李 霞 徐桂芳 張偉杰 周志華 郭 明 鄒曉平
南京大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬鼓樓醫(yī)院消化內(nèi)科1(210008) 急診外科2解放軍第101醫(yī)院病理科3 南京中醫(yī)藥大學(xué)4
腫瘤干細(xì)胞(cancer stem cells, CSCs)是指一類存在于腫瘤內(nèi)部,具有自我更新和腫瘤形成能力的細(xì)胞,可進(jìn)一步“分化”形成腫瘤細(xì)胞,是腫瘤增殖生長(zhǎng)、侵襲、轉(zhuǎn)移、復(fù)發(fā)以及化療耐藥的根源[1],CSCs已成為當(dāng)前腫瘤研究的熱點(diǎn)之一。胃癌干細(xì)胞(gastric cancer stem cells, GCSCs)于近年在胃癌細(xì)胞株、原發(fā)腫瘤組織和患者外周血中被鑒定,表面標(biāo)記物CD44可作為識(shí)別GCSCs的標(biāo)記[2-3],其他干細(xì)胞標(biāo)記物如CD54以及胃壁細(xì)胞標(biāo)記物H+/K+-ATPase亦被用于識(shí)別GCSCs[3-4]。然而迄今為止,GCSCs的特性尚未得到很好的研究。本實(shí)驗(yàn)采用懸浮培養(yǎng)法從人胃癌細(xì)胞株中分離GCSCs樣細(xì)胞,以CD44、CD54和H+/K+-ATPase免疫熒光標(biāo)記進(jìn)行鑒定,并觀察GCSCs富集的腫瘤球的自我更新和增殖、遷移、侵襲能力以及對(duì)順鉑的耐藥性,旨在加深對(duì)GCSCs干細(xì)胞特性的認(rèn)識(shí),為其“干性”研究提供新的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
人胃癌細(xì)胞株MKN45、MGC803、SGC7901由南京市鼓樓醫(yī)院消化內(nèi)科實(shí)驗(yàn)室保存。RPMI 1640培養(yǎng)基、DMEM/F-12培養(yǎng)基、FBS(Wisent Inc.),表皮生長(zhǎng)因子(EGF)、堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(bFGF)(PeproTech),CD44、CD54、H+/K+-ATPase抗體(Merck Millipore),DyLight 488 AffiniPure綠色熒光二 抗(Abbkine, Inc.),Transwell小室(Corning Costar?),CCK-8試劑盒(Dojindo Molecular Technol-ogies, Inc.),順鉑(南京市鼓樓醫(yī)院)。
1. 胃癌細(xì)胞和腫瘤球培養(yǎng):MKN45、MGC803、SGC7901細(xì)胞常規(guī)使用含10% FBS的RPMI 1640培養(yǎng)基,于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。分別將2×105MKN45、MGC803、SGC7901細(xì)胞懸浮培養(yǎng)于干細(xì)胞培養(yǎng)基(含20 μg/L EGF、10 μg/L bFGF、不含血清的DMEM/F-12培養(yǎng)基)中,每5 d機(jī)械分離一次培養(yǎng)形成的腫瘤球以除去球中心凋亡細(xì)胞,即將腫瘤球離心并轉(zhuǎn)移至含10% FBS的RPMI 1640培養(yǎng)基中貼壁培養(yǎng)3 h,然后再次懸浮培養(yǎng)于無(wú)血清培養(yǎng)基中,由此得到第二代、第三代懸浮的腫瘤球。以下各步驟實(shí)驗(yàn)均使用對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期胃癌細(xì)胞,各實(shí)驗(yàn)步驟均設(shè)3個(gè)復(fù)孔或重復(fù)3次,結(jié)果取均值。
2. 集落形成實(shí)驗(yàn):取胃癌細(xì)胞及其第三代貼壁后腫瘤球,含0.02% EDTA的0.25%胰蛋白酶消化,制成單細(xì)胞懸液,以200/孔接種于加入適量含10% FBS的RPMI 1640培養(yǎng)基的6孔板中,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)靜置培養(yǎng)2周,結(jié)晶紫染色,計(jì)數(shù)超過50個(gè)細(xì)胞的克隆集落。
