袁哈利 ,郝曉云 ,鄭學(xué)偉 ,李鴻彬 ,2
(1石河子大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,石河子832003;2石河子大學(xué)農(nóng)業(yè)生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,石河子832003)
黃萎病是棉花生產(chǎn)上危害嚴(yán)重的病害之一。黃萎病是土傳性維管束病害,其致病菌主要有2種即大麗輪枝菌[1-2]和黑白輪枝菌[3],棉花黃萎病病萎癥狀的產(chǎn)生是由于木質(zhì)部導(dǎo)管被菌絲和繁殖的孢子堵塞和病原菌產(chǎn)生的毒素共同作用的結(jié)果。近年來(lái),黃萎病在我國(guó)各棉區(qū)屢次大面積發(fā)生,給棉花產(chǎn)業(yè)造成極大損失[4-5]。因此,研究黃萎病致病機(jī)制,進(jìn)一步利用遺傳工程手段培育抗病品種具有重要意義和廣闊的應(yīng)用前景。
植物GDSL脂肪酶是一個(gè)大的基因家族,在植物生長(zhǎng)發(fā)育、形態(tài)建成、油脂代謝和防御反應(yīng)等[6-8]生理活動(dòng)中發(fā)揮重要的生物學(xué)功能。GDSL脂肪酶基因的表達(dá)能夠響應(yīng)生物和非生物脅迫。植物GDSL脂肪酶基因的表達(dá)可被病菌、水楊酸、乙烯、茉莉酸等激素以及非生物脅迫因子所誘導(dǎo),表明他們可能參與植物抗病和應(yīng)激反應(yīng)[9-11]。GDSL脂肪酶可以通過(guò)信號(hào)傳導(dǎo)調(diào)節(jié)或者直接破壞真菌孢子的完整性,限制病原菌在感染地方生長(zhǎng)繁殖[9,12]。在抗病研究中,植物細(xì)胞內(nèi)的許多保護(hù)酶如過(guò)氧化氫酶(Catalase,CAT)、超氧化物岐化酶(Superoxide dismutase,SOD)、過(guò)氧化物酶(Peroxidase,POD)、苯丙氨酸解氨酶(Phenylalanine ammonialyas)和多酚氧化物酶(Polyphendoxidas,PPO)與植物的抗病能力有著密切的關(guān)系[13-15]。
棉花作為重要的經(jīng)濟(jì)作物,GDSL脂肪酶與黃萎病相關(guān)的研究少有報(bào)道。本研究從棉花中克隆了1個(gè)GDSL脂肪酶基因GhGLIP,對(duì)其在受到黃萎病脅迫時(shí)的表達(dá)調(diào)控進(jìn)行了初步分析;利用大麗輪枝菌菌對(duì)野生型擬南芥和轉(zhuǎn)基因擬南芥葉片分別處理,對(duì)轉(zhuǎn)基因擬南芥植株對(duì)黃萎病菌的抗性進(jìn)行了研究;對(duì)棉花GhGLIP抗黃萎病菌的機(jī)制進(jìn)行分析,以期為進(jìn)一步抗病品種培育奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 試驗(yàn)材料
大麗輪枝菌(黃萎病菌)、哥倫比亞野生型Col-0擬南芥為本實(shí)驗(yàn)室保存,經(jīng)過(guò)處理的葉片材料經(jīng)液氮速凍,于-80℃冰箱保存待用。
1.1.2 試劑
RNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒購(gòu)自大連寶生物公司;對(duì)硝基苯酚棕櫚酸酯購(gòu)自上海銘睿生物科技有限公司;其他試劑為國(guó)產(chǎn)分析純。
1.1.3 試驗(yàn)儀器
Eppendorf PCR儀、Eppendorf 5424R型離心機(jī):Eppendorf North America;HVE-50型高壓蒸汽滅菌鍋:上海申安醫(yī)療器械廠;Tannon Epson100型核酸電泳儀:上海天能設(shè)備有限公司;ZF-158型凝膠成像分析系統(tǒng):上海金鵬分析儀器有限公司;ZSD-A1270A恒溫培養(yǎng)箱、ZHWY-100B恒溫?fù)u床:上海智誠(chéng)分析儀器有限公司。
1.2.1 RNA的提取
RNA所用的EP管、槍頭、槍頭盒、試劑瓶等經(jīng)過(guò)DEPC水處理24 h,高壓滅菌處理后使用,研缽和鑰匙經(jīng)180℃烘烤6 h后備用,采用Trizol方法提取擬南芥總RNA。
1.2.2 RNA反轉(zhuǎn)錄合成cDNA
用反轉(zhuǎn)錄試劑以擬南芥RNA為模板反轉(zhuǎn)錄成cDNA。以獲得的cDNA為模板進(jìn)行RT-PCR分析。RT-PCR所用引物從GenBank EST數(shù)據(jù)庫(kù)獲得片段序列信息,Primer 5設(shè)計(jì)上下游引物,由北京六合華大基因科技股份有限公司合成,序列見(jiàn)表1。
