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以濾紙酶活力為指標優(yōu)化解淀粉芽孢桿菌Tu-115菌株產纖維素酶液體發(fā)酵條件

2014-02-27 08:34
飼料工業(yè) 2014年20期
關鍵詞:濾紙氮源碳源

(河北農業(yè)大學生命科學學院,河北保定071001)

地球上每年通過光合作用產生約5×1010t的纖維素,采用生物酶法將纖維素降解成簡單糖類,飼喂畜禽,可有效緩解“人畜爭糧”的現象,將具有巨大的經濟效益和社會價值,但是大面積應用需要消耗大量的纖維素酶。通過篩選產纖維素酶的優(yōu)良菌株以及優(yōu)化產纖維素酶的發(fā)酵工藝可有效提高纖維素酶產量,降低其應用成本。

鑒于芽孢桿菌增殖速度快、發(fā)酵周期短、適合大規(guī)模生產等優(yōu)良生產特性,目前產纖維素酶芽孢桿菌的篩選及生產工藝的優(yōu)化已成為發(fā)酵生產纖維素酶研究的熱點。Kazemi[1]從伊朗Fars省的土壤中分離篩選得到了1株產纖維素酶的芽孢桿菌屬菌株BCCS A3,采用響應面法對其培養(yǎng)基進行優(yōu)化,利用發(fā)酵罐系統(tǒng)達到了較高的產纖維素酶水平(50.30 U/ml),發(fā)現碳源、氮源在該菌株產纖維素酶過程中起到關鍵作用。王全等[2]以牛糞為原料篩選出對纖維素具有顯著降解活性的枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)菌株XN-13,酶活力達1 700 U/ml。張立靜等[3]從菜地土壤、動物糞便、青貯飼料等樣品中分離篩選出1株具有顯著的纖維素降解能力的短小芽孢桿菌(Bacillus pumilus)菌株T-7,其纖維素酶活力達1 678.89 U/ml,通過降解工藝的優(yōu)化,最終以10億活菌/kg的接種量接入玉米秸稈,添加2%蔗糖+2%尿素,在發(fā)酵8 d后對秸稈纖維素的降解率達40.34%。楊麗娜等[4]從腐爛秸稈與腐殖質土壤樣品中篩選到1株纖維素酶活性高的芽孢桿菌屬菌株NP29,該菌株在37℃、pH值7.0的條件下,發(fā)酵36 h后纖維素酶活性可達1.8 U/ml。孫宏等[5]采用Plackett-Burman設計研究8種培養(yǎng)因素對Z-4菌體生長的影響,經最陡爬坡試驗和中心組合設計得到最佳培養(yǎng)條件,相應條件下Z-4細胞干質量濃度的最大值為5.39 g/l,較優(yōu)化前提高23.48%。孟婷等[6]以水牛瘤胃內容物及糞便為材料,用羧甲基纖維素平板初篩及剛果紅染色法復篩,篩選出1株高產纖維素酶的革蘭氏陽性芽孢桿菌菌株CP-10;在1.0%麩皮、1.0%蛋白胨、初始pH值6.0、37℃的條件下,其產酶量最高,能夠在6 h內崩解濾紙,羧甲基纖維素酶活(CMCase)可達16.8 U/ml。

本實驗室在前期工作中得到1株高產纖維素酶解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)菌株Tu-115,并對其最適產纖維素酶固體發(fā)酵條件進行了研究[7],在最優(yōu)發(fā)酵條件下,CMC酶和濾紙酶活力分別可達73.35 IU/g和64.06 IU/g。本研究以濾紙酶活力為指標,通過單因素和正交試驗相結合的方法,考察培養(yǎng)基中碳源、氮源、起始pH值、裝瓶量、溫度、接種量、發(fā)酵時間等發(fā)酵條件對產酶能力的影響,對Tu-115菌株產纖維素酶液體發(fā)酵條件進行優(yōu)化,以獲得最優(yōu)的液體發(fā)酵條件,為利用該菌株工業(yè)化生產纖維素酶奠定基礎。

1 材料和方法

1.1 試驗材料

1.1.1 試驗儀器

ZHWY-2112B型雙層搖床,上海智誠分析儀器有限公司;GL-20G-II型高速冷凍離心機,上海安亭試驗儀器總廠;MLS-3020型高壓滅菌鍋,SANYO公司;AIR TECH超凈工作臺,蘇凈集團安泰公司制造廠;DH5000AB電熱恒溫培養(yǎng)箱,寧波海曙賽征試驗儀器廠;Adventurer電子天平,OHAUS USA;722-E型可見分光光度計,上海光譜儀器有限公司。

