何傳波 米聰 魏好程 熊何健

摘 要 以紫薯‘濟(jì)黑為原料，酸化乙醇為溶劑提取其中的花色苷成分，單因素實(shí)驗(yàn)探討不同因素對提取效果的影響，并通過響應(yīng)面法建立二次多項(xiàng)數(shù)學(xué)模型，確定紫薯花色苷最佳浸提條件為：乙醇濃度60%、浸提時間127 min、液料比18 ∶ 1，該條件下紫薯花色苷實(shí)際浸提值為2.680 mg/g。以VC作為對照，從DPPH自由基、超氧陰離子自由基（O2·- ）、羥自由基（·OH）清除率及總抗氧化活性4個方面考察了紫薯花色苷的體外抗氧化能力，結(jié)果表明，紫薯花色苷粗提物對DPPH、O2·- 和·OH均有較好的清除活性，其IC50值分別為1.245、332.291和70.830 mg/L，均小于VC的IC50值，紫薯花色苷粗提物的總抗氧化能力為101.38 U/mg，具有較強(qiáng)的抗氧化活性。

關(guān)鍵詞 紫薯；花色苷；提??；抗氧化活性

中圖分類號 TS20 文獻(xiàn)標(biāo)識碼 A

Abstract The anthocyanins were extracted from purple sweet potato‘Jiheiusing acidic ethanol as the solvent. The effects of different extracting conditions on the yield of anthocyanins were investigated in the single factor experiment. The optimal conditions of extraction obtained by response surface method（RSM）were as follows： alcohol concentration 60%， extraction time 127 min， liquid to ratio of solid 18. The actual extraction yield was 2.680 mg/g. The purple sweet potato anthocyanins exhibited obvious scavenging activities against DPPH radicals， O2·- radicals and ·OH radicals， the IC50 value respectively were 1.245， 332.291 and 70.830 mg/L. The total antioxidant capacity was 101.38 U/mg， which suggested the purple sweet potato anthocyanins having very excellent antioxidant activity.

Key words Purple sweet potato； Anthocyanins； Extraction； Antioxidant activity

doi 10.3969/j.issn.1000-2561.2016.05.022

近年來，隨著一系列如“蘇丹紅”、“染色饅頭”等涉及食品安全事件的曝光，人們的目光聚焦在了色素安全性的問題上?；ㄉ兆鳛橐环N天然色素，廣泛存在于藍(lán)莓、葡萄等水果，紫甘藍(lán)、紫薯等蔬菜，紫玉米、黑豆等糧食作物以及其他植物的根、莖、葉、花、果實(shí)中[1]。具有來源廣泛、毒副作用小的優(yōu)點(diǎn)，在食品添加劑領(lǐng)域的應(yīng)用前景十分廣闊，我國已經(jīng)批準(zhǔn)一些天然花色苷色素應(yīng)用于果醬、腌制品、飲料、葡萄酒、冰淇淋、糖果等食品中[2]。此外，利用其生物活性功能如抗氧化、調(diào)節(jié)血脂、改善血糖水平、提高視力等也開發(fā)出了一些新型保健食品[3-4]。

紫薯（Solanum tuberdsm），又名黑紫薯、紫肉甘薯、紫心甘薯，是旋花科（Convolvulaceae）甘薯屬（Ipomoe）一年生或多年生雙子葉植物。紫薯的營養(yǎng)價值遠(yuǎn)高于普通紅薯，尤其是抗癌物質(zhì)碘、硒的含量比其他紅薯高出20倍以上[5]。紫薯還含有豐富的花色苷色素，孫榮琴等[6]測定了7個不同紫薯品種塊根中花色苷的含量，最高達(dá)到107.22 mg/100 g，遠(yuǎn)高于一般紅薯。而且紫薯中的花色苷?；潭雀遊7]，水溶性和穩(wěn)定性良好，因此可以替代目前工業(yè)中常用的漿果類作為獲取花色苷的原材料，具有很高的實(shí)際生產(chǎn)應(yīng)用價值。