表1 使用的引物序列Tab.1 List of primer sequences
1.2.3 黃萎病菌(大麗輪枝菌)接種處理
參考李泉木等[16]的方法,將培養(yǎng)好的黃萎病菌配成孢子濃度為1×107個(gè)/mL的懸浮液。用接種針在4周大轉(zhuǎn)基因擬南芥和野生型擬南芥子葉葉脈周圍刺傷葉片,刺15次/cm2,每個(gè)葉片接種10μL孢子懸浮液,用對(duì)照用水處理。每棵植株處理3片子葉,每一處理設(shè)置6棵植株作為重復(fù)。在22℃、光周期為16 h光照/8 h黑暗,光照強(qiáng)度約為6000 lx,60%相對(duì)濕度的條件下培養(yǎng)。
1.2.4 細(xì)胞壞死染色
將接種過(guò)黃萎病菌48 h的葉片,置于DAB(1 mg/mL,pH=3.8)中染色 12 h,用比例為無(wú)水乙醇:乙酸∶甘油∶水=8∶1∶1∶1的脫色液在37℃脫色24-48 h,將葉片放在干凈的載玻片上,將Trypan blue染液均勻滴于葉面上,蓋上蓋玻片并靜置20 min,用光學(xué)顯微鏡觀察拍照。
1.2.4 酶活性測(cè)定
脂肪酶活性測(cè)定:采用馬斯亮藍(lán)G-250法測(cè)定蛋白含量,用牛血清蛋白制作6個(gè)梯度的標(biāo)準(zhǔn)曲線,制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
酶活性分析:反應(yīng)液中PBS pH7.0 50 mol/L,對(duì)硝基苯酚月桂酸酯1 mol/L,異丙醇5%,蛋白50 μg,37℃反應(yīng)15 min,100℃加熱2 min,冷卻至室溫后,在405 nm處測(cè)定吸光度值。
脂肪酶活力計(jì)算公式:
酶活力 =△A405×V×K×1000/(T×ε×m)(mmol/min·mg protein)。
其中,A:反應(yīng)液吸光度;V:反應(yīng)液體積(mL);K:稀釋倍數(shù);T:反應(yīng)時(shí)間(min);ε=0.016(μmol/L)-1;m:蛋白含量(mg)。
采用紫外吸收法測(cè)定CAT活性,采用NBT法測(cè)定SOD活性;采用愈創(chuàng)木酚法測(cè)定POD活性;PAL活性測(cè)定參考Southern等[17]的方法;PPO活性測(cè)定參考薛應(yīng)龍[18]的方法。
利用SPSS進(jìn)行F檢測(cè)分析各酶活性之間的差異性,利用Origin進(jìn)行作圖分析。
用大麗輪枝菌處理轉(zhuǎn)GhGLIP基因擬南芥和野生型擬南芥植株葉片。由圖1可見(jiàn):野生型擬南芥處理1 d后,葉片略微有些萎蔫,處理3 d后,葉片萎焉嚴(yán)重,且出現(xiàn)較多壞死斑,轉(zhuǎn)GhGLIP基因植株葉片僅產(chǎn)生少量壞死斑,無(wú)萎縮現(xiàn)象(圖1A)。用DAB-臺(tái)盼藍(lán)染色定量分析其細(xì)胞死亡情況,統(tǒng)計(jì)分析顯示,野生型擬南芥葉片細(xì)胞出現(xiàn)大面積死亡,死亡面積達(dá)59.05%;轉(zhuǎn)基因擬南芥葉片細(xì)胞死亡較少,死亡面積僅11.38%(圖1B)。結(jié)果表明,GhGLIP增強(qiáng)了擬南芥對(duì)黃萎病菌的抗性。
圖1 轉(zhuǎn)GhGLIP基因擬南芥葉片對(duì)黃萎病菌處理的表型分析Fig.1 Phenotype analyses of GhGLIP transgenic Arabidopsis leaves treated by Verticillium dahlia
分析結(jié)果見(jiàn)圖2。
圖2 GDSL脂肪酶響應(yīng)黃萎病菌處理的表達(dá)分析Fig.2 The expression activity analyses of GDSL lipase responding to Verticillium dahlia
由圖2可見(jiàn),轉(zhuǎn)GhGLIP基因擬南芥和野生型擬南芥受到黃萎病菌(大麗輪枝菌)侵染后,脂肪酶活性呈現(xiàn)逐漸增強(qiáng)的趨勢(shì),在接菌3 d后達(dá)到最高值,而后表達(dá)逐漸趨于恒定,暗示GDSL脂肪酶與擬南芥響應(yīng)抵抗大麗輪枝菌具有密切關(guān)系。
由圖3可見(jiàn):利用水或黃萎病菌處理后,CAT的表達(dá)變化不顯著;但是與野生型擬南芥相比,在水或黃萎病菌處理后,轉(zhuǎn)基因擬南芥中CAT的表達(dá)均高于野生型擬南芥。
黃萎病菌處理后,POD和SOD的表達(dá)具有相似性,均受到了病菌的誘導(dǎo)表達(dá),并且轉(zhuǎn)基因擬南芥中POD的表達(dá)高于野生型擬南芥。