3. 免疫熒光法檢測(cè)GCSCs標(biāo)記物:取胃癌細(xì)胞及其第三代貼壁后腫瘤球,EDTA-胰蛋白酶消化,制成5×104/mL單細(xì)胞懸液,接種于加入適量含10% FBS的RPMI 1640培養(yǎng)基的24孔板中,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)靜置培養(yǎng)過夜以誘導(dǎo)分化。次日取出細(xì)胞至室溫,吸棄培養(yǎng)基,PBS洗滌3次,4%多聚甲醛室溫固定15 min,PBS洗滌,10%山羊血清封閉1 h,分別標(biāo)記兔抗人CD44(1∶100)、鼠抗人CD54(1∶100)、山羊抗人H+/K+-ATPase(1∶200)抗體,4 ℃過夜,加入二抗(DyLight 488標(biāo)記的山羊抗兔、山羊抗鼠、兔抗山羊IgG,1∶50),室溫孵育1 h,DAPI標(biāo)記細(xì)胞核,熒光顯微鏡下觀察。
4. 細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn):以Marker筆在6孔板背后借助直尺均勻劃?rùn)M線,每隔0.5~1 cm一道,橫穿過孔,每孔至少穿過5條橫線。取胃癌細(xì)胞及其第三代貼壁后腫瘤球,EDTA-胰蛋白酶消化,制成單細(xì)胞懸液,每孔加入約5×105個(gè)細(xì)胞,次日以100 μL槍頭借助直尺盡量垂直于背后橫線劃痕,PBS洗滌3次以除去劃下的細(xì)胞,加入含1%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),分別于0 h、24 h時(shí)取樣、拍照。
5. 細(xì)胞侵襲實(shí)驗(yàn):于Transwell小室上室面涂布Matrigel基質(zhì)膠。取胃癌細(xì)胞及其第三代貼壁后腫瘤球,EDTA-胰蛋白酶消化,以無(wú)血清RPMI 1640培養(yǎng)基制成1×105/mL單細(xì)胞懸液,于上室中加入200 μL懸液,下室中加人600 μL含10% FBS的RPMI 1640培養(yǎng)基,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)24 h。取出小室,以棉簽拭去上室面未侵襲細(xì)胞,PBS洗滌,結(jié)晶紫染色10 min,清洗風(fēng)干,光學(xué)顯微鏡下觀察、計(jì)數(shù)膜背面侵襲細(xì)胞(穿膜細(xì)胞),計(jì)數(shù)中央和四周共5個(gè)視野(×400),結(jié)果取均值。
6. CCK-8實(shí)驗(yàn):取SGC7901細(xì)胞及其第三代貼壁后腫瘤球,EDTA-胰蛋白酶消化,制成單細(xì)胞懸液,以5 000/孔接種于96孔板,每孔100 μL,24 h細(xì)胞貼壁后實(shí)驗(yàn)組每孔加入100 μL順鉑溶液,終濃度分別為0.01、0.1、1、10、100 μg/mL,對(duì)照組加入100 μL培養(yǎng)基,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。各組細(xì)胞培養(yǎng)不同時(shí)間后自培養(yǎng)箱中取出,每孔加入CCK-8 10 μL,孵育1 h,使用酶標(biāo)儀測(cè)定450 nm波長(zhǎng)處吸光度(A)值。細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率= (A對(duì)照組-A實(shí)驗(yàn)組)/(A對(duì)照組-A空白組)×100%。
于無(wú)血清培養(yǎng)基中懸浮培養(yǎng)5 d后,3株人胃癌細(xì)胞均具有形成腫瘤球體的能力,同時(shí)大部分懸浮細(xì)胞發(fā)生凋亡,形成外觀松散的第一代腫瘤球,而隨后的第二、第三代腫瘤球外觀逐漸變得致密(圖1),數(shù)量亦逐漸增多,提示GCSCs富集。集落形成實(shí)驗(yàn)顯示,腫瘤球形成的克隆集落體積和數(shù)量均大于普通胃癌細(xì)胞(圖2A、2B),表明GCSCs富集的腫瘤球克隆形成能力較普通胃癌細(xì)胞強(qiáng)。
免疫熒光法檢測(cè)顯示,與普通胃癌細(xì)胞相比,腫瘤球高表達(dá)干細(xì)胞標(biāo)記物CD44、CD54,但低表達(dá)胃壁細(xì)胞標(biāo)記物H+/K+-ATPase(圖3)。本課題組前期研究采用流式細(xì)胞術(shù)標(biāo)記CD44,亦證實(shí)分離自MKN45、SGC7901兩株人胃癌細(xì)胞的GCSCs CD44陽(yáng)性率分別為92.5%±4.8%和82.1%±8.6%,分別顯著高于相應(yīng)普通胃癌細(xì)胞(67.9%±6.5%和53.0%±3.8%)。上述結(jié)果提示GCSCs富集的腫瘤球具有多向分化潛能。