紫薯花色苷的提取方法包括溶劑提取、超聲、微波輔助提取以及酶解輔助提取等方法，由于成本、設(shè)備等原因，目前工廠大多仍采用傳統(tǒng)的溶劑浸提法，但是，由于不同的品種和產(chǎn)地會使得花色苷提取率有較大差異。雖然目前已有多篇甘薯花色苷提取的文獻(xiàn)報(bào)道，但是針對其提取物自由基清除活性的報(bào)道尚不夠系統(tǒng)。本研究以紫薯‘濟(jì)黑為實(shí)驗(yàn)材料，在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上，采用響應(yīng)面法對紫薯中花色苷的提取工藝進(jìn)行優(yōu)化，旨在改善提取工藝、降低成本，通過DPPH自由基、超氧陰離子自由基（O2·- ）、羥自由基（·OH）清除率及總抗氧化能力4個方面綜合考察紫薯花色苷的體外抗氧化能力，以期為紫薯花色苷的大規(guī)模工業(yè)化生產(chǎn)與應(yīng)用提供依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

紫薯‘濟(jì)黑，購于安徽，清洗去除表皮，切條冷凍干燥，粉碎過80目篩，密封保存于4 ℃冰箱。

二苯基苦味?；诫拢―PPH），色譜純，美國Sigma公司；羥自由基測試盒、超氧陰離子自由基測試盒、總抗氧化能力（T-AOC）測試盒，均購于南京建成生物工程研究所；抗壞血酸、鹽酸、乙醇、氯化鉀、三水合乙酸鈉等均為分析純試劑，購于國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

ZD-85氣浴恒溫振蕩器（常州市國立試驗(yàn)設(shè)備研究所）；WK-200B高速藥物粉碎機(jī)（青州市精誠機(jī)械有限公司）；UV-8000紫外可見分光光度計(jì)（上海元析儀器有限公司）；BS/BT電子天平（德國賽多利斯股份公司）；RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀（上海亞榮生化儀器廠）；JDG-0.2T真空凍干機(jī)（蘭州科近真空凍干技術(shù)有限公司）；TDL-5離心機(jī)（上海安亭科學(xué)儀器廠）；Sigma 3K3D 高速冷凍離心機(jī)（德國Sigma公司）； MSI微型漩渦振蕩器（廣州科技實(shí)驗(yàn)室技術(shù)有限公司）；pH211臺式酸度測定儀（北京哈納科技有限公司）。

1.2 方法

1.2.1 紫薯花色苷的提取工藝 精確稱取3 g紫薯凍干粉末，以酸化乙醇溶液為溶劑，于25 ℃恒溫?fù)u床（110 r/min）中浸提一定時間，離心（4 500 r/min，15 min），取上清液定容至100 mL。取浸提液分別加入一定體積的pH1.0、pH4.5緩沖液稀釋一定的倍數(shù)，在700 nm和λmax處測定其吸光值，計(jì)算樣品中花色苷的含量。

1.2.2 花色苷含量的測定方法 pH示差法：在不同的pH條件下，花色苷的結(jié)構(gòu)會有不同的表現(xiàn)形式，通過紫外-可見光譜的掃描，其最大吸光值也會發(fā)生變化。當(dāng)pH1.0時花色苷以有顏色的黃烊鹽正離子存在，pH4.5時則以無色的半酮縮醛型存在，二者的吸光度有很大差別但結(jié)構(gòu)都相對穩(wěn)定[8-9]。根據(jù)下式計(jì)算樣液中花色苷的濃度C（mg/L）：

MW為相對分子質(zhì)量；DF為樣品稀釋倍數(shù)；Aλmax為紫薯浸提液在最大吸收波長下的吸光度；ε為摩爾消光系數(shù)，當(dāng)ε未知或樣品成分未知，則將矢車菊素-3-葡萄糖苷作為標(biāo)準(zhǔn)物，此時MW=449.2，ε=26 900。

花色苷含量m（mg/g DW）按下式計(jì)算：

m=C×V/m0

其中，DW為樣品為干重狀態(tài)；V為浸提液體積（L）；m0為樣品干重時的質(zhì)量（g）。

1.2.3 DPPH自由基清除率測定方法 稱取20 mg的DPPH用無水乙醇溶解定容于500 mL容量瓶中。試驗(yàn)分為樣品組、對照組和空白組。不同的樣品液充分混勻，靜置30 min后在517 nm處測定吸光度[10]。DPPH自由基清除率由下面計(jì)算式計(jì)算：