圖3 黃萎病菌處理后擬南芥葉片抗氧化酶的表達(dá)分析Fig.3 Analyses of the expression activity of Arabidopsis leaves antioxidases under treatment of Verticillium dahliae
由圖4可見(jiàn):黃萎病菌處理1 d后,PAL受到了快速的響應(yīng)和誘導(dǎo)表達(dá),在處理3 d后達(dá)到最高值,隨后表達(dá)趨于穩(wěn)定;轉(zhuǎn)基因擬南芥中PAL的表達(dá)高于野生型。PPO活性在黃萎病菌處理3 d后達(dá)到最高值,其響應(yīng)速度略低于PAL。這說(shuō)明PAL和PPO在擬南芥響應(yīng)病菌處理過(guò)程中發(fā)揮重要作用,PAL的響應(yīng)更為快速。
圖4 黃萎病菌處理后擬南芥葉片PAL和PPO的表達(dá)分析Fig.4 The expression activity analyses of Arabidopsis leaves PAL and PPO under treatment of Verticillium dahliae
分別取接種黃萎病菌轉(zhuǎn)GhGLIP基因植株0、1、3、5、7 d后的葉片材料,以水處理為對(duì)照,提取總RNA并反轉(zhuǎn)錄成cDNA,以Actin基因?yàn)閰⒄?,檢測(cè)病程相關(guān)防衛(wèi)基因和乙烯信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)基因的表達(dá)。與水處理的各材料相比,黃萎病菌處理轉(zhuǎn)基因植株葉片中病程相關(guān)防衛(wèi)基因PDF1.2和PR1,以及乙烯信號(hào)傳遞相關(guān)基因ERF1和EIN3基因的表達(dá)獲得了顯著的誘導(dǎo),并且在處理1 d時(shí)有顯著增加,在處理3 d時(shí)達(dá)到最大值,隨后一直保持穩(wěn)定表達(dá)(圖5)。結(jié)果表明,轉(zhuǎn)GhGLIP基因擬南芥抗黃萎病菌的能力增強(qiáng),可能與病程相關(guān)防衛(wèi)基因表達(dá)的增強(qiáng),以及乙烯信號(hào)的作用有著密切關(guān)系。
圖5 黃萎病菌處理后防御基因和乙烯信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)基因的表達(dá)分析Fig.5 Expression levels of defense genes and ethylene signal transduction genes under treatment of Verticillium dahliae
(1)植物GDSL脂肪酶能夠參與生物和非生物脅迫下的抗逆反應(yīng)。擬南芥中的一種分泌蛋白GLIP1能夠激發(fā)植物局部和系統(tǒng)的抗性,重組表達(dá)的GLIP1蛋白可以直接破壞真菌孢子的完整性,從而抑制十字花科黑斑病菌、胡蘿卜軟腐歐文氏菌和丁香假單胞菌等真菌的生長(zhǎng)繁殖。辣椒中的GDSL脂肪酶基因CaGLIP1受到脅迫因子的誘導(dǎo)表達(dá),轉(zhuǎn)CaGLIP1基因擬南芥的GDSL脂肪酶活性顯著提高,并且對(duì)生物和非生物脅迫的抗性增強(qiáng)[9,19]。本研究將從陸地棉中獲得1個(gè)GDSL脂肪酶基因GhGLIP轉(zhuǎn)化哥倫比亞野生型擬南芥,對(duì)獲得的轉(zhuǎn)基因擬南芥植接種黃萎病菌處理,轉(zhuǎn)基因擬南芥中GDSL脂肪酶的表達(dá)受到了誘導(dǎo),轉(zhuǎn)基因擬南芥的抗病性顯著增強(qiáng)。轉(zhuǎn)基因擬南芥中抗氧化系統(tǒng)酶如CAT、SOD和POD,以及PAL和PPO的均能快速響應(yīng)黃萎病菌處理并具有較高的誘導(dǎo)表達(dá),表明這些酶表達(dá)在病菌響應(yīng)過(guò)程中起著重要作用。