1.1.2 試驗菌株

Tu-115菌株,由河北農業(yè)大學生命科學院制藥工程系提供。

1.1.3 培養(yǎng)基及試劑

Mandel′s無機鹽營養(yǎng)液、DNS試劑制備方法參照尚偉等(2012)[7]。

芽孢桿菌種子培養(yǎng)基:蛋白胨2 g、蔗糖2 g、Man?del′s無機鹽營養(yǎng)液100 ml,自然pH值。

1.2 試驗方法

1.2.1 Tu-115菌株產纖維素酶活性的測定

采用3,5-二硝基水楊酸比色法(DNS法)測定纖維素酶的濾紙酶活力。

葡萄糖濃度標準曲線的繪制方法參照尚偉等(2012)[7]。

搖床發(fā)酵培養(yǎng)后,取下錐形瓶后取1 ml發(fā)酵液加入EP管中,12 000 r/min離心5 min,取上清液作為測定酶比活力用。測定方法參照尚偉等(2012)[7]。

每1 min催化濾紙水解生成1 μg葡萄糖的酶量為1個濾紙酶活力單位(U)。

1.2.2 Tu-115菌株種子液培養(yǎng)

將菌種用5 ml無菌蒸餾水從1支斜面培養(yǎng)基上沖洗下來,接種于裝有種子培養(yǎng)基的三角瓶中,裝瓶量為100 ml/250 ml。于180 r/min、37℃,搖床培養(yǎng)12 h后使用。

1.2.3 Tu-115菌株產纖維素酶的培養(yǎng)基組成及條件研究

每個試驗均設3個平行,最后取平均值。

1.2.3.1 碳源對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

分別以葡萄糖、麩皮、蔗糖、淀粉、羧甲基纖維素鈉、玉米粉作為碳源,含量均為2.0 g;2.0 g蛋白胨為氮源;100 ml Mandel′s無機鹽營養(yǎng)液,配制成6種不同碳源的發(fā)酵培養(yǎng)基。Tu-115菌株種子液培養(yǎng)12 h后,將2.0 ml種子液轉入發(fā)酵培養(yǎng)基中,30℃條件下培養(yǎng)24 h,而后進行OD值測定。

1.2.3.2 氮源對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

根據上述試驗確定碳源種類,稱取2.0 g。分別以尿素、NH4Cl、(NH4)2SO4、KNO3、NH4NO3、蛋白胨、酵母膏和黃豆餅粉作為氮源,加入0.2 g。加入100 ml Mandel′s營養(yǎng)液,配制成8種不同的發(fā)酵培養(yǎng)基。Tu-115菌株種子液培養(yǎng)12 h后,將2.0 ml種子液轉入發(fā)酵培養(yǎng)基中,30℃條件下培養(yǎng)24 h,而后進行OD值測定。

1.2.3.3 Tu-115菌株產纖維素酶發(fā)酵培養(yǎng)基組成正交試驗

根據上述試驗結果,稱取碳源、氮源,用磷酸緩沖液調節(jié)Mandel′s營養(yǎng)液pH值,之后取100 ml營養(yǎng)液加入。Tu-115菌株種子液培養(yǎng)12 h后,將2.0 ml種子液轉入發(fā)酵培養(yǎng)基中,30℃條件下培養(yǎng)24 h,而后進行OD值測定。利用L9(34)正交表設計試驗進行發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化。

1.2.3.4 裝瓶量對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

根據上述試驗結果,按50、75、100、125 ml分別加入在250 ml的三角瓶按優(yōu)化出的培養(yǎng)基成分加入各培養(yǎng)基成分和Tu-115菌株種子液。Tu-115菌株種子液培養(yǎng)12 h后,將種子液轉入發(fā)酵培養(yǎng)基中,于30℃條件下培養(yǎng)24 h,而后進行OD值測定。

1.2.3.5 溫度對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

根據上述試驗結果,稱取適量碳源、氮源,加入100 ml Mandel′s營養(yǎng)液,配制成發(fā)酵液。Tu-115菌株種子液培養(yǎng)12 h后,將適量種子液轉入發(fā)酵培養(yǎng)基中,分別在25、28、30、35、37℃溫度環(huán)境中培養(yǎng)24 h,而后進行OD值測定。

1.2.3.6 接種量對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

根據上述試驗結果,稱取適量碳源、氮源,加入100 ml Mandel′s營養(yǎng)液,配制成發(fā)酵培養(yǎng)基。Tu-115菌株種子液培養(yǎng)12 h后,分別加入種子液2.0、4.0、6.0、8.0、10.0 ml,培養(yǎng)適當時間,而后進行OD值測定。

1.2.3.7 發(fā)酵時間對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

根據上述試驗結果,稱取適量碳源、氮源,加入100 ml Mandel′s營養(yǎng)液,配制成發(fā)酵液。Tu-115菌株種子液培養(yǎng)12 h后,按最優(yōu)的體積比將種子液轉入發(fā)酵培養(yǎng)基中,在最優(yōu)的溫度下培養(yǎng),從發(fā)酵24 h開始,每隔24 h抽樣進行酶活測定,直至120 h,而后進行OD值測定。

