曹玉嬪+閆麗珍+黃紅麗+鄧必陽
摘 要 用蛋白酶K和脂肪酶作為提取劑、用超聲波輔助提取牛蒡和三七樣品中的硒形態(tài)。建立了高效液相色譜-電感耦合等離子體質譜聯(lián)用技術測定牛蒡和三七樣品中硒代胱氨酸(SeCys2)、亞硒酸鹽[Se]、硒代蛋氨酸(SeMet)和硒酸鹽[Se]的新方法。用8 mmol/L pH 5.0的檸檬酸作為流動相,在8 min內(nèi)可分離4種硒形態(tài)。利用CH4作為DRC反應氣體,可消除了40Ar40Ar+對80Se+的干擾,提高了準確度。SeCys2、Se、SeMet和Se的檢出限分別為0.088, 0.033, 0.30和0.17 ng/mL,相關系數(shù)(R2)均大于0.9995,加標回收率范圍為95.1%~114.6%,RSD<3%。將本方法應用于牛蒡和三七中硒形態(tài)分析,結果令人滿意。
關鍵詞 硒; 高效液相色譜-電感耦合等離子體質譜; 牛蒡; 三七; 超聲提取
1 引 言
硒是人體必需微量元素之一[1,2],具有清除體內(nèi)自由基、抗衰老、抗癌防癌、拮抗重金屬毒性等生物學功能[3]。許多疾病的發(fā)生與硒的攝入量偏低有關,硒的攝入量低于每日30 μg,就會出現(xiàn)衰老,易發(fā)心肌炎及其他疾病[4];攝入量高于每日耐受上限400 μg,就會導致頭發(fā)指甲易斷、皮膚粗糙、腸胃功能紊亂、易怒以及神經(jīng)功能障礙等[5]。體內(nèi)硒的適宜濃度范圍很窄[6],其生物有效性以及毒性在很大程度上取決于硒的化學形態(tài)[1,7,8]。
目前,對硒形態(tài)分析常采用液相色譜(LC)[9,10]、氣相色譜(GC)[11]、毛細管電泳(CE)[12] 等分離手段,采用電感耦合等離子體質譜 (ICP-MS)[7,10]、電感耦合等離子體原子發(fā)射光譜(ICP-AES)[1]、原子吸收光譜(AAS)[13]及原子熒光光譜(AFS)[14]等檢測手段。
牛蒡(Burdock)又名東洋參、牛鞭菜,為菊科牛蒡屬二年生草本植物[15]。牛蒡是我國傳統(tǒng)的藥食同源植物,具有疏散分熱、解毒消腫的功效。自從牛蒡子中分離得到牛蒡苷以來,牛蒡的食用和藥用價值也越來越受到人們的重視。但牛蒡中硒形態(tài)分析尚未見報道。
三七是五加科人參屬植物三七(Panax notoginseng)的根,是中國特有藥用植物,產(chǎn)于我國的西南部的云南、廣西、江西、四川、湖北等地,當?shù)孛耖g發(fā)掘使用源遠流長[16]。三七是一種常年生中藥,作為一種傳統(tǒng)中草藥已有超過600年的歷史[17]。三七有多種藥理學活性,常用于治療心血管疾病、腦血管疾病、炎癥、外傷和出血等[18~20]。目前已報道了三七中無機硒形態(tài)[21,22],但三七中有機硒形態(tài)未見報道。
電感耦合等離子體質譜 (ICP-MS) 法具有靈敏度高、線性范圍寬、多元素多同位素同時檢測、干擾少等優(yōu)點。高效液相色譜 (HPLC) 具有多種不同的分離模式,強大的分離能力和重現(xiàn)性好等優(yōu)點。HPLC與ICP-MS聯(lián)用,在靈敏度、準確度和分析速度等方面表現(xiàn)出優(yōu)勢,而且接口相對簡單,因此HPLC-ICP-MS廣泛應用于元素形態(tài)分析。超聲波輔助提取(USAE)具有提取速度快、提取效率高及操作簡便等優(yōu)點。本實驗集中了USAE、HPLC及ICP-MS的優(yōu)點,建立了USAE-HPLC-ICP-MS聯(lián)用的新方法,并用于牛蒡和三七樣品中硒形態(tài)分析。
2 實驗部分
2.1 儀器與試劑
NexIon 300X 型ICP-MS儀器(美國PerkinElmer公司)配備一個動態(tài)反應池(Dynamic Reaction Cell, DRC)系統(tǒng),樣品溶液通過Meinhard玻璃霧化器和玻璃旋流霧室引入到ICP-MS;Flexar液相色譜儀(美國PerkinElmer公司)由Flexar Binary LC Pump和Flexar solvent manager組成,配備Flexar LC Autosampler;Hamilton PRP-X100分析柱(250 mm×4.1 mm, 10 μm, 瑞士Hamilton公司), Hamilton PRP-X100 保護柱(20 mm×2.1 mm, 10 μm,瑞士Hamilton公司);色譜柱與ICP-MS霧化器用PEEK管連接;Titan MPS微波消解儀(美國PerkinElmer公司);SK3310HP超聲波清洗器(上??茖С晝x器有限公司);TG16-W微量高速離心機(湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)有限公司);DZF-300真空干燥箱(鄭州長城科工貿(mào)有限公司);Purelab Option超純水系統(tǒng)(英國ELGA公司)。