(2)植物GDSL脂肪酶響應(yīng)脅迫發(fā)揮其功能時(shí),有時(shí)需要激素的誘導(dǎo)和調(diào)控。乙烯是誘導(dǎo)對(duì)病原物防衛(wèi)反應(yīng)的重要信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)分子[20-22]。擬南芥GLIP1蛋白可通過(guò)乙烯信號(hào)的誘導(dǎo)產(chǎn)生系統(tǒng)抗性,增強(qiáng)對(duì)多種病原菌和細(xì)菌的抗性[20-21,23-24]。擬南芥GLIP2蛋白在SA、JA和ET的信號(hào)誘導(dǎo)下表達(dá),抑制歐文氏菌的生長(zhǎng)[20]。本研究中,在黃萎病菌處理后,轉(zhuǎn)基因擬南芥中的乙烯信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)基因在轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)有顯著提高,細(xì)胞內(nèi)的防御基因PDF1.2和PR1的表達(dá)也因受到誘導(dǎo)而增加,但是乙烯信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)基因的表達(dá)更為顯著,暗示GLIP基因和乙烯之間的關(guān)系密切,以及它們?cè)邳S萎病菌響應(yīng)過(guò)程中起著重要作用。
植物的抗病響應(yīng)是一個(gè)復(fù)雜的過(guò)程,涉及到眾多的生理過(guò)程,本研究為抗病分子機(jī)制解析和進(jìn)一步的基因工程利用奠定了良好的基礎(chǔ)。
[1] 房衛(wèi)平,祝水金,季道藩.棉花黃萎病菌與抗黃萎病遺傳育種研究進(jìn)展[J].棉花學(xué)報(bào),2001,13(2):116-120.Fang Weiping,Zhu Shuijin,Ji Daopan.Advanced in researches on inheritance of Verticillium dahlia Kleb.and resistance breeding in cotton[J].Cotton Science,2001,13(2):116-120.
[2] 丁笑聲,與廣麗.棉花黃萎病及其抗病育種的研究[J].生物技術(shù).2005,15(1):96-97.Ding Xiaosheng,Yu Guangli.Research of Verticillium wilt and breeding about disease-resistant cotton[J].Biotechnology,2005,15(1):96-97.
[3]Wang J Y,Cai Y,Gou J Y.VdNEP,an elicitor from Verticllium dahliae,induces cotton plant wilting[J].Appl Environ Microbiol,2004,70(8):4989-4995
[4] 王崇桃.新疆棉花生產(chǎn)可持續(xù)發(fā)展中的問(wèn)題與對(duì)策[J].石河子大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,1999,3(2):101-106.Wang Chongtao.Problems and countermeasures of the sustainable development of cotton production in Xinjiang[J].Journal of Shihezi University:Natural Science,1999,3(2):101-106.
[5] 韓盛,向本春.植物病毒分子檢測(cè)方法研究進(jìn)展[J].石河子大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2006,24(5):550-553.Han Sheng,Xiang Benchun.Advances of methods for the molecular detection of plant virus[J].Journal of Shihezi University:Natural Science,2006,24(5):550-553.
[6]Kondou Y,Nakazawa M,Muto S,et al.,RETARDED GRO WTH OF EMBR YO1,a new basic helix-loop-helix protein,expresses in endosperm to control embro growth[J].Plant Physiol,2008,147:1924-1935.
[7]Takahashi K,Kondo M,Shimada T,et al.Ectopic expression of an esterase,which is a candidate for the unidentified plant cutinase,causes cuticular defects in Arabidopsis thaliana[J].Plant and Cell Physiology,2010,51(1):123-131.
