張婷 趙嚴(yán)
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MicroRNA與胰腺疾病的關(guān)系
張婷趙嚴(yán)
隨著社會(huì)生活水平的提高以及隨之而來的飲食結(jié)構(gòu)的變化,胰腺相關(guān)疾病的發(fā)病率逐年增加,其中胰腺癌在世界范圍內(nèi)居腫瘤死因的第4位,是目前惡性程度最高的腫瘤之一[1]。急性胰腺炎(AP)是胰腺常見疾病,不僅能引起消化系統(tǒng)臟器的損傷,而且常能導(dǎo)致MODS等嚴(yán)重并發(fā)癥,重癥AP的病死率可高達(dá)30%[2]。所以如何早期診斷胰腺相關(guān)疾病、正確地判斷病情的嚴(yán)重程度、準(zhǔn)確地評(píng)價(jià)其預(yù)后是每位醫(yī)師所迫切追求的。
MicroRNA(miRNA)是一類長(zhǎng)約19~23個(gè)核苷酸的小分子單鏈非編碼RNA,它由一段具有發(fā)夾結(jié)構(gòu)的單鏈RNA前體經(jīng)Drosha酶和Dicer酶剪切后生成。miRNA通過與目標(biāo)mRNA的3′端非編碼區(qū)域(3′-UTR)互補(bǔ)配對(duì),抑制目標(biāo)mRNA分子的翻譯或特異性誘導(dǎo)mRNA切割,從而在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控靶基因的表達(dá)[3-5]。研究證明miRNA在多種生理病理過程中發(fā)揮重要調(diào)節(jié)作用,如細(xì)胞增殖、凋亡、發(fā)育、分化、炎性反應(yīng)、應(yīng)激反應(yīng)等[6-8]。本文就miRNA在胰腺疾病中的作用做一綜述。
大量研究發(fā)現(xiàn)miRNA與胰腺癌及胰腺炎的發(fā)生、發(fā)展相關(guān)。在胰腺癌中表達(dá)上調(diào)的miRNA有miRNA-7d、miRNA-15b、miRNA-18a、miRNA-21、miRNA-31、miRNA-93、miRNA-100、miRNA-103、miRNA-107、miRNA-204、miRNA-221、miRNA-196a等,其所調(diào)節(jié)的靶基因包括原癌基因K-ras、CyclinD1,抑癌基因p53、p21、p16、p27、SMAD4/DPC4[9]。在胰腺炎中miRNA-92b、miRNA-10a、miRNA-7、miRNA-181a-5p等表達(dá)下調(diào),miRNA-22、miRNA-135a、miRNA-216a、miRNA-9、miRNA-124a、miRNA-24-3p、miRNA-222-3p、miRNA-361-5p、miRNA-1246等表達(dá)上調(diào);miRNA通過對(duì)CHSY-1和PARP3等的調(diào)控促使炎癥發(fā)生[10-11]。
1.MicroRNA對(duì)AP的診斷價(jià)值:Liu等[12]使用qRT-PCR方法檢測(cè)3例健康人和12例入院24 h的AP患者血清miRNA表達(dá),結(jié)果顯示有205種miRNA表達(dá)異常,30%表達(dá)上調(diào),70%表達(dá)下調(diào),其中3個(gè)下調(diào)miRNA(miRNA-92b、miRNA-10a和miRNA-7)與AP有密切相關(guān)性。為預(yù)測(cè)其對(duì)AP的診斷潛力,研究者繪制了ROC曲線,三者的曲線下面積均為0.69(P<0.05),充分證明這3個(gè)miRNA可作為AP早期診斷的生物標(biāo)志物。An等[10]通過對(duì)82例健康人群、43例輕癥急性胰腺炎(MAP)和36例重癥急性胰腺炎(SAP)患者的血清標(biāo)本研究發(fā)現(xiàn),miRNA24-3p、miRNA-222-3p、miRNA-361-5p以及miRNA-1246表達(dá)均顯著下調(diào),miRNA-181a-5p表達(dá)與PTC、IL-1β、IL-6呈負(fù)相關(guān)(r值分別為-0.68、-0.63、-0.58)。此外,血清中IL-6和IL-1β在AP早期(6 h內(nèi))就開始異常升高,但6 h后的水平迅速下降,24 h后就幾乎接近正常值;而miRNA-181a-5p在發(fā)病后12 h表達(dá)顯著上調(diào),24 h后達(dá)穩(wěn)定平臺(tái)期并持續(xù)至96 h??梢妋iRNA對(duì)AP的診斷存在一定的臨床價(jià)值。
