劉威,李環(huán),鄒大陽(yáng),楊展,趙向娜,李雪蓮,崔茜,王思淼,黃思妺,閆夏貝,魏曉,王雪松,尹志濤,黃留玉,袁靜
軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院 疾病預(yù)防控制所,北京 100071
據(jù)統(tǒng)計(jì),在世界各國(guó)多種類細(xì)菌性食物中毒中,沙門(mén)菌引起的食物中毒常列榜首[1-3]。過(guò)去的一個(gè)世紀(jì),中國(guó)作為一個(gè)主要的食品生產(chǎn)商和消費(fèi)者,人均消費(fèi)的食物大幅增加。根據(jù)食源性疾病暴發(fā)的報(bào)告,1992~2005年,在細(xì)菌性食源性疾病暴發(fā)中沙門(mén)菌病是第二大原因,每年約10%~20%的暴發(fā)是由沙門(mén)菌引起的[4]。食源性沙門(mén)菌常導(dǎo)致腹瀉,更好地控制沙門(mén)菌感染需要敏感和快速的檢測(cè)方法。雖然傳統(tǒng)的分離培養(yǎng)沙門(mén)菌的方法仍被廣泛使用,但所需檢測(cè)時(shí)間超過(guò)3 d[5-6]。以PCR為基礎(chǔ)的快速檢測(cè)沙門(mén)菌的分子技術(shù)已經(jīng)建立[7]。但PCR鑒定有幾個(gè)固有的缺點(diǎn),如對(duì)試驗(yàn)條件要求較高,需要昂貴的儀器設(shè)備和專業(yè)人員,且操作相對(duì)復(fù)雜,更為重要的是檢測(cè)成本高,只有專業(yè)檢測(cè)實(shí)驗(yàn)室才能進(jìn)行,基層單位難以開(kāi)展。因此,開(kāi)發(fā)一種操作簡(jiǎn)便、特異性高、靈敏度好、檢測(cè)快速、成本低廉、適于基層推廣的檢測(cè)方法,對(duì)沙門(mén)菌的監(jiān)控將起到積極作用。最近發(fā)展的環(huán)介導(dǎo)等溫核酸擴(kuò)增技術(shù)(loop-mediated isother?mal amplification,LAMP)是一種新的分子生物學(xué)方法,它在等溫條件下實(shí)現(xiàn)核酸擴(kuò)增[8-9]。LAMP技術(shù)的反應(yīng)原理是,根據(jù)序列保守區(qū)域設(shè)計(jì)的一對(duì)外引物、一對(duì)內(nèi)引物和一對(duì)環(huán)引物特異性識(shí)別靶序列上的6個(gè)獨(dú)立區(qū)域,在Bst大片段聚合酶的作用下引起自循環(huán)鏈置換反應(yīng),在60~65℃范圍60 min內(nèi)大量合成目標(biāo)DNA,同時(shí)伴隨副產(chǎn)物——白色的焦磷酸鎂沉淀產(chǎn)生。由于LAMP擴(kuò)增過(guò)程依賴識(shí)別靶序列6個(gè)獨(dú)立區(qū)域,所以反應(yīng)特異性很強(qiáng),且核酸擴(kuò)增過(guò)程在等溫條件下進(jìn)行,普通水浴鍋或有穩(wěn)定熱源的設(shè)備即可滿足反應(yīng)要求,檢測(cè)成本大大降低。目前,LAMP技術(shù)在臨床診斷[10]、細(xì)菌或病毒的定性和定量檢測(cè)[1,11-15]、性別鑒定[16]和其他方面得到廣泛應(yīng)用。已有研究結(jié)果表明,invA基因是沙門(mén)菌獨(dú)有的基因,也是PCR檢測(cè)沙門(mén)菌的一個(gè)目標(biāo)基因[17]。因此,我們選擇invA基因作為L(zhǎng)AMP法檢測(cè)沙門(mén)菌的目標(biāo)基因,擬以LAMP法為基礎(chǔ)對(duì)糞便樣本中的沙門(mén)菌進(jìn)行檢測(cè)。
實(shí)驗(yàn)用菌種見(jiàn)表1,各菌株在腦心浸液肉湯(BHI)中于37℃培養(yǎng);Bst大片段DNA聚合酶(New England Biolabs公司);總DNA提取純化試劑盒(Promega公司);dNTP(Pharmacia公司);Chelex-100、甜菜堿(Sigma公司);硫酸鎂、氯化鉀、氫氧化鈉、EDTA、硫酸銨(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);Tris-HCl(上海生科生物科技有限公司);Triton X-100(北京美萊博醫(yī)學(xué)科技有限公司);NP-40(FLU?KA公司);羥基萘酚藍(lán)(HNB)(Regal Biotechnology公司);2×Tap MIX(天根生化科技(北京)有限公司);瓊脂糖(AMRESCO公司);引物由北京奧科鼎盛生物有限公司合成。