2 結果與分析

2.1 葡萄糖濃度標準曲線的繪制及種子發(fā)酵液的酶活力測定

DNS法測定葡萄糖濃度的標準曲線,其回歸方程為y=1.393 8x,線性相關系數R=0.999 3,線性關系良好。利用DNS法測定Tu-115菌株種子液的濾紙酶活力,為(26.40±3.28)U/ml。

2.2 培養(yǎng)基組成對Tu-115菌株產纖維素酶影響的測定

2.2.1 碳源對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

碳源種類對Tu-115菌株產纖維素酶的影響見圖1。試驗結果表明,Tu-115菌株利用不同的碳源生長,產生的纖維素酶量有很大差別,以葡萄糖為碳源時產酶量最高。故選擇葡萄糖為最優(yōu)碳源。

圖1 碳源種類對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

2.2.2 氮源種類對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

氮源種類對Tu-115菌株產纖維素酶的影響見圖2。結果表明,黃豆餅粉作為氮源時,濾紙酶活力最大,且黃豆餅粉價格便宜,故以黃豆餅粉作為最適氮源。

圖2 氮源種類對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

2.2.3 Tu-115菌株產纖維素酶培養(yǎng)基組成正交試驗

對發(fā)酵培養(yǎng)基組成正交試驗結果(見表1)進行極差分析(見表2),可知各因素對產纖維素酶量的影響,從大到小依次為葡萄糖含量>黃豆餅粉含量>起始pH值,由各因素各水平的均值可知,培養(yǎng)基的最佳組成為:A2B3C2,即培養(yǎng)基的最佳組成為葡萄糖4%、黃豆餅粉3%、pH值4.0。

表1 Tu-115菌株產纖維素酶發(fā)酵培養(yǎng)基組成正交試驗方案及結果

表2 Tu-115菌株產纖維素酶發(fā)酵培養(yǎng)基組成正交試驗結果極差分析

2.2.4 裝瓶量對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

利用DNS法測定裝瓶量對Tu-115菌株產纖維素酶的影響,結果見圖3。結果表明,當裝瓶量為50 ml/250 ml時可獲得最大產酶活力。

2.2.5 溫度對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

利用DNS法測定溫度對Tu-115菌株產纖維素酶的影響,結果見圖4。結果表明,37℃時產酶活力最高。

2.2.6 接種量對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

利用DNS法測定接種量對Tu-115菌株產纖維素酶的影響,結果見圖5。結果表明,接種量為4%時,產濾紙酶活力較高。故接種量選擇4%。

圖3 裝瓶量對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

圖4 溫度對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

圖5 接種量對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

2.2.7 發(fā)酵時間對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

利用DNS法測定發(fā)酵時間對Tu-115菌株產纖維素酶的影響,結果見圖6。結果表明,發(fā)酵72 h產酶活力最高,因此以72 h作為最適發(fā)酵時間。

圖6 發(fā)酵時間對Tu-115菌株產纖維素酶的影響

3 結論與討論

對解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)菌株Tu-115的液體發(fā)酵培養(yǎng)條件進行了優(yōu)化,當培養(yǎng)條件為葡萄糖4%、豆餅粉3%、接種量4%,培養(yǎng)基起始pH值4.0、接種量4%、裝瓶量50 ml/250 ml,37℃發(fā)酵72 h時,發(fā)酵液中濾紙酶活力達到最高值,為3 309.90 U/ml;與種子發(fā)酵液中濾紙酶活力相比,提高了125倍,Tu-115菌株發(fā)酵產濾紙酶能力大大提高。

濾紙酶活力(FPase)是指以濾紙為底物來表征的纖維素酶總活力,反映的是纖維素酶組分協(xié)同作用的總效果,即FPase越高,纖維素酶總活力越高,故本研究以FPase作為評價指標可以較好地表征纖維素酶的總活力。Wang等[8]以FPase為指標,采用響應面法對Fomitopsis palustris菌株產纖維素酶能力進行優(yōu)化,在最優(yōu)條件下發(fā)酵,F.palustris菌株產FPase能力達到了較高的水平(130.45 FPU/ml),但所需時間較長(8 d)。發(fā)酵時間長主要是由于霉菌的特性決定的,且霉菌不適合大規(guī)模深層發(fā)酵生產,不利于纖維素酶生產成本的較低。雖然Tu-115菌株產FPase能力稍低,但它作為解淀粉芽孢桿菌,適合大規(guī)模深層發(fā)酵生產,有利于較低纖維素酶生產成本。

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