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鎂離子對(duì)大鼠血管平滑肌細(xì)胞鈣化的影響*

2014-02-28 08:54白亞玲徐金升馮偉勛張俊霞崔立文張慧然張勝雷
天津醫(yī)藥 2014年5期
關(guān)鍵詞:貼壁染色結(jié)節(jié)

白亞玲 徐金升 馮偉勛 張俊霞 崔立文 張慧然 張勝雷

慢性腎臟?。╟hronic kidney disease,CKD)在我 國的患病率高達(dá)10.8%[1],心血管疾病(cardiovascu? lar disease,CVD)是CKD患者主要的并發(fā)癥之一,并且呈逐年進(jìn)展的趨勢。近年來研究發(fā)現(xiàn)血管鈣化在CKD患者中非常普遍,亦是CVD發(fā)生的獨(dú)立危險(xiǎn)因素[2]。Kanbay等[3]研究發(fā)現(xiàn)40%~70%的透析患者可發(fā)生冠狀動(dòng)脈鈣化,且CKD患者比一般人群更容易發(fā)生血管鈣化?,F(xiàn)大多數(shù)學(xué)者普遍認(rèn)為CKD患者的血管鈣化發(fā)病的中心環(huán)節(jié)為血管平滑肌細(xì)胞向成骨/成軟骨樣表型轉(zhuǎn)化[4],而磷在其中起著關(guān)鍵性的作用,同時(shí)還包含許多其他復(fù)雜因素,但具體機(jī)制還未完全闡明,對(duì)血管鈣化也缺乏行之有效的治療手段。有研究顯示鎂可能作為磷的結(jié)合劑,降低血磷水平,從而抑制血管鈣化[5]。本研究旨在探討增加鎂離子的濃度是否對(duì)血管鈣化有影響。

1 材料與方法

1.1 主要試劑和儀器 兔抗鼠平滑肌肌動(dòng)蛋白單克隆抗體購自北京博奧森生物有限公司,酶標(biāo)儀(HT2型)購自奧地利Anthos公司,倒置相差顯微鏡(LH50A型,OLYMPUS),胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購自美國Hyclone公司,DMEM培養(yǎng)基購自美國GIBCO公司,鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化物酶連結(jié)(SP)免疫組化試劑盒購自上海博海生物工程,二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色試劑盒購自中山金橋股份有限公司,噻唑藍(lán)(MTT)試劑購自北京索萊寶科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 實(shí)驗(yàn)分組 原代培養(yǎng)獲取大鼠血管平滑肌細(xì)胞(VSMCs),進(jìn)行形態(tài)學(xué)及免疫細(xì)胞鑒定,后采用完全隨機(jī)法將VSMCs分為陰性對(duì)照組、高磷組、鎂干預(yù)組。陰性對(duì)照組采用含10%胎牛血清培養(yǎng),高磷組采用高磷培養(yǎng)基(含10 mmol/L β-甘油磷酸)培養(yǎng),鎂干預(yù)組在高磷培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上分別加入不同濃度的氯化鎂,使鎂離子的終濃度分別為1 mmol/L(鎂干預(yù)組1)、2 mmol/L(鎂干預(yù)組2)和3 mmol/L(鎂干預(yù)組3),共刺激7 d。

1.2.2 細(xì)胞鑒定 參照文獻(xiàn)[2]進(jìn)行細(xì)胞鑒定。形態(tài)學(xué)觀察:應(yīng)用倒置相差顯微鏡觀察細(xì)胞大小、形態(tài)、生長特點(diǎn)及排列方式等。免疫細(xì)胞化學(xué)染色:6孔板內(nèi)用消毒的蓋玻片制作細(xì)胞爬片,待細(xì)胞貼壁生長至60%~70%時(shí),棄去培養(yǎng)基,用免疫細(xì)胞化學(xué)方法鑒定平滑肌細(xì)胞特異性抗體a-SMA ac?tin。DAB顯色,蘇木素輕度復(fù)染,經(jīng)分化,脫水,透明,封片,在顯微鏡下觀察。