DPPH自由基清除率=[1-（A2-A1）/A0]×100%

式中：A0為2 mL DPPH溶液+2 mL溶劑的吸光度值；A1為2 mL乙醇+2 mL樣品溶液的吸光度值；A2為2 mL DPPH溶液+2 mL樣品溶液的吸光度值。

1.2.4 超氧陰離子自由基（O2·- ）清除率測定方法

實(shí)驗(yàn)所用的試劑盒模擬機(jī)體內(nèi)黃嘌呤與其氧化酶的反應(yīng)系統(tǒng)，產(chǎn)生O2·- ，加入電子傳遞物質(zhì)及gress氏顯色劑后，產(chǎn)生紫紅色，在可見光550 nm處具有特征吸收，且吸光值與O2·- 的含量成線性關(guān)系。當(dāng)被測物中含有超氧陰離子自由基抑制劑時，反應(yīng)體系顏色變淺，吸光值降低。

嚴(yán)格按照試劑盒說明操作，下列兩個公式分別用來計(jì)算Vc及紫薯花色苷樣液不同濃度下的O2·- 自由基清除率。

式中：Aj為測定管在550 nm下的吸光度；Ai為對照管在550 nm下的吸光度；Ab為測定空白管在550 nm下的吸光度。

1.2.5 羥自由基（·OH）清除率測定方法 實(shí)驗(yàn)所使用的試劑盒是根據(jù)Fenton反應(yīng)所產(chǎn)生的·OH量與H2O2的量成正比，當(dāng)給予電子受體后，用griess試劑顯色，形成紅色物質(zhì)，其呈色與·OH的多少成正比關(guān)系。

嚴(yán)格按照試劑盒說明操作，計(jì)算公式同1.2.4。

1.2.6 總抗氧化能力測定方法 抗氧化物質(zhì)可以使Fe3+還原成Fe2+，后者與菲啉類物質(zhì)形成穩(wěn)固的絡(luò)合物，通過比色可測定其抗氧化能力（U/mL）的高低。

式中：Aj為測定管在520 nm下的吸光度；Ai為對照管在520 nm下的吸光度；V為反應(yīng)液總體積，3.7 mL；V0為被測樣液的取樣體積，0.1 mL；N為樣品測試前的稀釋倍數(shù)。

一個總抗氧化活力單位：37 ℃時，每分鐘每毫升樣品使反應(yīng)體系的吸光值增加0.01。

2 結(jié)果與分析

2.1 紫薯花色苷提取的單因素實(shí)驗(yàn)

2.1.1 乙醇濃度對花色苷提取效果的影響 鑒于花色苷具有較強(qiáng)的極性，且在堿性環(huán)境中的不穩(wěn)定性，實(shí)驗(yàn)選用酸化乙醇為浸提溶劑。固定溶劑中鹽酸濃度為0.1%，乙醇濃度分別為0%、20%、40%、60%、80%、95%，按15 ∶ 1（mL ∶ g）的料液比與紫薯粉混合，25 ℃浸提2 h，乙醇濃度對浸提效果的影響如圖1所示。由圖1可知，當(dāng)乙醇濃度達(dá)到60%時，所提取的花色苷含量達(dá)到最大，隨著濃度的進(jìn)一步提高，其含量反而下降，可能因?yàn)榛ㄉ諏儆谳^強(qiáng)極性的物質(zhì)，乙醇濃度的增大引發(fā)溶液極性變?nèi)?，提取效果變差。因此，選取60%乙醇溶液作為浸提溶劑進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。

2.1.2 鹽酸濃度對花色苷提取效果的影響 在60%乙醇溶液中添加鹽酸，使其質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為0、0.02%、0.05%、0.10%、0.50%、0.80%，浸提結(jié)果如圖2所示。根據(jù)圖2的曲線趨勢可知，隨著酸濃度的提高，花色苷的含量逐漸增大，但是當(dāng)濃度超過0.10%時，花色苷的浸出含量增加緩慢，考慮到酸含量過高可能會導(dǎo)致花色苷的糖苷鍵水解，因此選用0.10%的鹽酸添加量。