硒標準溶液(GSB G62029-90(3401),1000 μg/mL,國家鋼鐵材料測試中心鋼鐵研究總院);SeO2(AR,北京市朝陽區(qū)中聯(lián)化工試劑廠);Na2SeO4(AR,天津市化學試劑研究所);硒代胱氨酸(SeCys2,純度98%,北京百靈威公司);硒代蛋氨酸(SeMet,純度99%,美國Alfa公司);脂肪酶(AR,北京索萊寶科技有限公司);蛋白酶K(20 mg/mL,天根生化科技(北京)有限公司); HNO3、H2O2 (超純,蘇州晶瑞化學有限公司);甲烷(99.999%,大連大特氣體有限公司);檸檬酸、乙酸、氨水、磷酸二氫銨、甲酸(AR,西隴化工股份有限公司)。質譜調(diào)諧液(美國PerkinElmer公司)為Be, Mg, In, U, Ce濃度都為1 μg/L混合標準溶液。實驗用水為超純水。
2.2 實驗方法
2.2.1 總硒的測定 牛蒡和三七樣品均購于桂林市藥店。將樣品置于真空干燥箱中低溫烘干,研細混合均勻,過100目篩。稱取上述樣品0.2000 g于消解罐中,加入6 mL HNO3和1 mL H2O2,按照表1微波消解程序進行消解。消解結束后,冷卻,打開消解罐,樣品溶液轉移至25 mL容量瓶中,用超純水洗滌3次,合并洗滌液,再用超純水定容,搖勻備用。同樣方法制備試劑空白溶液。按照表2中ICP-MS條件進行測定。
2.2.2 硒形態(tài)分析方法 稱取牛蒡和三七樣品各0.5000 g于10 mL離心管中,加入2 mL超純水,1 mL 20 mg/mL蛋白酶K和10 mg脂肪酶,在超聲頻率為53 kHz和37℃水浴中超聲處理1.5 h,然后以6000 r/min離心15 min,重復提取二次,將提取液合并,用水稀至10 mL,搖勻備用。同樣方法制備試劑空白溶液。所有溶液測定前經(jīng)0.45 μm水性濾膜過濾。按照表2操作條件,進行測定。
3 結果與討論
3.1 流動相類型及濃度的選擇
考慮到應盡量采用簡單和無毒試劑作為流動相,本實驗選擇磷酸二氫銨和檸檬酸作為流動相進行考察分析。當NH4H2PO4作為流動相時,Se保留時間約30 min,并且SeMet信號強度較低。當用檸檬酸溶液作為流動相時,可實現(xiàn)4種硒形態(tài)在8 min內(nèi)完全分離,且檸檬酸作為流動相時成分單一,配制簡單,因此,本實驗選擇檸檬酸溶液作為流動相。
考察了檸檬酸濃度對4種硒形態(tài)保留時間的影響,如圖1。隨著檸檬酸濃度的增大,Se的保留時間逐漸減小,當檸檬酸濃度達到10 mmol/L時,SeMet的保留時間與Se的保留時間重疊,當檸檬酸濃度為8 mmol/L時,4種硒形態(tài)在8 min內(nèi)均能良好分離。因此,本實驗選擇檸檬酸濃度為8 mmol/L。
3.2 檸檬酸酸度的影響
在確定了流動相的組成和濃度后,考察了不同酸度條件下檸檬酸對硒形態(tài)分離效果的影響。本實驗采用20% NH3·H2O調(diào)節(jié)檸檬酸的酸度,在pH 4~6范圍內(nèi),4種硒形態(tài)保留時間見圖2。隨著pH值增大,Se的保留時間逐漸減少。當pH=4時,Se的保留時間為14.33 min;當pH=6.0時,SeMet和Se已經(jīng)重疊,只出現(xiàn)3個峰;當pH=5時,4種硒形態(tài)分離效果最佳。因此,本實驗選擇檸檬酸溶液的pH=5。
3.3 流動相流速對保留時間的影響
為了得到最佳的分離度,實驗考察了流動相流速對硒形態(tài)保留時間的影響,圖3 使用CH4(a)和O2(b)作為DRC氣體時的色譜圖
Fig.3 Chromatograms of selenium species using CH4(a) and O2(b) as dynamic veaction cell (DRC) gas