1.2.3 鈣化檢測 (1)茜素紅染色[6-7]:取生長至4~5代的細(xì)胞以5×104個(gè)/孔密度接種于6孔板內(nèi),刺激7 d,茜素紅進(jìn)行鈣化染色,倒置顯微鏡下觀察照相。鈣鹽沉積為橘紅色。(2)細(xì)胞內(nèi)鈣含量測定[8]:取4~5代細(xì)胞以2×105/孔密度接種于6孔板,干預(yù)7 d,細(xì)胞用鹽酸脫鈣取上清,鈣定量檢測試劑盒測定鈣含量,脫鈣后的細(xì)胞用0.1 mol/L NaOH和0.1%的十二烷基硫酸鈉(SDS)溶解30 min,二辛可酸(BCA)法測定細(xì)胞蛋白含量,結(jié)果用細(xì)胞鈣含量比蛋白含量表示(μg/mg蛋白)。實(shí)驗(yàn)每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔。(3)堿性磷酸酶(ALP)活性測定[7]:取4~5代細(xì)胞以2×105個(gè)/孔密度接種于6孔板,干預(yù)7 d,棄去培養(yǎng)液,用PBS洗滌細(xì)胞3次,每孔加入500 μL 0.1% Triton X-100置4℃環(huán)境中約12~24 h,然后反復(fù)吹打裂解細(xì)胞后置于離心管中離心,按化學(xué)發(fā)光法檢測ALP活性。

1.2.4 反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)檢測細(xì)胞內(nèi)核心結(jié)合因子α1(Cbfα1)mRNA的表達(dá) 細(xì)胞總RNA提取采用Trizol一步法。引物序列由primer 5.0軟件設(shè)計(jì)。Cbfα1上游引物5′-CCGCACGACAACCGCACCAT-3′,下游引物5′-CGCTCC?GGCCCACAAATCTC-3′;GAPDH上游引物5′-CAAGGT?CATCCATGACAACTTTG-3′,下游引 物 5′-GTCCAC?CACCCTGTTGCTGTAG-3′。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,以GAPDH作為內(nèi)對(duì)照,計(jì)算相對(duì)含量。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 13.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,2組間均數(shù)比較采用t檢驗(yàn),多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析,組間多重比較行SNK-q檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 VSMCs原代培養(yǎng) 大鼠胸主動(dòng)脈組織塊貼壁3~4 d后可見細(xì)胞從組織塊邊緣爬出,細(xì)胞為長梭形,呈束狀排列,5~6 d成同心圓狀細(xì)胞團(tuán),形成明顯的細(xì)胞生長暈,并圍繞組織塊邊緣呈束狀向外呈放射狀延伸,約6~7 d后融合成片,細(xì)胞可達(dá)亞融合狀態(tài),呈接觸抑制狀態(tài),此時(shí)可傳代。細(xì)胞傳代后,未貼壁時(shí)細(xì)胞呈橢圓形,不透明,4~6 h后開始貼壁,貼壁后的細(xì)胞逐漸伸展,星形或不規(guī)則形,以梭形為主,細(xì)胞核呈卵圓形,透明度增加,相互重疊生長,呈典型的“峰-谷”樣表現(xiàn),見圖1。

Figure 1 Primary culture of VSMCs(×100)圖1 VSMCs原代培養(yǎng)(×100)

2.2 VSMCs細(xì)胞鑒定 HE染色及瑞氏-姬姆薩染色可見細(xì)胞呈梭形,胞漿豐富,核大而圓或橢圓。免疫細(xì)胞化學(xué)染色可見細(xì)胞胞漿表達(dá)強(qiáng)陽性,免疫反應(yīng)產(chǎn)物呈棕黃色,見圖2。傳代純化,細(xì)胞生長特性未見異常改變。

2.3 鈣化檢測

2.3.1 茜素紅染色結(jié)果 與陰性對(duì)照組比較,高磷組及鎂干預(yù)組的VSMCs鈣化染色均加重。與高磷組比較,鎂干預(yù)組隨著鎂離子濃度增大鈣化結(jié)節(jié)染色逐漸降低,鎂干預(yù)組2開始出現(xiàn)鈣化結(jié)節(jié)縮小,并呈一定濃度依賴性,鎂干預(yù)組3鈣化結(jié)節(jié)達(dá)最小,見圖3。

Figure 2 The identification of VSMCs圖2VSMCs細(xì)胞鑒定

Figure 3 Alizarin red staining of VSMCs(×100)圖3 茜素紅染色(×100)

2.3.2 不同濃度鎂離子對(duì)VSMCs中鈣含量的影響 與陰性對(duì)照組相比,高磷組及鎂干預(yù)組刺激VSMCs后,鈣含量均顯著增加。鎂干預(yù)組隨著鎂離子濃度增大鈣含量逐漸降低,除鎂干預(yù)組1與高磷組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義外,鎂干預(yù)組2和鎂干預(yù)組3均低于高磷組(均P<0.05),見圖4。

2.3.3 不同濃度鎂離子對(duì)VSMCs ALP的影響 除鎂干預(yù)組3 VSMCs ALP水平與陰性對(duì)照組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義外,其余組均高于陰性對(duì)照組(均P<0.05)。鎂干預(yù)組隨鎂離子濃度增大ALP活性逐漸降低,且均低于高磷組(均P<0.05),見圖5。