2.1.3 液料比對花色苷提取效果的影響 由圖3可知，原料質(zhì)量不變的情況下，浸提溶液體積的增加，有利于花色苷的浸出，但超出一定范圍，其含量的增加變得不太明顯，而且液料比過大會導(dǎo)致溶劑的浪費(fèi)增加實(shí)驗(yàn)成本同時也會增加后期實(shí)驗(yàn)濃縮凍干的能耗，不利于實(shí)際生產(chǎn)操作。鑒于上述考慮，宜選擇18 ∶ 1作為浸提液料比例。

2.1.4 浸提時間對花色苷提取效果的影響 由圖4可知，浸提時間的延長在一定范圍內(nèi)會使花色苷的浸出含量顯著增加，但超過這個期限增加緩慢，而且過長的浸提時間有可能會導(dǎo)致其他成分的浸出，影響花色苷的純度，同時也會延長整個實(shí)驗(yàn)過程，造成不必要的消耗，因此選取120 min作為浸提時間較為合適。

2.2 紫薯花色苷提取的響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)

在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上，固定鹽酸濃度0.10%，選擇對提取效果影響較大的3個因素乙醇濃度（A）、浸提時間（B）和液料比（C）為自變量，以浸提液中花色苷含量（Y）為響應(yīng)值，根據(jù)響應(yīng)面Box-Behnken中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理，得到紫薯花色苷提取的響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)方案和結(jié)果如表1所示。

利用Design Expert 8.0.6軟件對表1所得數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸分析，以提取液中花色苷含量Y為目標(biāo)函數(shù)，得到Y(jié)與A、B、C 3個因素的二次多項(xiàng)回歸方程：

Y=2.69-0.014A+0.041B+0.02C-5.997×10-3AB+0.014AC-0.012BC-0.23A2-0.091B2-0.06C2

在該方程中，負(fù)的二次項(xiàng)系數(shù)表明會有極大值點(diǎn)的出現(xiàn)，可以對所建立的模型進(jìn)行優(yōu)化。對該模型進(jìn)行方差分析，以找出對花色苷含量有顯著影響的因素（表2）。由表2可見，回歸模型F檢驗(yàn)高度顯著（p<0.01），模型的擬合度R2=0.998 0，表明預(yù)測值與實(shí)驗(yàn)值差異較小，可以較好的預(yù)測實(shí)驗(yàn)值。失擬項(xiàng)檢驗(yàn)達(dá)到15.18，在α=0.05水平上不顯著，存在6.24%的失擬可能是由噪聲引起的。校正擬合度Adj R2=0.9945和預(yù)測擬合度Pred R2=0.969 8相差較小，進(jìn)一步說明了該模型可以很好的模擬各因素與響應(yīng)值之間的關(guān)系。

在整個模型中，AB、BC交互作用影響不顯著，A和AC項(xiàng)影響顯著，B、C、A2、B2、C2對結(jié)果有高度顯著影響。由此可以判斷影響紫薯花色苷浸出含量因素的主次順序是：浸提時間（B）>液料比（C）>乙醇濃度（A）。

利用Design Expert 8.0.6軟件得到的響應(yīng)面圖見圖5。這些圖可以較為直觀的反映各個因素及因素交互作用對響應(yīng)值的影響。一般而言，響應(yīng)曲面越陡峭，響應(yīng)值對外界變異的適應(yīng)性越差；而等高線圖越圓則說明兩因素之間的交互作用越不顯著，若是橢圓的話，交互作用顯著。由圖5可判斷，在3個交互項(xiàng)中，AC的交互作用對響應(yīng)值的影響最顯著，其次為BC的交互作用，AC的交互作用對響應(yīng)值影響最不顯著，這與表2結(jié)果相符。