Concentrations of SeCys2, Se, SeMet and Se are 5 ng/mL each. The detection conditions are shown in Table 2 except CH4隨著流動相流速的增大,4種硒形態(tài)的保留時間均逐漸縮短,當流動相流速達到1.7 mL/min時,SeCys2與Se分不開。綜合考慮,本實驗流動相的流速選擇為1.5 mL/min。
3.4 動態(tài)反應池(DRC)條件的優(yōu)化
硒在自然界中有6種同位素,80Se+的豐度最大,然而80Se+容易受到ArAr+的干擾,而ArAr+是ICP中常見的離子,因此本實驗選擇DRC技術消除干擾。本實驗分別使用O2和CH4作為DRC反應氣,考察其對于80Se+的干擾消除情況。當SeCys2, Se, SeMet和Se的濃度均為5 ng/mL 時,分別用O2和CH4作為DRC反應氣時,混合標準溶液色譜圖見圖3。當O2作為DRC氣體時,實驗檢測的是96SeO+,而96SeO+容易受到96Mo+的干擾,鉬在植物中含量較高,因此難以完全消除干擾。當加入CH4作為DRC反應氣時,CH4與40Ar40Ar+反應,消除了40Ar40Ar+對于80Se+的干擾。在植物硒形態(tài)分析中,甲烷消除干擾的能力及硒形態(tài)的峰強度均優(yōu)于用O2作為DRC氣體。因此,本實驗選擇CH4作為DRC反應氣體。
3.5 ICP-MS檢測條件的優(yōu)化
RF功率、霧化氣流速等工作參數(shù)是ICP-MS較重要的參數(shù),這些參數(shù)對信號強度以及對氧化物和氫氧化物的形成有較大的影響。本實驗采用PE公司提供的ICP-MS調(diào)諧溶液選定ICP-MS工作參數(shù)見表2。在最佳工作條件下得到的考察指標是: Be為4625 cps/(ng/mL), Mg為44827 cps/(ng/mL),In為50930 cps/(ng/mL),U為41670 cps/(ng/mL),CeO+/Ce+為1.9%,Ce++/Ce+為0.9%。所有考察指標滿足ICP-MS性能要求,因此所選條件符合實驗要求。詳細ICP-MS工作參數(shù)見表2。
3.6 分析性能
SeCys2, Se, SeMet和Se的檢出限分別為0.088, 0.033, 0.30和0.17 ng/mL(n=6,3σ),線性范圍分別為0.28~200 ng/mL,0.10~200 ng/mL,0.65~200 ng/mL和0.50~200 ng/mL,相對標準偏差(RSD,n=6)分別為3.2%, 2.5%, 3.5%和2.9%,相關系數(shù)R2>0.9995,用峰面積定量,其分析性能見表3。
3.7 提取劑的選擇及樣品分析
理想的預處理方法既能夠有選擇性地將各種含硒化合物從植物固態(tài)基體中高效提取出來,還要盡量避免在處理過程中對天然存在的各種含硒化合物造成損失,保證提取前后形態(tài)不會發(fā)生轉變。根據(jù)文獻報道,蛋白酶K和脂肪酶提取效果較好[23],因此,本實驗采用蛋白酶K-脂肪酶作為提取劑。為了便于比較,本實驗也使用超純水作為提取劑,考察提取效率。本實驗利用超聲波輔助酶提取需時1.5 h,而文獻報道硒形態(tài)的提取時間為24 h[2],因此本方法大大縮短了提取時間。分析結果見表4。
4 結 論
利用超聲波輔助蛋白酶K-脂肪酶進行樣品前處理,建立了HPLC-ICP-MS聯(lián)用技術測定牛蒡和三七樣品中SeCys2, Se, SeMet和Se的新方法。結果表明,本方法簡便,快捷,在8 min內(nèi)可將4種硒形態(tài)良好分離,方法重復性和精密度較好,可滿足植物中硒形態(tài)分析的需要,為植物中硒形態(tài)分析提供了一種可行的分析方法。
References
1 Escudero L A, Pacheco P H, Gasquez J A, Salonia J A. Food Chem., 2015, 169: 73-79
2 Bryszewska M A, Mge A. J. Trace Elem. Med. Bio., 2015, 29: 91-98
3 Berger MM, Shenkin A, Revelly J P, Roberts E, Cayeux M C, Baines M, Chioléro R L. Am. J. Clin. Nutr., 2004, 80: 410-416
4 TANG Xin-Xin. Medicine World, 2004, 10: 19
唐新欣. 醫(yī)藥世界, 2004, 10: 19