2.MicroRNA與AP病情嚴(yán)重程度的關(guān)系:臨床上經(jīng)常使用的評(píng)估和判斷AP嚴(yán)重程度的指標(biāo)包括血清鈣及CRP、血漿PCT、BISAP評(píng)分、Ranson評(píng)分、APACHEⅡ評(píng)分、BalthazarCT評(píng)分等。但血液檢查中所有指標(biāo)均缺乏高度特異性,除了胰腺炎可引起CRP和血漿PCT指標(biāo)的變化外,還有其他感染性疾病也能引起其升高。Ranson評(píng)分需要發(fā)病48 h后完成,無法在發(fā)病初期明確疾病嚴(yán)重程度,缺乏早期評(píng)估的優(yōu)勢(shì);APACHEⅡ評(píng)分則項(xiàng)目多而復(fù)雜,不夠充分反映局部病變情況;CT評(píng)分主要針對(duì)胰腺壞死情況,早期評(píng)估AP嚴(yán)重程度有一定局限性[13-15]。研究發(fā)現(xiàn)血液中部分miRNA的表達(dá)與AP的嚴(yán)重程度關(guān)系密切。miRNA-216a在AP患者中增高,其中SAP的增高明顯高于MAP,診斷SAP的靈敏度和特異度為64.29%,90.62%,與BISAP評(píng)分相接近[16]。另有研究發(fā)現(xiàn),在低鈣或伴有并發(fā)癥的AP患者血漿中miRNA-551b-5p高表達(dá),可以作為AP及其嚴(yán)重程度預(yù)測(cè)的生物標(biāo)志物[12]。因此,通過對(duì)血清中特異性miRNA的檢測(cè)有望能早期判斷AP的嚴(yán)重程度,從而為疾病的治療和預(yù)后判斷提供依據(jù)。
慢性胰腺炎(CP) 是由于各種原因引起的以胰腺細(xì)胞破壞、進(jìn)行性纖維化為主的病變。臨床主要表現(xiàn)為反復(fù)腹痛,胰腺內(nèi)、外分泌功能降低,從而導(dǎo)致脂肪瀉、 糖尿病。CP病程遷延, 臨床表現(xiàn)多樣, 嚴(yán)重影響患者的生活質(zhì)量。研究證明miRNA-124a可以通過調(diào)控CHSY1及其下游靶點(diǎn)CASP1(caspase 1)的表達(dá)水平參與CP的發(fā)生發(fā)展[17]。目前對(duì)miRNA在CP的診斷、治療以及預(yù)后方面判斷的研究甚少。
1.MicroRNA對(duì)胰腺導(dǎo)管腺癌早期診斷的價(jià)值:Bloomston等[18]檢測(cè)65例胰腺癌和42例CP患者胰腺組織標(biāo)本miRNA的表達(dá),結(jié)果顯示有22種miRNA異常表達(dá),可以很好地鑒別組織的良惡性,準(zhǔn)確率高達(dá)93%。Szafranska等[19]的實(shí)驗(yàn)表明,miRNA-217在正常胰腺組織高表達(dá),而胰腺導(dǎo)管腺癌(PDAC)組織中miRNA-196a低表達(dá)。通過qRT-PCR技術(shù)檢測(cè)冰凍標(biāo)本或者穿刺活檢標(biāo)本中miRNA-217和miRNA-196a的表達(dá)水平可鑒別組織的良惡性。Yang等[20]檢測(cè)胰腺癌組織miRNA-21、miRNA-155、miRNA-216表達(dá)水平,結(jié)果顯示胰腺癌組織miRNA-21和miR-155表達(dá)量顯著高于CP患者,而miRA-216則顯著低于CP組。聯(lián)合數(shù)個(gè)miRNA可以提高對(duì)PDAC的診斷率。如miRNA-21聯(lián)合miRNA-155診斷胰腺癌的靈敏度可高達(dá)93.33%。聯(lián)合檢測(cè)miRNA-21、miRNA-155、miRNA-216可以使診斷PDAC的曲線下面積提高至0.8667,靈敏度為83.33%、特異度為83.33%。
2.MicroRNA與PADC的轉(zhuǎn)移、侵襲及預(yù)后評(píng)估:Keklikoglou等[21]報(bào)道PDAC的miRNA-206顯著下調(diào),而miRNA-206過表達(dá)可以顯著抑制癌細(xì)胞的侵襲與生長(zhǎng),其機(jī)制是使細(xì)胞周期停留在G0/G1期,從而抑制PDAC細(xì)胞增殖。同時(shí),miRNA-206可直接抑制KRAS和ANXA2,通過對(duì)KRAS的負(fù)調(diào)節(jié)來抑制NF-κB信號(hào)通路,使其靶基因如IL8、CXCL1、CCL2、CSF2、VEGFA、VEGFC、MMP9等促炎、促血管形成因子表達(dá)下調(diào),從而抑制腫瘤血管和淋巴管的形成。ANXAS可以促進(jìn)纖溶酶的形成,降解細(xì)胞外基質(zhì),導(dǎo)致細(xì)胞侵襲,因此,miRNA-206可以通過抑制ANXAS減少纖溶酶產(chǎn)生,抑制新生血管形成,抑制內(nèi)皮細(xì)胞向血管周圍組織轉(zhuǎn)移增殖。He等[22]研究表明,胰腺癌組織miRNA-371-5p的表達(dá)水平顯著高于正常胰腺組織;通過Kapan-meier生存分析顯示,組織miRNA-371-5p表達(dá)陽性患者的生存時(shí)間短于miRNA-371-5p表達(dá)陰性患者,據(jù)此判斷患者的預(yù)后情況。
