋白相似的蛋白質(zhì)與編碼去飽和酶的基因的啟動子中某一元件結(jié)合,促進編碼去飽和酶的基因的表達,去飽和酶使膜脂的不飽和度增加,從而最終增加膜脂在低溫條件下的流動性和穩(wěn)定性,增強植物的抗寒力。

4 結(jié)論

本研究設(shè)計了一對兼并引物,采用RT-PCR及反向PCR技術(shù)克隆了山葡萄轉(zhuǎn)錄因子CBF1基因全長,其ORF長為753bp,無內(nèi)含子。經(jīng)序列比較分析,該基因?qū)儆贏P2/EREBP類轉(zhuǎn)錄因子,其一級結(jié)構(gòu)中含有AP2DNA結(jié)合域,它由79個氨基酸殘基組成,在不同的植物中較保守。

[1]Thomashow MF, Gilmour SJ, St ockinger EJ, et al. Role of theArabidopsisCBF transcriptional activators in cold acclimation[J]. Physiol Plant, 2001, 112:171-175.

[2]Gilmour SJ, Zarka DG, Stockinger EJ, et al. Low temperature regulation of theArabidopsisCBF family of AP2transcriptional activator as an early step in cold-induced COR gene expression[J]. Plant J,1998, 16(4):433-442.

[3]Jaglo KR, Kleff S, Amundsen KL, et al. Components of theArabidopsisC-repeat/dehydration element binding factor cold-response pathway are conserved inBrassica napusand other plant species[J].Plant Physiol, 2001, 127:910-917.

[4]Dubouzet JG, Sakuma Y, Ito Y, et al. OsDREB genes in rice, Oryza sativaL.encode transcription activators that function in drought-,high-salt-and cold-responsive gene expression[J]. Plant J, 2003,13(5):356-359.

[5]Hsieh TH, Lee JT, Charng YY, et al. Tomato plants ectopically expressingArabidopsisCBF 1 show enhanced resistance to water deficit stress[J]. Plant Physiology, 2002, 130:618-626.

[6]Riechmann JL, Meyerowitz EM. The AP2/EREBP family of plant transcription factors[J]. Biol Chem, 1998, 379:633-646.

[7]Okamuro JK, Caster B, Villarroel R, et al. The AP2domain of APETALA2defines a large new family of DNA binding proteins in Arabidopsis[J]. Proc Natl Acad SciUSA, 1997, 94:7076-7081.

[8]Kanaya E, Nakajima N, Morikawa K, et al. Characterization of the transcriptional activator CBF1 fromArabidopsis thaliana:evidence for cold denaturation in regions outside of the DNA binding domain[J]. Biol Chem, 1999, 274(23):16068-16076.

[9]Novillo F, Alonso JM, Ecker JR, et al. CBF2/DREB1C is a negative regulator of CBF1/DREB1B and CBF3/DREB1A expression and plays a central role in stress tolerance inArabidopsis[J]. Proc Natil Acad SciUSA, 2004, 101(11):2985-2990.

[10]Gilmour SJ, Sebolt AM, Salazar MP, et al. Overexpression of theArabidopsisCBF3transcriptional activator mimics multiple biochemical changes associated with cold acclimation[J]. Plant Physiology, 2000, 124:1854-1865.

猜你喜歡
克隆低溫氨基酸
《真空與低溫》征稿說明
真空與低溫(2022年6期)2023-01-06 07:33:20
克隆狼
基于低溫等離子體修飾的PET/PVC浮選分離
浙江:誕生首批體細胞克隆豬
月桂酰丙氨基酸鈉的抑菌性能研究
零下低溫引發(fā)的火災(zāi)
勞動保護(2018年8期)2018-09-12 01:16:18
UFLC-QTRAP-MS/MS法同時測定絞股藍中11種氨基酸
中成藥(2018年1期)2018-02-02 07:20:05
抗BP5-KLH多克隆抗體的制備及鑒定
一株Nsp2蛋白自然缺失123個氨基酸的PRRSV分離和鑒定
低溫休眠不是夢
吉林省| 西丰县| 聂荣县| 蒲城县| 海南省| 长子县| 平远县| 台南市| 日照市| 桐梓县| 汽车| 方城县| 嘉义市| 扎鲁特旗| 四会市| 贵阳市| 玉树县| 蒙自县| 大新县| 广州市| 永丰县| 蒙阴县| 桦川县| 青海省| 萨迦县| 麻城市| 阿拉善右旗| 太康县| 同德县| 襄樊市| 正镶白旗| 定结县| 庐江县| 榕江县| 张家港市| 平顺县| 大田县| 宜丰县| 龙泉市| 宁德市| 乡宁县|