吳娜,劉凌,周明,孫慧,李國(guó)明,姜忠杰
(中國(guó)食品發(fā)酵工業(yè)研究院,北京,100015)
馬鈴薯汁水是馬鈴薯淀粉生產(chǎn)的副產(chǎn)物,來(lái)源于馬鈴薯原料在磋磨工段分離的細(xì)胞水。汁水中固形物含量為4% ~5%,其中約1/3是蛋白質(zhì)、肽和氨基酸,還包括淀粉、纖維素、脂類(lèi)、有機(jī)酸、多酚和礦物質(zhì)[1]。目前國(guó)內(nèi)的馬鈴薯淀粉企業(yè)基本沒(méi)有回收馬鈴薯蛋白的工序,通常作為廢水處理。國(guó)外的大型馬鈴薯淀粉企業(yè)一般采用熱絮凝法[2]回收馬鈴薯蛋白,產(chǎn)品外觀(guān)為暗褐色、口感苦澀,很難用于食品,一般做動(dòng)物飼料。
膜分離作為一種有利于保持熱敏性食品品質(zhì)的分離技術(shù)在液體食品分離領(lǐng)域的應(yīng)用已經(jīng)非常廣泛,其中,應(yīng)用于農(nóng)副食品加工副產(chǎn)物回收蛋白質(zhì)的研究很多,包括膜分離工藝條件篩選、膜孔徑和膜材等對(duì)蛋白質(zhì)回收率的影響分析[3-4]。但很少有人對(duì)膜法回收的馬鈴薯蛋白基本性能以及應(yīng)用于食品配料的可能性進(jìn)行研究。本文對(duì)照了馬鈴薯蛋白和大豆分離蛋白的功能和營(yíng)養(yǎng)性質(zhì),并測(cè)定了其中的生物堿含量,以推動(dòng)馬鈴薯蛋白在食品加工領(lǐng)域里的應(yīng)用。
馬鈴薯汁水,內(nèi)蒙古地區(qū)淀粉廠(chǎng);預(yù)染 SDSPAGE低分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì),上海凱勃生物技術(shù)有限公司;超低分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì),中科瑞泰(北京)生物科技有限公司;α-茄堿(α-Solanine,≥95%),美國(guó) Sigma公司;大豆分離蛋白,天津某食品公司;高效液相色譜所用試劑為色譜純,其他試劑為分析純。
陶瓷膜管件及設(shè)備,江蘇久吾高科膜技術(shù)工程有限公司;DYCZ-24DN型電泳儀,北京六一儀器廠(chǎng);高效液相色譜系統(tǒng),日本島津公司;氨基色譜柱,大連依利特科學(xué)儀器有限公司;噴霧干燥機(jī),濟(jì)南奧諾能源科技有限公司。
馬鈴薯淀粉生產(chǎn)磋磨工段產(chǎn)生的馬鈴薯汁水粗過(guò)濾為膜分離濃縮的原料。采用無(wú)機(jī)陶瓷膜進(jìn)行馬鈴薯汁水的分離濃縮,制備得到蛋白濃縮液。
馬鈴薯汁水蛋白濃縮液直接噴霧干燥制得。
2.3.1 水分的測(cè)定
按照GB5009.3-2010的方法測(cè)定。
2.3.2 灰分的測(cè)定
按照GB5009.4-2010的方法測(cè)定。
2.3.3 蛋白質(zhì)的測(cè)定
按照GB5009.5-2010的方法測(cè)定。
2.3.4 蛋白質(zhì)功能性質(zhì)的測(cè)定[5]
2.3.4.1 溶解性的測(cè)定
蛋白質(zhì)的溶解度一般采用氮溶解指數(shù)(NSI)和蛋白質(zhì)分散指數(shù)(PDI)表示。
本文以NSI為指標(biāo)計(jì)算蛋白質(zhì)的溶解性。
NSI/%=(水溶解氮/樣品總氮)×100
稱(chēng)取蛋白質(zhì)樣品0.3 g,溶于30 mL水中,不調(diào)節(jié)pH值,室溫磁力攪拌l h,4 000 r/min離心15 min,將上清液轉(zhuǎn)移,并定容至50 mL。取上清液測(cè)定水溶解氮的含量,從而計(jì)算氮溶解指數(shù)(NSI)。
2.3.4.2 持水力的測(cè)定
取50 mL塑料離心管稱(chēng)重,稱(chēng)取蛋白質(zhì)樣品0.3 g置于離心管中,加蒸餾水30 mL,不調(diào)節(jié)pH值。室溫振蕩攪拌l h,在恒溫水浴中,于60℃加熱30 min,在冷水中冷卻30 min。5 000 r/min離心15 min,去除上清液。稱(chēng)量離心管質(zhì)量,計(jì)算蛋白質(zhì)的持水力(WHC)。
蛋白質(zhì)持水力(WHC)=(m2-m1-m0)/m0
式中:m2,去上清液后離心管的質(zhì)量(g);m1,離心管的質(zhì)量(g);m0,蛋白質(zhì)干重(g)。
2.3.4.3 乳化性的測(cè)定