PCR擴(kuò)增儀,凝膠成像系統(tǒng)(Bio-Rad公司);分光光度計(jì)(NanoDrop ND-1000);實(shí)時(shí)濁度儀LA-320c(日本榮研化學(xué)株式會(huì)社);等溫金屬浴(杭州博日科技有限公司)。
將細(xì)菌分別接種于5 mL對(duì)應(yīng)的培養(yǎng)基中,按照細(xì)菌最適宜生長(zhǎng)溫度培養(yǎng)過(guò)夜。用Chelex法提取細(xì)菌總DNA:取500 μL細(xì)菌懸液,10 000 r/min離心2 min,棄上清,加入500 μL雙蒸水,再加入等體積的 Chelex法 DNA提取液(25 mmol/L NaOH,10 mmol/L Tris-HCl,1%Triton X-100,1%NP-40,0.1 mmol/L EDTA,2%Chelex-100),于沸水中沸煮10 min,轉(zhuǎn)入4℃放置5 min,14 000 r/min離心2 min,上清液在LAMP和PCR反應(yīng)中[18]用作模板。
從NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中獲得已知的invA基因序列(NC_003197.1),用Primer Explorer v4軟件(http://primerexplorer.jp/LAMP)進(jìn)一步分析序列,設(shè)計(jì)外環(huán)正向引物(F3)、外環(huán)反向引物(B3)、內(nèi)環(huán)正向引物(FIP)、內(nèi)環(huán)反向引物(BIP),額外的2個(gè)環(huán)引物(LF和LB)是為了加速放大反應(yīng)(表2)。FIP和BIP設(shè)計(jì)時(shí)添加了4個(gè)胸腺嘧啶(TTTT)。與PCR比較其敏感性和特異性,PCR引物為SM127B3和SM127F3。
表1 特異性LAMP實(shí)驗(yàn)所用菌種
表2 擴(kuò)增invA基因的LAMP引物及序列
配制25 μL LAMP反應(yīng)體系,包含20 mmol/L Tris-HCl(pH8.8)、10mmol/L KCl、10mmol/L(NH4)2SO4、0.1%Tween-20、0.8 mol/L 甜 菜 堿 、8 mmol/L MgSO4、1.4 mmol/L dNTP 和 8 U Bst DNA聚合酶。需要40 pmol引物FIP和BIP、20 pmol引物L(fēng)F和LB、5 pmol引物F3和B3。最后,添加適當(dāng)數(shù)量的DNA模板到反應(yīng)管中。反應(yīng)須在63℃恒溫浴中進(jìn)行50 min,80℃滅活5 min。
LAMP過(guò)程發(fā)生如下化學(xué)反應(yīng):
其中,Mg2P2O7即焦磷酸鎂為白色沉淀。依據(jù)此原理,日本榮研化學(xué)株式會(huì)社開(kāi)發(fā)出實(shí)時(shí)濁度儀LA-320c,每隔6 s測(cè)定反應(yīng)管的濁度并繪制曲線,判斷反應(yīng)的陰陽(yáng)性。
HNB是一種金屬離子指示劑,依賴反應(yīng)液中鎂離子的變化而呈現(xiàn)不同的顏色,陰性時(shí)為紫色,陽(yáng)性時(shí)為天藍(lán)色。使用時(shí)將HNB配制成2.4 mmol/L的反應(yīng)液[17],-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
圖1 LAMP反應(yīng)檢測(cè)8株已知非沙門(mén)菌的特異性
25 μL PCR反應(yīng)體系包含12.5 μL PCR主混合試劑(天根公司)、1 μmol/L SM127F3和SM127B3引物和相同數(shù)量的DNA模板。反應(yīng)參數(shù)為95℃預(yù)變性5 min,然后以95℃變性30 s、55.5℃退火30 s、72℃延伸30 s進(jìn)行35個(gè)循環(huán),72℃延伸10 min。取PCR產(chǎn)物5 μL,在1%含EB的瓊脂糖凝膠中電泳(120 V,35 min),用凝膠成像系統(tǒng)檢測(cè)。
選出8株已知非沙門(mén)菌和16株沙門(mén)菌分別進(jìn)行LAMP擴(kuò)增。當(dāng)反應(yīng)體系中存在沙門(mén)菌的特定基因時(shí)發(fā)生LAMP擴(kuò)增反應(yīng),產(chǎn)生大量焦磷酸鎂白色沉淀,反應(yīng)液的濁度上升,在圖中表現(xiàn)為曲線上升,可以看出只有沙門(mén)菌曲線上升,所有非沙門(mén)菌菌株LAMP反應(yīng)顯示陰性。表明這套引物具有良好的特異性。反應(yīng)前加入1.25 μL 2.4 mmol/L的HNB,只有沙門(mén)菌反應(yīng)管的顏色變成了天藍(lán)色,示為陽(yáng)性,其他菌株均為紫色,示為陰性,也說(shuō)明設(shè)計(jì)的引物具有良好的特異性。見(jiàn)圖1、2。
