康曉冬 馬小明
(寧夏農(nóng)林科學(xué)院草畜工程技術(shù)研究中心,寧夏銀川 750002)
1.1 試劑
1.1.1 2 mol/L磷酸鹽緩沖液 (含0.15 mol/L氯化鈉,pH7.2)稱取氯化鈉8.850 g,二水磷酸二氫鈉(NaH2PO4·2H2O)0.226 g和十二水磷酸氫二鈉(NaH2PO4·12H2O)1.698 g溶于適量水中,調(diào)pH至7.2,加水至1 000 ml。
1.1.2 供試品處理液 量取20%二乙醇胺0.25 ml和10% Triton X-100 0.20ml,加pH7.2PBS至10 ml。
1.1.3 20%二乙醇胺儲(chǔ)備液 量取二乙醇胺DEA(在室溫下該品可能會(huì)邊厚或者結(jié)晶使用前可加熱到30℃以液化)2 ml。加pH7.2PBS至10 ml。置于棕色瓶中室溫保存,室溫暗處可保存4個(gè)月。供試品稀釋液取牛血清白蛋白10.0 g,加磷酸鹽緩沖液使溶解成1 000 ml,即得。
1.1.4 10% Triton X-100儲(chǔ)備液 量取1ml10% Triton X-100加PH7.2PBS至10 ml。室溫可保存4個(gè)月。如果該溶混濁請(qǐng)勿使用。
1.1.5 1%硫柳汞溶液 稱取硫柳汞1g,加pH7.2PBS至100ml,溶解即。
1.1.6 樣品稀釋液 1%BSA,0.01%硫柳汞溶液,用PBS溶解。
1L的配制方法:取BSA10.0 g置于燒杯中,加pH7.2PBS溶液,約800 ml。磁力攪拌溶解。加1%硫柳汞溶液10.0 ml,再用pH7.2PBS溶解定容至1 000 ml。分裝成合適的體積于2℃~8℃暗處保存,有效期1個(gè)月。
1.1.7 參考品溶液及供試品溶液的配制 分別精密量取參考品及供試品0.1 ml,加入0.1 ml 供試品處理液,加蓋混勻,在20℃~28℃靜置30~35 min。將處理后的參考品和供試品以供試品稀釋液進(jìn)行適當(dāng)稀釋,稀釋后取1:2 000、1:4 000、1:8 000、1:16 000、1:32 000倍及其他適宜稀釋度的參考品和供試品,每個(gè)稀釋度作雙份測(cè)定。陰性對(duì)照為供試品稀釋液(雙份),陰性和陽(yáng)性對(duì)照不需稀釋。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
采用單克隆抗─HBS包被反應(yīng)板,加入待測(cè)標(biāo)本,同時(shí),加入多克隆抗-HBS-HRP,當(dāng)標(biāo)記中存在HBSAg時(shí),該HBSAg與包被抗-HBS結(jié)合并與抗-HBS-HRP結(jié)合形成抗-HBS-HBSAg-HRP復(fù)合物,加入TMB產(chǎn)生顯色底物,反之,則無(wú)顯色底物生成。該檢測(cè)與標(biāo)準(zhǔn)品做對(duì)比,定量檢測(cè)HBSAg 鋁佐劑疫苗的量,在進(jìn)行檢測(cè)前將疫苗樣品和標(biāo)準(zhǔn)品與二乙醇胺和Triton X―100溶液孵育,目的以減少抗原聚集和提高“AUSIY ME”ELISA法檢測(cè)樣品的可行性。通過(guò)對(duì)樣品和標(biāo)準(zhǔn)品的吸光值的分析,可檢測(cè)樣品的相對(duì)效力值。
1.3 實(shí)驗(yàn)儀器
酶標(biāo)儀(SUNRISE 雙波長(zhǎng))
2.1 樣品處理試劑盒要放培養(yǎng)箱(37℃)前0.5h(三批樣品)。
2.2 所有樣品均應(yīng)在2℃~8℃保存。處理前將參考品溶液和樣品溶液在旋渦混合器混合10s左右。
2.3 用前搖動(dòng)處理液的瓶子以混合均勻。
2.4 分別吸取0.1 ml參考品和樣品加到EP管中,然后每管加0.1 ml處理液。加蓋,旋渦混合10s,20℃~28℃靜置30~35min。
2.5 樣品稀釋
將處理過(guò)后的參考品和供試品分別以樣品稀釋液進(jìn)行稀釋,如下表1:
表1
2.6 測(cè)定順序
(1)每孔加待測(cè)標(biāo)本50微升,設(shè)印行對(duì)照,陽(yáng)性對(duì)照各2孔,每孔加入陰性對(duì)照(或陽(yáng)性對(duì)照)各2滴,設(shè)空白對(duì)照2孔。
(2)每孔加入酶結(jié)合物1滴(空白對(duì)照除外),充分混勻,封板,置37℃孵育30 min。
(3)手工洗板:棄去孔內(nèi)液體,洗滌液注滿各孔。靜置58s,甩干,重復(fù)5次拍干。
(4)每孔加入顯色劑A液、B液各一滴,充分混勻,封板,置37℃孵育15 min。
(5)每孔加入終止液各1滴,混勻。
(6)用酶標(biāo)儀讀數(shù),取波長(zhǎng)450 nm,630 nm,先用空白孔較零,然后讀取各孔OD值。
2.7 結(jié)果計(jì)算