配制蛋白質(zhì)濃度為0.4%的懸濁液6 mL,不調(diào)節(jié)pH值,室溫加入10 mL植物油。在高速組織剪切機(jī)中均質(zhì)(10 000 r/min)1 min,制成乳狀液。準(zhǔn)確吸取底部乳狀液40 μL,放入試管中,立即加入10 mL 0.1%的SDS溶液,充分搖勻后,以0.1%的SDS為參比,在500 nm處,測(cè)定吸光度值(AOD),并以乳化活性指數(shù)(EAI=AOD×100)表示乳化性。15 min后,再次測(cè)定吸光度值()。
式中:t為時(shí)間間隔。
2.3.4.4 起泡性的測(cè)定
將樣品配成2%的溶液50 mL,室溫不調(diào)節(jié)pH值。將溶液轉(zhuǎn)移至量筒中,測(cè)定此時(shí)溶液高度(h1),用高速組織剪切機(jī)攪打(10 000 r/min)1 min,再立刻轉(zhuǎn)移至量筒內(nèi),測(cè)定此時(shí)泡沫高度(h2),計(jì)算蛋白質(zhì)的起泡性。
起泡性/%=(h2/h1)×100
泡沫穩(wěn)定性:經(jīng)攪打形成的泡沫靜置30 min,測(cè)定泡沫高度(h3),計(jì)算泡沫穩(wěn)定性。
穩(wěn)定性/%=(h3/h1)×100
2.3.5 馬鈴薯蛋白粉氨基酸的測(cè)定
按照GB 5009.124-2003的方法測(cè)定。
2.3.6 馬鈴薯蛋白粉相對(duì)分子質(zhì)量分布的測(cè)定
低分子質(zhì)量蛋白質(zhì)SDS-PAGE凝膠電泳:分離膠濃度12%,濃縮膠濃度5%。
超低分子質(zhì)量蛋白質(zhì)SDS-PAGE凝膠電泳:分離膠濃度6%,濃縮膠濃度3%。
2.3.7 α-茄堿含量的分析
以α-茄堿標(biāo)準(zhǔn)品制作標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。氨基色譜柱(4.6 mm ×250 mm,5 μm),UV 檢測(cè)器200 nm,流動(dòng)相:V(乙腈)∶V(20 mmol/L KH2PO4)=75∶25,柱溫40℃,流速1.0 mL/min。
馬鈴薯蛋白粉的基本成分分析結(jié)果如表1所示。膜法回收所得馬鈴薯蛋白粉中蛋白質(zhì)含量會(huì)有一定的差異,根據(jù)原料的蛋白質(zhì)含量不同、膜種類(lèi)、回收工藝的不同有一定的浮動(dòng)范圍。除了水分、灰分和蛋白質(zhì)外,馬鈴薯蛋白粉中還含有少量的馬鈴薯淀粉和馬鈴薯膳食纖維。
表1 馬鈴薯蛋白粉基本成分分析Table 1 Analysis of the basic components of potato protein
本文以大豆分離蛋白為對(duì)照樣品,分析了馬鈴薯蛋白粉的溶解性、持水力、乳化性和起泡性等功能性質(zhì),結(jié)果如表2所示。
表2 馬鈴薯蛋白和大豆分離蛋白的功能性質(zhì)Table 2 Function properties of potato protein and soy protein isolate
由表2可知,和大豆分離蛋白相比,馬鈴薯蛋白具有優(yōu)良的起泡性和泡沫穩(wěn)定性,兩者的溶解度和乳化性基本相當(dāng),但持水力相差很大。說(shuō)明馬鈴薯蛋白具有優(yōu)良的表面活性,可在氣-液界面形成堅(jiān)韌的薄膜使大量氣泡進(jìn)入并可使其保持穩(wěn)定。
新鮮馬鈴薯塊莖中的蛋白質(zhì)主要是相對(duì)分子質(zhì)量在40 kDa附近的Patatin和5~25 kDa的蛋白酶抑制劑,其他10% ~20%的是大分子蛋白[1]。
馬鈴薯蛋白的電泳圖譜帶如圖1所示。譜帶集中在40 kDa和20 kDa附近。超低分子質(zhì)量的蛋白質(zhì)電泳譜帶顯示,在20 kDa附近的譜帶條數(shù)很多,距離很近,幾乎沒(méi)有分開(kāi)。由此可以判斷膜分離技術(shù)保留了馬鈴薯中的兩類(lèi)主要蛋白質(zhì):Patatin和多種蛋白酶抑制劑。
圖1 馬鈴薯蛋白SDS-PAGE電泳圖Fig.1 SDS-PAGE of potato protein
以大豆分離蛋白為對(duì)照品,馬鈴薯蛋白粉的氨基酸分析結(jié)果如表3所示。
表3 馬鈴薯蛋白和大豆分離蛋白的氨基酸組成Table 3 Amino acid composition of potato protein and soy protein isolate
由表3可知,馬鈴薯蛋白由18種氨基酸組成,氨基酸總量為72.78%,其中必需氨基酸含量為35%,占總氨基酸的48%,與雞蛋蛋白(49%)相當(dāng)。大豆分離蛋白的必需氨基酸含量為32.68%,占總氨基酸的40%。馬鈴薯蛋白的必需氨基酸比例優(yōu)于大豆分離蛋白。