3.MicroRNA在PADC化療中的作用:目前研發(fā)的多種化療藥物在肺癌、乳腺癌等實(shí)體腫瘤的Ⅱ、Ⅲ期臨床研究顯示出明顯的療效,然而對(duì)胰腺癌患者的臨床效果不佳,這與胰腺癌對(duì)相關(guān)化療藥物耐藥是分不開的。多項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn)miRNA表達(dá)水平與化療藥物耐藥明顯相關(guān),通過調(diào)節(jié)miRNA的表達(dá)有望達(dá)到治療胰腺癌的目的[23]。Bera等[24]的研究發(fā)現(xiàn),miRNA-125與吉西他濱耐藥有關(guān);敲除miRNA-125的表達(dá)可逆轉(zhuǎn)胰腺癌細(xì)胞的上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化表型,恢復(fù)PUMA和Neu1等腫瘤抑制物的表達(dá),從而誘導(dǎo)對(duì)吉西他濱固有耐受的癌細(xì)胞對(duì)吉西他濱產(chǎn)生反應(yīng)。Xiao等[25]使用0~100 μg/ml 5-FU治療胰腺癌細(xì)胞72 h后,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染了miRNA-137的胰腺癌細(xì)胞的存活率顯著低于未轉(zhuǎn)染的對(duì)照組,證明miRNA-137的過表達(dá)可以提高胰腺癌細(xì)胞對(duì)5-FU的敏感性。此外,miRNA-21也表現(xiàn)出促使胰腺腫瘤細(xì)胞對(duì)吉西他濱耐藥的特性。原因是miRNA-21 能夠抵抗吉西他濱介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡。與對(duì)照組對(duì)比,轉(zhuǎn)染miRNA-21 的胰腺癌細(xì)胞株P(guān)ANC1 和BxPC3對(duì)吉西他濱的治療具有明顯的抵抗性;而轉(zhuǎn)染miRNA-21 抑制劑的PANC1 細(xì)胞和BxPC3細(xì)胞對(duì)吉西他濱的治療相當(dāng)敏感,PANC1細(xì)胞和BxPC3 細(xì)胞的生長(zhǎng)受到顯著的抑制,同時(shí),miRNA-21抑制劑可提高癌細(xì)胞對(duì)5-FU的敏感性[26]。因此,通過對(duì)部分miRNA表達(dá)的調(diào)控可以有效提高胰腺癌細(xì)胞對(duì)化學(xué)治療的敏感性,為胰腺癌的治療提供了新的途徑和思路。
4.MicroRNA與胰腺囊性腫瘤:胰腺囊性腫瘤(pancreatic cystic neoplasms,PCN)包括漿液性囊腺瘤(serous cystic neoplasms,SCN)、胰腺黏液性囊腺瘤(mucinous cystic neoplasms,MCN)、導(dǎo)管內(nèi)乳頭狀黏液性腫瘤(intraductal papillary mucinousneoplasm,IPMN)以及實(shí)性假乳頭狀瘤(solid pseudopapillary neoplasm neoplasm,SPN)等。近年來,隨著影像學(xué)診斷技術(shù)的進(jìn)展,PCN的檢出率較前有所提高。研究表明大約20%的人群中存在PCN,其中部分(主要為MCN和IPMN)發(fā)生惡性變,部分(如SCN)為良性病變。