圖2 16株沙門(mén)菌的特異性檢測(cè)
為了確定設(shè)計(jì)的引物用于檢測(cè)沙門(mén)菌的敏感性,用基因組DNA提取試劑盒提取腸炎沙門(mén)菌的基因組DNA,1/10梯度稀釋后用于LAMP、PCR,結(jié)果見(jiàn)圖3。濁度儀檢測(cè)和HNB檢測(cè)均得到相同結(jié)果,LAMP檢測(cè)的最低限度約6.97 pg/μL,PCR檢測(cè)限度約69.7 pg/μL。
進(jìn)一步用LAMP法分析評(píng)估檢測(cè)糞便樣本的敏感性。將腸炎沙門(mén)菌DNA梯度稀釋后與糞便樣品混勻,進(jìn)行LAMP,結(jié)果見(jiàn)圖4。濁度儀檢測(cè)和HNB檢測(cè)均得到相同結(jié)果,都與純樣品有相同的靈敏度。因此,我們可以得出結(jié)論,2種檢測(cè)方法有相同的靈敏度。用相同的模板,采用PCR鑒定沒(méi)有達(dá)到我們的目標(biāo),目標(biāo)片段并不清楚(圖4C),這是因?yàn)榧S便中的雜質(zhì)影響所致。
圖3 LAMP法和PCR法的靈敏度比較
用LAMP法可以在恒溫條件下于1 h內(nèi)通過(guò)擴(kuò)增細(xì)菌的一個(gè)目標(biāo)基因來(lái)檢測(cè)細(xì)菌,大大節(jié)約了時(shí)間和勞動(dòng)力成本,已有許多采用LAMP檢測(cè)病原菌的文獻(xiàn)報(bào)道,包括大腸桿菌O157∶H7、單核細(xì)胞增多性李斯特菌、金黃色葡萄球菌、副溶血弧菌[19-21]。在本研究中,我們?cè)O(shè)計(jì)了針對(duì)沙門(mén)菌特異基因invA的LAMP引物,并用該引物靈敏、快速地檢測(cè)到沙門(mén)菌。用Chelex法提取基因組DNA,整個(gè)處理時(shí)間不超過(guò)20 min,反應(yīng)過(guò)程快捷,只須將反應(yīng)混合液在60℃~65℃恒溫條件下保持60 min即可完成?,F(xiàn)在國(guó)內(nèi)大多數(shù)研究者在檢測(cè)LAMP反應(yīng)結(jié)果時(shí)往往選擇對(duì)反應(yīng)結(jié)果進(jìn)行電泳或在反應(yīng)完成后添加SYBR GreenⅠ熒光染料,這2種方法都使反應(yīng)產(chǎn)物暴露于空氣中,污染了環(huán)境,極其容易造成假陽(yáng)性,而且電泳法檢測(cè)并不能實(shí)時(shí)反映LAMP反應(yīng)過(guò)程。我們采用實(shí)時(shí)濁度儀和HNB檢測(cè),反應(yīng)完成后不開(kāi)蓋,很好地杜絕了污染,有效防止了假陽(yáng)性。
綜上,我們應(yīng)用LAMP法對(duì)沙門(mén)菌進(jìn)行了快速檢測(cè),特異性強(qiáng),靈敏度高。LAMP法雖然擴(kuò)增原理復(fù)雜,但操作簡(jiǎn)便、用時(shí)少、靈敏度高、特異性強(qiáng),再加上其等溫反應(yīng)條件,因此適用于檢驗(yàn)檢疫部門(mén)和衛(wèi)生醫(yī)療單位對(duì)沙門(mén)菌的檢測(cè),并有望成為簡(jiǎn)易的常規(guī)檢測(cè)手段應(yīng)用于基層單位。
圖4 LAMP法和PCR法檢測(cè)糞便樣本中腸炎沙門(mén)菌的靈敏度比較A:LAMP法濁度儀檢測(cè)結(jié)果;B:LAMP法HNB顯色結(jié)果;C:PCR法檢測(cè)結(jié)果;M:D2000 DNA marker;1~8:腸炎沙門(mén)菌基因組DNA濃度 依 次 為 69.7、6.97、0.697 ng/μL 和 69.7、6.97、0.697、0.0697、0.00697 pg/μL
[1] Ohtsuka K,Yanagawa K,Takatori K,et al.Detection of Sal?monella enterica in naturally contaminated liquid eggs by loop-mediated isothermal amplification,and characterization of Salmonella isolates[J].ApplEnviron Microbiol,2005,71(11):6730-6735.