Figure 4 Comparison of the calcium content between different groups圖4 各組VSMCs鈣含量的比較

Figure 5 Comparison of ALP levels between different groups圖5 各組VSMCs ALP水平的比較

2.4 不同濃度鎂離子對(duì)VSMCs中Cbfα1 mRNA表達(dá)的影響 見圖6。除鎂干預(yù)組3 VSMCs中Cbfα1 mRNA的表達(dá)與陰性對(duì)照組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義外,其余組均高于陰性對(duì)照組(均P<0.05)。鎂干預(yù)組隨著鎂離子濃度增大Cbfα1 mRNA的表達(dá)水平逐漸降低,且均明顯低于高磷組(均P<0.05)。

Figure 6 Expressions of Cbfa1 in VSMCs detected by RT-PCR圖6RT-PCR檢測VSMCs中Cbfα1的表達(dá)

3 討論

近年研究發(fā)現(xiàn)CKD患者的低鎂血癥與血管鈣化和CVD死亡率相關(guān)[3],而血管鈣化又是心血管疾病的重要環(huán)節(jié)。在CKD患者中血管鈣化有其特殊性,主要表現(xiàn)為中膜鈣化,位于血管中膜的VSMCs在CKD患者血管鈣化中起著關(guān)鍵作用[9]。Ishimura等[10]研究發(fā)現(xiàn)血清鎂在一定范圍內(nèi)與血管鈣化負(fù)相關(guān),血鎂濃度與透析患者生存率呈正相關(guān)。

VSMCs的成骨樣表型轉(zhuǎn)化是血管鈣化的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ),本研究通過使用含有10 mmol/L β-甘油磷酸鈉的培養(yǎng)基誘導(dǎo)大鼠VSMCs發(fā)生成骨樣轉(zhuǎn)分化和鈣化。茜素紅礦化結(jié)節(jié)染色發(fā)現(xiàn),高磷組及鎂干預(yù)組VSMCs鈣化染色較陰性對(duì)照組均加重,但鎂干預(yù)組隨著鎂離子濃度的增加鈣化結(jié)節(jié)逐漸變小,鎂離子濃度為2 mmol/L開始出現(xiàn)鈣化結(jié)節(jié)縮小,3 mmol/L鈣化結(jié)節(jié)達(dá)最小。鈣含量檢測結(jié)果與鈣化染色結(jié)果基本一致,二者均提示鎂離子可以抑制高磷誘導(dǎo)的鈣化,并呈現(xiàn)一定的濃度依賴性,這與Figueiredo等[11]的研究結(jié)果相似。ALP是成骨細(xì)胞形成的早期標(biāo)志物,在正常VSMCs中的表達(dá)水平較低,在鈣化的血管和心臟瓣膜組織中的表達(dá)水平明顯增高[12]。本研究發(fā)現(xiàn),與高磷組比較,鎂干預(yù)組隨著鎂離子濃度的增大ALP活性逐漸降低,且呈一定的濃度依賴性,進(jìn)一步驗(yàn)證了鎂離子具有抑制VSMCs轉(zhuǎn)分化和鈣化的作用。

Cbfα1是成骨樣細(xì)胞表型轉(zhuǎn)化的的特異性因子,是骨形成過程中的主要調(diào)節(jié)因子,其也可在發(fā)生鈣化的VSMCs中表達(dá)[12]。Cbfα1在ALP的表達(dá)調(diào)節(jié)中起著重要作用,同時(shí)也是成骨樣轉(zhuǎn)分化的分子標(biāo)志物[13]。Byon等[14]研究發(fā)現(xiàn)VSMCs在雙氧水刺激下,其Cbfα1的表達(dá)與ALP活性的變化有緊密關(guān)系。本研究結(jié)果顯示,鎂離子可抑制VSMCs中Cbfα 1 mRNA的表達(dá),且隨著鎂離子濃度增大,Cbfα1 mRNA的表達(dá)水平逐漸降低。綜合本研究結(jié)果,并結(jié)合相關(guān)文獻(xiàn),筆者推測鎂離子對(duì)VSMCs的鈣化抑制作用可能是通過降低VSMCs中Cbfα1的表達(dá)來實(shí)現(xiàn)的。VSMCs中Cbfα1表達(dá)降低后,又通過其下游某一信號(hào)通路而致使ALP活性下降,進(jìn)一步抑制血管鈣化的發(fā)生,但二者之間的具體作用機(jī)制尚待進(jìn)一步研究。

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