Frampton等[27]研究表明,惡性IPMN組織中miR-21、miR-155、miR-708表達(dá)水平明顯高于良性病變組;而miR-217的表達(dá)水平則明顯下調(diào)。Permuth-Wey等[28]對(duì)28例IPMN(其中19例為高度不典型增生,9例為低-中度不典型增生)病理檢查結(jié)果顯示,miR-100、miR-99b、miR-99a、miR-342-3p、miR-126、miR-130a在高度不典型增生組的表達(dá)水平明顯低于低-中度不典型增生組,表明一些miRNA可能參與調(diào)節(jié)IPMN的惡變過程。因此,能否找到血清中對(duì)應(yīng)的特異性miRNA來早期診斷IPMN并預(yù)測(cè)其是否可能發(fā)生惡變?cè)谂R床上有重大意義,有助于進(jìn)一步對(duì)惡變可能性較高的IPMN進(jìn)行早期干預(yù)治療,改善預(yù)后,同時(shí)也能降低過度醫(yī)療的發(fā)生率。
miRNA在胰腺疾病中的差異性表達(dá)肯定了其在胰腺疾病發(fā)生、發(fā)展中起著重要的作用,尋找更多與胰腺相關(guān)的miRNA并研究其作用機(jī)制,將會(huì)為胰腺疾病的診斷、治療、預(yù)后判斷帶來重大的的突破。根據(jù)現(xiàn)有研究發(fā)現(xiàn),諸多miRNA均可作為同一胰腺疾病早期診斷的生物標(biāo)志物,那么確定一個(gè)或多個(gè)穩(wěn)定、易檢測(cè)的miRNA作為疾病診斷新的生物標(biāo)志物就顯得至關(guān)重要。同時(shí),miRNA與其靶基因的作用是相互的,一個(gè)miRNA可調(diào)控多個(gè)靶基因,而一個(gè)靶基因也可以由多個(gè)miRNA調(diào)控,因此,聯(lián)合檢測(cè)miRNA的表達(dá)水平可顯著提高胰腺癌的早期診斷效率、提高對(duì)AP疾病嚴(yán)重程度的判斷。
[1]Jemal A, Siegel R, Xu J, et al. Cancer statistics, 2010[J]. CA: Cancer J Clin, 2010,60(5): 277-300.
[2]Harper SJ, Cheslyn-Curtis S. Acute pancreatitis[J]. Ann Clin Biochem, 2011,48(Pt 1): 23-37.
[3]Hammond SM, Bernstein E, Beach D, et al. An RNA-directed nuclease mediates post-transcriptional silencing in Drosophila cells[J]. Nature, 2000, 404(6775):293-296.
[4]Pillai RS. MicroRNA function: multiple mechanisms for a tiny RNA[J]? RNA, 2005,11(12): 1753-1761.
[5]Calin GA, Croce CM. MicroRNA signatures in human cancers[J]. Nat Rev Cancer, 2006,6(11): 857-866.
[6]Khvorova A, Reynolds A, Jayasena1 SD. Functional siRNAs and miRNAs exhibit strand bias[J]. Cell, 2003, 115(2): 209-216.
[7]Bian S, Sun T. Functions of noncoding RNAs in neural development and neurological diseases[J]. Mol Neurobiol, 2011, 44(3): 359-373.
[8]Feng W, Feng Y. MicroRNAs in neural cell development and brain diseases[J]. Sci China Life Sci, 2011, 54(12): 1103-1112.
[9]Du Y, Liu M, Gao J, et al. Aberrant microRNAs expression patterns in pancreatic cancer and their clinical translation[J]. Cancer Biother Radiopharm, 2013, 28(5): 361-369.
[10]An F, Zhan Q, Xia M, et al. From moderately severe to severe hypertriglyceridemia induced acute pancreatitis: circulating miRNAs play role as potential biomarkers[J]. PloS One, 2014, 9(11): e111058.