由軟件確定的紫薯花色苷最優(yōu)提取工藝為：乙醇濃度為59.42%，浸提時間為127.34 min，液料比為18.40 ∶ 1，提取液中的花色苷理論含量值為2.692 mg/g DW。鑒于實(shí)際操作的可行性，在驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)中采用乙醇濃度60%，浸提時間127 min，液料比18 ∶ 1，3次重復(fù)實(shí)驗(yàn)平均值是2.680 mg/g DW，標(biāo)準(zhǔn)偏差0.008 3，相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.003 1，說明驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)的重復(fù)性和精密度良好。而實(shí)驗(yàn)平均值與模型預(yù)測值相差0.4%，具有良好的擬合性，也證實(shí)了模型的有效性。

2.3 紫薯花色苷抗氧化活性分析

2.3.1 紫薯花色苷對DPPH自由基的清除能力

紫薯花色苷浸提液經(jīng)大孔吸附樹脂純化后，濃縮，凍干，得到花色苷粗品。以此為原料，配制不同濃度的紫薯花色苷溶液，進(jìn)行后續(xù)的抗氧化活性實(shí)驗(yàn)。不同濃度的紫薯花色苷溶液及相應(yīng)濃度的VC溶液對DPPH的清除能力見圖6。由圖6可知，在所選濃度范圍內(nèi)，紫薯花色苷溶液的DPPH清除能力遠(yuǎn)高于VC，且與劑量呈一定的量效關(guān)系。當(dāng)花色苷濃度在0～3 mg/L時，其清除率急劇上升，之后增長緩慢，在5 mg/L時達(dá)到最大值92.26%。VC在該濃度范圍內(nèi)的最大清除率只有30.12%。通過對兩條清除率曲線進(jìn)行回歸計(jì)算，得到薯花色苷和VC對DPPH清除率的IC50值分別為1.245和10.074 mg/L。

2.3.2 紫薯花色苷對超氧陰離子自由基（O2·- ）清除能力 不同濃度的紫薯花色苷溶液及相應(yīng)的VC溶液對O2·- 的清除能力見圖7。由圖7可知，紫薯花色苷與VC在選定濃度范圍內(nèi)對O2·- 的清除率都不是很好，最大清除率在35%左右，而且隨濃度增大有逐漸增高的趨勢，在實(shí)驗(yàn)濃度范圍內(nèi)，兩個樣品對O2·- 清除能力基本相當(dāng)。計(jì)算得到的紫薯花色苷和VC對O2·- 清除率的IC50值分別是332.291 mg/L和311.621 mg/L。有文獻(xiàn)報(bào)道，黑大豆種皮花色苷對O2·- 清除率的IC50值是40.6 mg/L[11]，與其相比紫薯花色苷對O2·- 的清除率稍弱。

2.3.3 紫薯花色苷對羥自由基（·OH）的清除能力

不同濃度的紫薯花色苷溶液及相應(yīng)的VC溶液對·OH的清除能力如圖8所示。由圖8可見，紫薯花色苷的·OH清除能力明顯高于相同濃度的Vc。當(dāng)濃度大于200 mg/L時，清除能力基本飽和，VC的最大清除率只有49.28%，而紫薯花色苷的最大清除率達(dá)到95.86%。文獻(xiàn)報(bào)道，濃度為200 mg/L的藍(lán)靛果、黑豆、篤斯越橘對羥自由基的抑制率分別為88.6%、85.8%和93.4%[12]，均比同濃度下紫薯花色苷的清除能力弱。計(jì)算得到的紫薯花色苷及VC對羥自由基清除率的IC50值分別為70.830和1 176.278 mg/L。

2.3.4 紫薯花色苷的總抗氧化活力 相同濃度（200 mg/L）下紫薯花色苷溶液及相應(yīng)的VC溶液的總抗氧化能力見表3。由表3可知，相同濃度下紫薯花色苷總抗氧化能力強(qiáng)于VC，二者的平均值分別是101.38、62.20 U/mg。而3組實(shí)驗(yàn)的標(biāo)準(zhǔn)偏差分別是3.71、1.70，相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為3.66%、2.74%，說明實(shí)驗(yàn)的重現(xiàn)性和精密度良好，數(shù)據(jù)有一定的有效性。

3 討論與結(jié)論

本研究采用酸化乙醇溶劑浸提紫薯中的花色苷組分，通過單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面分析法得到了紫薯花色苷提取的較優(yōu)條件，利用Design Expert 軟件優(yōu)化了提取工藝，并建立二次多項(xiàng)式回歸模型，通過方差分析、響應(yīng)面分析和驗(yàn)證試驗(yàn)表明該模型可靠，可以較準(zhǔn)確地預(yù)測提取液中紫薯花色苷的含量。