5 Johnson C C, Fordyce F M, Rayman M P. Proc. Nutr. Soc., 2010, 69: 119-132
6 Sun M, Liu G, Wu Q. Food Chem., 2013, 141(1): 66-71
7 Peng H, Zhang N, He M, Chen B, Hu B. Talanta, 2015, 131: 266-272
8 QIU Jian-Hua, WANGQiu-Quan, HUANGBen-Li. Spectroscopy and Spectral Analysis, 2006, 26(9): 1692-1701
邱建華, 王秋泉, 黃本立. 光譜學與光譜分析,2006, 26(9): 1692-1701
9 Bauelos G S, Arroyo I, Pickering I J, Yang S I, Freeman J L. Food Chem., 2015, 166: 603-608
10 XIAO Zhi-Ming, SONG Rong, JIA Zheng, LI Yang, FAN Xia. Chinese J. Anal. Chem., 2014, 42(9): 1314-1319
肖志明, 宋 榮, 賈 錚, 李 陽, 樊 霞. 分析化學, 2014, 42(9): 1314-1319
11 Bueno M, Pannier F. Talanta, 2009, 78(3): 759-763
12 Deng B, Shen C, Qin X, Liang S, Liang Y. J. Anal. At. Spectrom., 2014, 29(10): 1889-1896
13 Yan L, Deng B, Shen C, Long C, Deng Q, Tao C. J. Chromatogr. A, 2015, 1395: 173-179
14 Kocot K, Leardi R, Walczak B, Sitko R. Talanta, 2015, 134: 360-365
15 Ishiguro Y, Ueno K J, Onodera S C, Benkeblia N, Shiomi N. J. Food Compos. Anal., 2011, 24(3): 398-401
16 SU Shi-Lin, HUANG Ke, ZENG Xiao-Biao, MA Bo. Chinese Journal of Ethnomedicine and Ethnopharmacy, 2011, 22: 26-29
蘇仕林, 黃 珂, 曾小飚, 馬 博. 中國民族民間醫(yī)藥, 2011, 22: 26-29
17 Yan X, Lin L, Liao X, Zhang W. Chemosphere, 2012, 87(1): 31-36
18 Chen T, Gong X, Chen H, Qu H. J. Sep. Sci., 2015, 38(2): 346-355
19 Li S, Qiao C, Chen Y, Zhao J, Cui X, Zhang Q, Liu X, Hu D. J. Chromatogr. A, 2013, 1313: 302-307
20 Gao F, Hu Y, Fang G, Yang G, Xu Z, Dou L, Chen Z, Fan G. J. Pharm. Biomed. Anal., 2014, 87: 241-260
21 WANG Yang, MENG Jun. Journal of Henan Normal University (Natural Science Edition), 2011, 39(2): 72-75
汪 洋, 孟 君. 河南師范大學學報(自然科學版), 2011, 39(2): 72-75
22 ZENG Chu-Jie, FENG Jin-Rong, DENG Bi-Yang. Journal of Analytical Science, 2006, 22(4): 410-413
曾楚杰, 馮金榮, 鄧必陽. 分析科學學報, 2006, 22(4): 410-413
23 Huerta V D, Reyes L H, Marchante-Gayo′n J M, Sa′nchez M L F, Sanz-Medel A. J. Anal. At. Spectrom., 2003, 18(10): 1243-1247