馬鈴薯塊莖中茄啶糖苷生物堿(solanidine glycoalkaloids(SGA))的含量為30~100 mg/kg,SGA 可溶解在馬鈴薯汁水中,因此以馬鈴薯汁水為原料制備所得馬鈴薯蛋白產(chǎn)品的安全性風(fēng)險(xiǎn)主要來(lái)自馬鈴薯原料帶入的生物堿[6],其生物堿種類(lèi)以α-茄堿和α-卡茄堿(α-chaconine)為主。歐洲飼用馬鈴薯粗蛋白粉多采用熱絮凝的方法制備,其SGA的含量為1 500~2 500 mg/kg[7]。將 α-茄堿標(biāo)準(zhǔn)品、馬鈴薯蛋白粉采用HPLC進(jìn)行檢測(cè)。圖2表明,標(biāo)品α-茄堿的出峰時(shí)間在7.5~8 min(標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)方程Y=603 809X+693.04,R2=0.999 5)。以此可推斷圖3中在7.5~8 min的出峰為α-茄堿,計(jì)算得到馬鈴薯蛋白粉中α-茄堿的含量為330 mg/kg,則總生物堿(以α-茄堿和α-卡茄堿的比為 2∶1[1]計(jì))的含量在 500 mg/kg 左右,遠(yuǎn)低于歐洲飼用馬鈴薯蛋白粉中SGA的含量。
圖2 α-茄堿標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖Fig.2 HPLC chromatogram of α-Solanine standard
圖3 馬鈴薯蛋白粉色譜圖Fig.3 HPLC chromatogram of potato protein powder
由此可見(jiàn),相比熱絮凝的方法,膜技術(shù)回收所得馬鈴薯蛋白降低了其中總生物堿的含量,提高了制品的安全性。
膜分離方法所得馬鈴薯蛋白保留了原馬鈴薯中兩類(lèi)主要的蛋白質(zhì),具有優(yōu)良的功能性質(zhì)和較高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,且大幅降低了原料中SGA的含量,使馬鈴薯蛋白用于食品配料成為可能。
[1] Sissel L?kra,Merete H Helland,Ingrid C Claussen,et al.Chemical characterization and functional properties of a potato protein concentrate prepared by large-scale expanded bed adsorption chromatography[J].LWT-Food Science and Technology,2008,41(6):1 089-1 099.
[2] Strolle E O,Cording JR J,Aceto N C.Recovering potato proteins coagulated by steam injection heating[J].Journal of Agriculture and Food Chemistry,1973,21:974-977.
[3] 程坷偉,許時(shí)嬰,王璋.甘薯淀粉生產(chǎn)的廢液中提取糖蛋白的超濾工藝研究[J].食品工業(yè)科技,2003(10):109-111.
[4] Harmen J Zwijnenberg,Antoine J B,Marcel E Boerrigter,et al.Native protein recovery from potato fruit juice by ultrafiltration[J].Desalination,2002,144(1-3):331-334.
[5] 劉素穩(wěn).馬鈴薯蛋白質(zhì)營(yíng)養(yǎng)價(jià)值評(píng)價(jià)及功能性質(zhì)的研究[D].天津:天津科技大學(xué),2007:52-61.
[6] 劉凌,崔明學(xué),吳娜,等.馬鈴薯淀粉工業(yè)廢水的環(huán)境影響與資源化利用[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2011,37(8):131-135.
[7] Stale Refstie,Harold A J Tiekstra.Potato protein concentrate with low content of solanidine glycoalkaloids in diets for Atlantic salmon(Salmo salar)[J].Aquaculture,2003,216(1-4):283-298.