細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)顯示,在低血清條件下,普通胃癌細(xì)胞遷移速度緩慢,24 h后劃痕與0 h時(shí)相比變化不明顯,腫瘤球24 h后劃痕愈合則較明顯(圖4A),細(xì)胞遷移速度顯著大于普通胃癌細(xì)胞(圖4B)。細(xì)胞侵襲實(shí)驗(yàn)顯示,于Transwell小室上室中加入細(xì)胞數(shù)量相同的懸液,24 h后腫瘤球穿膜細(xì)胞數(shù)顯著多于普通胃癌細(xì)胞(圖5A、5B)。上述結(jié)果表明GCSCs富集的腫瘤球與普通胃癌細(xì)胞相比具有更強(qiáng)的遷移、侵襲能力。
圖1 胃癌細(xì)胞不同代腫瘤球形成(×200)
A:腫瘤球克隆形成能力較普通胃癌細(xì)胞強(qiáng)(×40);B:兩組克隆形成定量分析(*P<0.05)
圖3 胃癌細(xì)胞及其腫瘤球干細(xì)胞標(biāo)記物和胃壁細(xì)胞標(biāo)記物免疫熒光檢測(cè)(×200)
A:腫瘤球劃痕愈合速度較普通胃癌細(xì)胞快(×40);B:兩組遷移速度定量分析(*P<0.01)
CCK-8實(shí)驗(yàn)顯示,經(jīng)不同濃度順鉑干預(yù)24 h后,低濃度(0.01、0.1、1 μg/mL)順鉑處理組腫瘤球生長(zhǎng)抑制率顯著低于普通胃癌細(xì)胞,而高濃度(10、100 μg/mL)順鉑處理組細(xì)胞大部分已死亡,腫瘤球與普通胃癌細(xì)胞間生長(zhǎng)抑制率差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖6A),細(xì)胞生存率曲線顯示順鉑對(duì)腫瘤球的50%抑制濃度(IC50)明顯高于普通胃癌細(xì)胞(圖6B),表明GCSCs富集的腫瘤球與普通胃癌細(xì)胞相比更易對(duì)化療藥物產(chǎn)生耐藥。
A:腫瘤球侵襲能力較普通胃癌細(xì)胞強(qiáng)(×400);B:兩組侵襲細(xì)胞定量分析(*P<0.01)
A:不同濃度順鉑干預(yù)24 h后腫瘤球和普通胃癌細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率比較(*P<0.01);B:兩組細(xì)胞的生存率曲線
圖6SGC7901細(xì)胞及其腫瘤球?qū)樸K的耐藥性
自從Bonnet等[5]證明人類急性髓性白血病中存在CSCs以來(lái),各種證據(jù)表明在腫瘤與機(jī)體的相互作用中,腫瘤最終的進(jìn)展和轉(zhuǎn)移系由CSCs與局部微環(huán)境的相互作用所介導(dǎo)[6]。CSCs與組織干細(xì)胞有許多共同點(diǎn),如自我更新、增殖、耐藥等,并主要負(fù)責(zé)維持腫瘤生長(zhǎng)增殖[7]。開展CSCs相關(guān)研究的首要問題是分離、鑒定該類細(xì)胞,目前針對(duì)CSCs的分離方法主要有熒光激活細(xì)胞分選法(FACS)、側(cè)群細(xì)胞(SP細(xì)胞)亞群分選法和懸浮培養(yǎng)法。懸浮培養(yǎng)法早期用于干細(xì)胞的研究,近年已應(yīng)用該法在包括胃癌在內(nèi)的多種實(shí)體腫瘤中成功分離、鑒定出CSCs。本課題組前期研究[8]證實(shí),基于克隆形態(tài)的分選策略可從人胃癌細(xì)胞株AGS中分離出GCSCs克隆。本實(shí)驗(yàn)選用3株人胃癌細(xì)胞MKN45、MGC803、SGC7901,在含EGF、bFGF的無(wú)血清培養(yǎng)基中成功培養(yǎng)出懸浮的腫瘤球。該法操作簡(jiǎn)單,且可動(dòng)態(tài)觀察腫瘤球的變化。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示腫瘤球培養(yǎng)至第二、第三代后變得更為致密,數(shù)量增多,具有更強(qiáng)的自我更新能力(即在無(wú)血清培養(yǎng)條件下形成懸浮腫瘤球的能力)和增殖能力(即克隆形成能力)。