單因素實(shí)驗(yàn)探討了乙醇濃度、鹽酸濃度、料液比和浸提時間對浸提效果的影響。提取液花色苷含量隨乙醇濃度先增后減，推測可能是溶劑極性減弱導(dǎo)致，這與李穎暢[13]對藍(lán)莓花色苷提取的研究報(bào)道相一致。由于紫薯樣品中鐵等金屬離子含量較大， 花色苷在中性條件下與金屬離子發(fā)生絡(luò)合沉淀， 沉積在纖維中不利于提取。通過酸化處理才能斷裂花色苷與蛋白質(zhì)、多糖及本身離子間的氫鍵和疏水鍵， 及金屬離子絡(luò)合鍵， 提高提取率[14]。本實(shí)驗(yàn)中，紫薯花色苷含量隨著鹽酸濃度增加而上升。通常在一定范圍內(nèi)，紫薯花色苷得率會隨液料比增大而增大；但當(dāng)其超過一定范圍，紫薯花色苷濃度平緩，可能是因?yàn)榇藭r花色苷分子間作用力減弱，穩(wěn)定性降低，導(dǎo)致總花色苷得率降低。

響應(yīng)曲面法不僅克服了單因素忽視因素間互作關(guān)系的缺點(diǎn)，并且能夠彌補(bǔ)其他一些試驗(yàn)不能在給出的整個區(qū)內(nèi)找到因素和響應(yīng)值之間明確回歸方程的缺點(diǎn)[15]。響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)的方差分析判斷出影響紫薯花色苷浸出含量因素的主次順序是：浸提時間>液料比>乙醇濃度。最佳提取條件：乙醇濃度60%，鹽酸濃度0.10%，浸提時間127 min，液料比18 ∶ 1。該條件下提取液中花色苷含量為2.680 mg/g。該得率明顯高于施鵬飛等[16]以用檸檬酸水溶液為提取劑得到的1.59 mg/g的浸提效果，但要小于張慢等[17]以酸化乙醇為溶劑，采用酶-超聲波輔助提取紫薯花青素的得率3.581 mg/g，浸提時間上也比本實(shí)驗(yàn)結(jié)果大大縮短，只要33 min，說明傳統(tǒng)溶劑浸提法仍有較大的提升空間。

生物體中自由基導(dǎo)致的氧化作用會引發(fā)一系列的疾病如癌癥、冠心病、風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎等[18-20]。近些年來，已經(jīng)有許多關(guān)于各種來源的花色苷抗氧化功能的報(bào)道。江巖等[21]的研究結(jié)果表明，藥桑葚花色苷對于超氧陰離子清除率、DPPH自由基清除率均高于VC和蘆丁。本研究以VC作為對照，主要從DPPH自由基、超氧陰離子自由基（O2·- ）、羥自由基（·OH）清除率及總抗氧化活力4個方面來評價紫薯花色苷的體外抗氧化能力。結(jié)果表明：紫薯花色苷具有較強(qiáng)的抗氧化活性，體外抗氧化能力高于同濃度下的VC，其對DPPH·、O2·- 和·OH均有較好的清除活性，IC50值分別為1.245、332.291和70.830 mg/L，紫薯花色苷粗提物的總抗氧化能力為101.38 U/mg。羅春麗等[22]報(bào)道，紫薯花青素對·OH清除率可達(dá)91.93%，對O2·- 的清除率為47.25%。田喜強(qiáng)等[23]的研究結(jié)果表明0.1 mg/mL的花青素清除羥基自由基達(dá)到50%，且低濃度下花青素清除羥基自由基的效率明顯優(yōu)于抗壞血酸。陳小婕等[24]的研究也表明，紫薯花色苷的清除O2·- 能力高于VC和VE，花色苷的總抗氧化能力略低于VC，但明顯高于VE。這都說明了紫薯花色苷具有良好的體外抗氧化效果，是一種值得研究開發(fā)的功能因子。

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