(1)計(jì)算陰性對(duì)照的平均吸光值(NCX),必須落在-0.06~0.1范圍內(nèi)。如果某個(gè)數(shù)值落在這個(gè)范圍之外,則將這個(gè)數(shù)值重新計(jì)算平均值;如果兩個(gè)數(shù)值落在此范圍之外,則應(yīng)作檢測(cè);如果更多的數(shù)值落在范圍之外,則應(yīng)對(duì)其中的技術(shù)問(wèn)題進(jìn)行修正。
(2)計(jì)算陽(yáng)性對(duì)照平均吸光值排除PCX。
(3)計(jì)算陽(yáng)性對(duì)照-陰性對(duì)照(PCX -NCX),PCX -NCX應(yīng)≥0.400值。否則應(yīng)檢查技術(shù)問(wèn)題或試劑是否變質(zhì),重新進(jìn)行試驗(yàn)。
(4)每個(gè)稀釋液對(duì)照稀釋度應(yīng)當(dāng)在0~0.02范圍內(nèi)。
2.8.1 列出每次測(cè)得的參考品和待檢樣品的每個(gè)稀釋度比例的所有吸光值。
2.8.2 從3個(gè)檢測(cè)數(shù)據(jù)中,用平行線性回歸分析法計(jì)算每次的相對(duì)效力。
2.8.3 三次相對(duì)效力的幾何平均值即為其體外效力。
以凍干品為標(biāo)準(zhǔn)品,三次相對(duì)效力幾何平均值應(yīng)≥0.5。結(jié)果判為合格。
由于疫苗制品的檢定一般多采用生物學(xué)方法測(cè)定,因此在檢定中就難免出現(xiàn)檢定結(jié)果準(zhǔn)確性不佳,究其原因不外乎有實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的個(gè)體差異性,所用試劑和原材料的純度或敏感性不一致等。因此必須對(duì)現(xiàn)有檢定方法進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化和可信性研究。同時(shí)必須采用新技術(shù),建立新的準(zhǔn)確簡(jiǎn)便的檢定方法,提高疫苗制品的檢定工作質(zhì)量。而質(zhì)量檢定人員也應(yīng)本著對(duì)人民極端負(fù)責(zé)的精神,嚴(yán)格按照《生物制品規(guī)程》要求,對(duì)制品進(jìn)行科學(xué)檢定。此外還應(yīng)意識(shí)到,疫苗制品的質(zhì)量是生產(chǎn)出來(lái)的,檢定只是客觀反映制品的質(zhì)量問(wèn)題,從而促進(jìn)質(zhì)量的提高,而只有對(duì)生產(chǎn)過(guò)程實(shí)施全面的質(zhì)量管理才能全面有效地保證疫苗的質(zhì)量水品,生產(chǎn)好的疫苗制品,造福人類。因此在重組(酵母)乙肝疫苗體外效力的檢測(cè)中一定要認(rèn)真負(fù)責(zé),同時(shí)也應(yīng)該注意以下幾點(diǎn)問(wèn)題:
(1)待檢測(cè)樣品溶液中不應(yīng)存在與標(biāo)記酶相同的酶、底物、酶抑制劑和其他干擾因素,以防止干擾作用。
(2)吸附的效果與包被緩沖液的濃度、pH、溫育時(shí)間有關(guān),還與載體表面積性質(zhì)有關(guān)。包被蛋白質(zhì)時(shí)緩沖液宜偏堿性,離子強(qiáng)度較低,這有利于蛋白質(zhì)的吸附,包被緩沖液(pH<6=時(shí)非特異性吸附增加,實(shí)驗(yàn)中包被時(shí)常采用50mol/L pH9.5的碳酸鹽緩沖液,聚苯乙烯塑料表面能吸附轉(zhuǎn)移多的蛋白質(zhì),常用濃度1~10μg/ml的免疫球蛋白。濃度過(guò)高,蛋白質(zhì)間的相互作用防礙了蛋白質(zhì)與聚苯乙烯載體的吸附,不僅浪費(fèi)試劑,還會(huì)降低檢測(cè)的靈敏度。包被物質(zhì)必須是可容的,最適濃度可通過(guò)棋盤滴定法加以確定。
(3)聚苯乙烯酶標(biāo)記板測(cè)定時(shí),溶液宜垂直滴入凹孔中間,相繼加入的溶液都覆蓋相同的載體表面積。在吸附溫育和洗滌等操作中應(yīng)避免劇烈振蕩,攪拌等,以保證恒定的吸附容量。在洗滌操作中,由于聚苯乙烯反應(yīng)板凹孔容量小,孔間距離近,故洗滌時(shí)要注意每次加入的洗滌液量既要達(dá)到洗滌充分又要避免相鄰孔內(nèi)液體互相污染。
(4)在ELISA中血清陰性對(duì)照的顯色反應(yīng)常常是酶結(jié)合物與固相之間的非特異性吸附所致。在酶結(jié)合物稀釋時(shí)加去污劑(TWEEN)或BSA。
重組(酵母)乙肝疫苗體外效力的測(cè)定對(duì)評(píng)價(jià)疫苗的價(jià)值具有十分重要的意義。
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