GCSCs目前仍缺乏高特異性的干細(xì)胞標(biāo)記物,其表面標(biāo)記物尚存在爭(zhēng)議??缒ぬ堑鞍證D44是公認(rèn)的前列腺癌、乳腺癌、結(jié)腸癌等多種惡性腫瘤的CSCs標(biāo)記[9],目前被用作GCSCs的標(biāo)記物亦較多見。CD54又名細(xì)胞間黏附分子-1(ICAM-1),是一個(gè)相對(duì)分子質(zhì)量為90 kDa(1 Da=0.992 1 u)的免疫球蛋白超家族成員,廣泛表達(dá)于腫瘤細(xì)胞、基質(zhì)細(xì)胞和免疫細(xì)胞。Chen等[3]從胃腺癌患者的腫瘤組織和外周血中分離得到CD44+CD54+細(xì)胞群,該細(xì)胞群可形成腫瘤球,并具有自我更新和分化能力。因此,本實(shí)驗(yàn)選用CD44和CD54作為標(biāo)記物鑒定腫瘤球中的GCSCs,同時(shí)選用胃壁細(xì)胞標(biāo)記物H+/K+-ATPase鑒定干細(xì)胞的多向分化能力,結(jié)果顯示與普通胃癌細(xì)胞相比,GCSCs富集的腫瘤球高表達(dá)CD44、CD54,低表達(dá)H+/K+-ATPase,表明其具有多向分化潛能。
上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition, EMT)是一種基本生理病理現(xiàn)象,參與了腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移過程。在EMT過程中,上皮細(xì)胞失去細(xì)胞黏附分子E-cadherin,獲得間質(zhì)標(biāo)記物如波形蛋白(VIM)以及遷移、侵襲能力[10-11]。胃癌患者骨髓組織中存在VIM mRNA表達(dá)上調(diào)并與腫瘤臨床分期、侵襲和淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān),且一些侵襲瘤內(nèi)血管的腫瘤細(xì)胞VIM蛋白呈強(qiáng)陽(yáng)性染色,證實(shí)胃癌細(xì)胞存在EMT[12]。令人感興趣的是,近年研究[13]發(fā)現(xiàn)CSCs具有EMT特性,而經(jīng)歷EMT的腫瘤細(xì)胞亦呈現(xiàn)CSCs特性,表明EMT與CSCs之間有直接聯(lián)系。已有研究[4]發(fā)現(xiàn)分離自人胃癌細(xì)胞株SGC7901的GCSCs樣細(xì)胞具有高侵襲、轉(zhuǎn)移能力并呈現(xiàn)EMT表型,本研究亦通過細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)和Transwell小室細(xì)胞侵襲實(shí)驗(yàn)證實(shí),與普通胃癌細(xì)胞相比,GCSCs富集的腫瘤球具有更強(qiáng)的遷移、侵襲能力。此種能力系通過何種途徑獲得、是否與EMT有關(guān),均有待進(jìn)一步研究。
胃癌患者對(duì)放化療易產(chǎn)生耐受,腫瘤轉(zhuǎn)移、復(fù)發(fā)率高,預(yù)后較差,究其根源與常規(guī)治療對(duì)GCSCs 的靶向性不強(qiáng)有關(guān),選擇性靶向GCSCs有望成為有效的胃癌治療手段[1]。本課題組前期研究[8]顯示GCSCs對(duì)5-氟尿嘧啶(5-Fu)的敏感性較低,表明GCSCs對(duì)化療藥物耐受可能是胃癌化療耐藥的重要機(jī)制之一。順鉑是臨床常用胃癌化療藥物,亦為胃癌體外藥敏試驗(yàn)最常選用的經(jīng)典藥物之一,胃癌細(xì)胞對(duì)順鉑產(chǎn)生耐藥是含順鉑化療方案療效降低的主要原因[14]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,順鉑對(duì)GCSCs富集的腫瘤球的IC50值明顯高于普通胃癌細(xì)胞,提示GCSCs較普通胃癌細(xì)胞更易對(duì)化療藥物產(chǎn)生耐藥,其耐藥機(jī)制有待進(jìn)一步研究。
綜上所述,應(yīng)用無(wú)血清培養(yǎng)基懸浮培養(yǎng)法能成功獲得GCSCs富集的腫瘤球;腫瘤球高表達(dá)干細(xì)胞標(biāo)記物CD44、CD54,具有較強(qiáng)的自我更新、增殖、遷移、侵襲能力和多向分化潛能,對(duì)化療藥物更易產(chǎn)生耐藥性。基于上述特點(diǎn),推測(cè)胃癌易發(fā)生侵襲、轉(zhuǎn)移以及對(duì)常規(guī)化療藥物產(chǎn)生耐藥與GCSCs有關(guān),靶向調(diào)節(jié)GCSCs的具體機(jī)制及其應(yīng)用于胃癌治療的可行性,尚待進(jìn)一步研究。
1 Scopelliti A, Cammareri P, Catalano V, et al. Therapeutic implications of Cancer Initiating Cells[J]. Expert Opin Biol Ther, 2009, 9 (8): 1005-1016.
2 Takaishi S, Okumura T, Tu S, et al. Identification of gastric cancer stem cells using the cell surface marker CD44[J]. Stem Cells, 2009, 27 (5): 1006-1020.