[11]Qin T, Fu Q, Pan YF, et al. Expressions of miR-22 and miR-135a in acute pancreatitis[J]. J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci, 2014, 34(2): 225-233.
[12]Liu P, Xia L, Zhang WL, et al. Identification of serum microRNAs as diagnostic and prognostic biomarkers for acute pancreatitis[J]. Pancreatology, 2014, 14(3):159-166.
[13]Wu J, Zhu Q, Zhu W, et al. Computed tomographic features of abdominal compartment syndrome complicated by severe acute pancreatitis[J]. Zhonghua Yi Xue Za Zhi, 2014, 94(43): 3378-3381.
[14]Cho JH, Kim TN, Chung HH, et al. Comparison of scoring systems in predicting the severity of acute pancreatitis[J]. World J Gastroenterol, 2015, 21(8): 2387-2394.
[15]Yadav J, Yadav SK, Kumar S, et al. Predicting morbidity and mortality in acute pancreatitis in an Indian population: a comparative study of the BISAP score, Ranson's score and CT severity index[J]. Gastroenterol Rep(Oxf). 2015.
[16]李永文. 急性胰腺炎患者血清中miR-216a的表達(dá)及其臨床意義的研究[D]. 中南大學(xué), 2012.
[17]Yuan H, Wu B, Ma S, et al. Reanalysis of the gene expression profile in chronic pancreatitis via bioinformatics methods[J]. Eur J Med Res, 2014, 19:31.
[18]Bloomston M, Frankel WL, Petrocca F, et al. MicroRNA expression patterns to differentiate pancreatic adenocarcinoma from normal pancreas and chronic pancreatitis[J]. JAMA, 2007, 297(17): 1901-1908.
[19]Szafranska AE, Doleshal M, Edmunds HS, et al. Analysis of microRNAs in pancreatic fine-needle aspirates can classify benign and malignant tissues[J]. Clin Chem, 2008,54(10):1716-1724.
[20]Yang JY, Sun YW, Liu DJ, et al. MicroRNAs in stool samples as potential screening biomarkers for pancreatic ductal adenocarcinoma cancer[J]. Am J Cancer Res, 2014, 4(6): 663-673.
[21]Keklikoglou I, Hosaka K, Bender C, et al. MicroRNA-206 functions as a pleiotropic modulator of cell proliferation, invasion and lymphangiogenesis in pancreatic adenocarcinoma by targeting ANXA2 and KRAS genes[J]. Oncogene, 2015, 34(37):4867-4878.
[22]He D, Miao H, Xu Y, et al. MiR-371-5p facilitates pancreatic cancer cell proliferation and decreases patient survival[J]. PloS One, 2014, 9(11): e112930.
[23]Schober M, Jesenofsky R, Faissner R, et al. Desmoplasia and chemoresistance in pancreatic cancer[J]. Cancers(Base1), 2014, 6(4): 2137-2154.
[24]Bera A, VenkataSubbaRao K, Manoharan MS, et al. A miRNA signature of chemoresistant mesenchymal phenotype identifies novel molecular targets associated with advanced pancreatic cancer[J]. PloS One, 2014, 9(9): e106343.
[25]Xiao J, Peng F, Yu C, et al. microRNA-137 modulates pancreatic cancer cells tumor growth, invasion and sensitivity to chemotherapy[J]. Int J Clin Exp Pathol, 2014, 7(11): 7442-7450.
[26]Hwang JH, Voortman J, Giovannetti E, et al. Identification of microRNA-21 as a biomarker for chemoresistance and clinical outcome following adjuvant therapy in resectable pancreatic cancer[J]. PloS One, 2010, 5(5):e10630.
[27]Frampton AE, Gall TM, Giovannetti E, et al. Distinct miRNA profiles are associated with malignant transformation of pancreatic cystic tumors revealing potential biomarkers for clinical use[J]. Expert Rev Mol Diagn, 2013, 13(4): 325-329.
[28]Permuth-Wey J, Chen YA, Fisher K, et al. A genome-wide investigation of microRNA expression identifies biologically-meaningful microRNAs that distinguish between high-risk and low-risk intraductal papillary mucinous neoplasms of the pancreas[J]. PloS One, 2015, 10(1):e0116869.
(本文編輯:呂芳萍)
10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2016.01.021
200072上海,同濟(jì)大學(xué)附屬第十人民醫(yī)院消化科
趙嚴(yán),Email:320zhaoyan@163.com
2015-05-04)