[8] 郝曉云,袁哈利,李鴻彬,等.過(guò)量表達(dá)棉花GDSL脂肪酶提高甘藍(lán)型油菜油脂含量的研究[J].中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2014,29(6):63-68.Hao Xiaoyun,Yuan Hali,Li Hongbin,et al.Overexpression of a cotton GDSL lipase increases the oil content of Brassica napus L.[J].Journal of the Chinese Cereals and Oils Association,2014,29(6):63-68.
[9]Oh I S,Sun J K.Secretome analysis reveals an arabidopsis lipase involved in defense against Alternaria brassicicola[J].The Plant Cell,2005,17,2832-2847.
[10]Kram B W,Perera M A,Carter C,et al.Identification,cloning and characterization of a GDSL lipase secreted into the nectar of Jacaranda mimosifolia[J].Plant Mol Biol,2008,68:173-183.
[11]Lee K,Cho T.Characterization of a salicylic acid-and pathogeninduced lipaselike gene in Chinese cabbage[J].Journal of Biochemistry and Molecular Biology,2003,36(5):433-441.
[12]Sun J K,Hak C J,Ohkmae K P,et al.GDSL lipase-like 1 regulates systemic resistance associated with ethylene signaling in Arabidopsis[J].The Plant Journal,2009,58,235-245.
[13]程璐,賀春貴,胡桂馨,等.苜蓿斑蚜危害對(duì)5種苜蓿品種(系)PAL、POD、PPO酶活性的影響[J].植物保護(hù),2009,35(6):87-90.Cheng Lu,He Chungui,Hu Guixin,et al.The effects of Therioaphis trifolii on the activities of PAL,POD and PPO in five alfalfa varieties[J].Plant Protection,2009,35(6):87-90.
[14]辛建華,傅振清.苯丙氨酸解氨酶、多酚氧化酶與甜瓜抗枯萎病的關(guān)系[J].石河子大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,1997,1(1):47-50.Xin Jianhua,F(xiàn)u Zhenqing.Relation of plant phenylalanine(PAL)and ployphenol oxidase(PPOD)and resistance of Hami-muskmelon to Fusarium oxysporum F.SP.Melonis[J].Journal of Shihezi University:Natural Science,1997,1(1):47-50.
[15]孫黎,肖璐,閻平,等.黎科12種鹽生植物SOD活性及其同工酶的初步研究[J].石河子大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2004,22(6):500-503.SUN Li,XIAO Lu,YAN Ping,et al.Studies on the activity and isozyme of superoxide dismutase in Chenopodiacea soline species[J].Journal of Shihezi University:Natural Science,2004,22(6):500-503.
[16]李泉木,朱筠,曹越平.發(fā)根農(nóng)桿菌侵染大豆產(chǎn)生發(fā)根的研究[J].上海交通大學(xué)學(xué)報(bào),2012,30(1):54-60.Li Quanmu,Zhu Jun,Cao Yueping.Hairy root induced by agrobacterium rhizogenes in soybean[J].Journal of Shanghai Jiaotong University,2012,30(1):54-60.
[17]Southern S G,Deverall B J.Changes in phenylalanine ammonia lyase and peroxidase activities in wheat cultivars expressing esistance to the leaf rust fungus(Puccinia reconditaf.sp.tritici)[J].Plant Pathology,1990,39:223-230.
[18]薛應(yīng)龍.植物生理實(shí)驗(yàn)[M].哈爾濱:哈爾濱工業(yè)大學(xué)出版社,2004:4-49.
[19]Lee D,Kim B,Kwon S,et al.Arabidopsis GDSL lipase2 plays a role in pathogen defense via negative regulation of auxin signaling[J].Biochemical and Biophysical Research Communications,2009,379(4):1038-1042.
[20]Hye G K,Sun J K,Jang Y J,et al.,GDSL LIPASE1 modulates plant immunity through feedback regulation of ethylene signaling[J].Plant Physiology,2013,163:1776-1791.
[21]Chang C.The ethylene signal transduction pathway in Arabidopsis:an emerging paradigm?[J].Trends Biochem Sci,1996,21:129-133.
[22]Thomma B P H J,Eggermont K,Tierens K F M J,et al.Requirement of functional ethylene-insensitive2 gene for efficient resistance of Arabidopsis to infection by Botrytis cinerea[J].Plant Physioogy,1999,121:1093-1101.
[23]Hong Y W,Wang T W,Thompson J E,et al.An ethyleneinduced cDNA encoding a lipase expressed at the onset of senescence[J].PNAS,2000,15(97):8717-8722.
[24]Bleecker A B,Hans K.Ethylene:a gaseous signal molecule in plants[J].Annual Rev Cell Develop Biol,2000,6:1-18.