[2] Tirado C,Schmidt K.WHO surveillance programme for con?trol of foodborne infections and intoxications:preliminary re?sults and trends across greater Europe[J].J Infect,2001,43(1):80-84.
[3] Wallace D J,van Gilder T,Shallow S,et al.Incidence of foodborne illnesses reported by the foodborne diseases active surveillance network(FoodNet)-1997.FoodNet Working Group[J].J Food Prot,2000,63(6):807-809.
[4] Yan H,Li L,Alam M J,et al.Prevalence and antimicrobial resistance of Salmonella in retail foods in northern China[J].Int J Food Microbiol,2010,143:230-234.
[5] Andrews W H,June G A,Sherrod P A,et al.Salmonella[M]//FDA.Bacteriological analytical manual.8th ed.Gaithersburg:AOAC International,1998.
[6] Bennett G,Tennant B.Rapid and definitive detection of Sal?monella in foods by PCR[J].Lett Appl Microbiol,1998,26:437-441.
[7] Chiu T,Chen T,Hwang W,et al.Sequencing of an internal transcribed spacer region of 16S-23S rRNA gene and design?ing of PCR primers for the detection of Salmonella spp.in food[J].Int J Food Microbiol,2005,97:259-265.
[8] Notomi T,Okayama H,Masubuchi H,et al.Loop-mediated isothermal amplification of DNA[J].Nucleic Acids Res,2000,28(12):63.
[9] Endo S,Komori T,Ricci G,et al.Detection of gp43 of Para?coccidioides brasiliensisby the loop-mediated isothermal ampli?fication(LAMP) method[J].FEMS Microbiol Lett,2004,234(1):93-97.
[10]Okafuji T,Yoshida N,Fujino M,et al.Rapid diagnostic meth?od for detection of mumps virus genome by loop-mediated iso?thermalamplification[J].J Clin Microbiol,2005,43(4):1625-1631.
[11]Imai M,Ninomiya A,Minekawa H,et al.Development of H5-RT-LAMP(loop-mediated isothermal amplification) system for rapid diagnosis of H5 avian influenza virus infection[J].Vac?cine,2006,24(44):6679-6682.
[12]Yeh H Y,Shoemaker C A,Klesius P H,et al.Evaluation of a loop-mediated isothermal amplification method for rapid de?tection of channel fish Ictalurus punctatus important bacterial pathogen Edwar dsiella ictaluri[J].J Microbiol Methods,2005,63:36-44.
[13]Hara-Kudo Y,Yoshino M,Kojima T,et al.Loop-mediated isothermal amplification for the rapid detection of Salmonella[J].FEMS Microbiol Lett,2005,253:155-161.
[14]Song T,Toma C,Nakasone N,et al.Sensitive and rapid de?tection of Shigella and enteroinvasive Escherichia coli by a loop-mediated isothermal amplification method[J].FEMS Micro?biol Lett,2005,243:259-263.
[15]Hirayama H,Kageyama S,Takahashi Y,et al.Rapid sexing of water buffalo(Bubalus bubalis) embryos using loop-mediat?ed isothermalamplification[J].Theriogenology,2006,66:1249-1256.
[16]Nagamine K,Watanabe K,Ohtsuka K,et al.Loop-mediated isothermal amplification reaction using a nondenatured template[J].Clin Chem,2001,47:1742-1743.
[17]Yeh K,Chen T,Liao C,et al.PCR amplification of the Sal?monella typhimurium fimY gene sequence to detect the Salmo?nella species[J].Int J Food Microbiol,2002,78:227-234.
[18]Goto M,Honda E,Ogura A,et al.Colorimetric detection of loop-mediated isothermal amplification reaction by using hy?droxy naphthol blue[J].Biotechniques,2009,46(3):167-172.
[19]Siyi C,Beilei G.Development of a toxR-based loop-mediated isothermal amplification assay for detecting Vibrio parahaemo?lyticus[J].BMC Microbiology,2010,10:41.
[20]Wang L,Li L,Alam M J,et al.Loop-mediated isothermal amplification method for rapid detection of the toxic dinoflagel?late Alexandrium,which causes algal blooms and poisoning of shellfish[J].FEMS Microbiol Lett,2008,282:15-21.
[21]李永剛,王德國(guó),武建剛,等.環(huán)介導(dǎo)恒溫?cái)U(kuò)增法(LAMP)檢測(cè)金黃色葡萄球菌[J].食品工業(yè)科技,2010,1:388-391.