3 Chen T, Yang K, Yu J, et al. Identification and expansion of cancer stem cells in tumor tissues and peripheral blood derived from gastric adenocarcinoma patients[J]. Cell Res, 2012, 22 (1): 248-258.
4 Yang L, Ping YF, Yu X, et al. Gastric cancer stem-like cells possess higher capability of invasion and metastasis in association with a mesenchymal transition phenotype[J]. Cancer Lett, 2011, 310 (1): 46-52.
5 Bonnet D, Dick JE. Human acute myeloid leukemia is organized as a hierarchy that originates from a primitive hematopoietic cell[J]. Nat Med, 1997, 3 (7): 730-737.
6 Vermeulen L, De Sousa E Melo F, van der Heijden M, et al. Wnt activity defines colon cancer stem cells and is regulated by the microenvironment[J]. Nat Cell Biol, 2010, 12 (5): 468-476.
7 Vermeulen L, Sprick MR, Kemper K, et al. Cancer stem cells-old concepts, new insights[J]. Cell Death Differ, 2008, 15 (6): 947-958.
8 周志華,張建東,徐桂芳,等. 基于克隆形態(tài)分選胃癌干細(xì)胞及其對(duì)氟尿嘧啶敏感性的檢測(cè)[J]. 中華胃腸外科雜志, 2013, 16 (4): 376-380.
9 Patrawala L, Calhoun T, Schneider-Broussard R, et al. Highly purified CD44+ prostate cancer cells from xenograft human tumors are enriched in tumorigenic and metastatic progenitor cells[J]. Oncogene, 2006, 25 (12):1696-1708.
10 Yilmaz M, Christofori G. EMT, the cytoskeleton, and cancer cell invasion[J]. Cancer Metastasis Rev, 2009, 28 (1-2): 15-33.
11 Thiery JP, Acloque H, Huang RY, et al. Epithelial-mesenchymal transitions in development and disease[J]. Cell, 2009, 139 (5): 871-890.
12 Iwatsuki M, Mimori K, Fukagawa T, et al. The clinical significance of vimentin-expressing gastric cancer cells in bone marrow[J]. Ann Surg Oncol, 2010, 17 (9): 2526-2533.
13 Mani SA, Guo W, Liao MJ, et al. The epithelial-mesenchymal transition generates cells with properties of stem cells[J]. Cell, 2008, 133 (4): 704-715.
14 Chun JH, Kim HK, Lee JS, et al. Weekly irinotecan in patients with metastatic gastric cancer failing cisplatin-based chemotherapy[J]. Jpn J Clin Oncol, 2004, 34 (1): 8-13.