劉暉杰,許 丹,彭 榮
1湖北省文理學(xué)院附屬襄陽市中心醫(yī)院腫瘤科,襄陽 441021 2湖北省武漢市中醫(yī)院消化內(nèi)科,武漢 430014 3湖北省宜城市醫(yī)院腫瘤科,宜城 441400
實(shí)驗(yàn)研究
PI3K/Akt途徑在MMC誘導(dǎo)的肝干細(xì)胞凋亡中的作用*
劉暉杰1,許 丹2,彭 榮3
1湖北省文理學(xué)院附屬襄陽市中心醫(yī)院腫瘤科,襄陽 4410212湖北省武漢市中醫(yī)院消化內(nèi)科,武漢 4300143湖北省宜城市醫(yī)院腫瘤科,宜城 441400
目的 探討PI3K/Akt途徑在絲裂霉素(mitomycin,MMC)誘導(dǎo)的肝干細(xì)胞凋亡中的作用。方法 用MMC刺激大鼠肝干細(xì)胞,觀察MMC刺激不同時(shí)間(6、12、24 h)對(duì)WB-F334細(xì)胞凋亡率的影響,以及不同濃度(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL)的MMC對(duì)WB-F334細(xì)胞的細(xì)胞毒作用,加入磷脂酰肌醇-3激酶/蛋白激酶B(PI3K/Akt)抑制劑曲西立濱(triciribine,API-2)和p38絲裂原活化蛋白激酶(p38 MAPK)抑制劑SB203580后觀察MMC對(duì)WB-F334細(xì)胞凋亡率的影響,探討MMC調(diào)節(jié)WB-F334細(xì)胞凋亡的信號(hào)途徑。結(jié)果 MMC對(duì)WB-F334細(xì)胞凋亡率的影響隨作用時(shí)間延長而上升(P<0.05);與對(duì)照組比較,不同濃度的MMC對(duì)肝干細(xì)胞有明顯細(xì)胞毒作用,且隨著MMC濃度的升高而上升;Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示:MMC刺激WB-F334細(xì)胞15 min后MAPK、Akt均發(fā)生磷酸化,且隨著時(shí)間延長而減弱,60 min后磷酸化消失,說明p38 MAPK及PI3K/Akt途徑能夠被MMC激活;當(dāng)MMC處理的細(xì)胞加入了p38 MAPK抑制劑后,抑制劑處理組中細(xì)胞的凋亡率與MMC處理組并無顯著差異(P>0.05),說明MAPK途徑對(duì)MMC誘導(dǎo)WB-F334細(xì)胞凋亡并沒有明顯的作用;而當(dāng)MMC處理的細(xì)胞加入了Akt抑制劑后,Akt抑制劑處理組中細(xì)胞的凋亡率與MMC處理組相比顯著降低(P<0.05),表明PI3K/Akt途徑對(duì)MMC誘導(dǎo)WB-F334細(xì)胞凋亡有明顯的作用。結(jié)論 MMC能夠刺激肝干細(xì)胞WB-F334發(fā)生凋亡,而其誘導(dǎo)凋亡的作用是通過激活PI3K/Akt信號(hào)通路實(shí)現(xiàn)的。
肝干細(xì)胞; 細(xì)胞凋亡; 絲裂霉素; 磷脂酰肌醇-3激酶; 蛋白激酶B; 信號(hào)通路
之前的研究表明肝干細(xì)胞可促進(jìn)肝組織損傷后再生,增強(qiáng)機(jī)體的肝功能自修復(fù)效果。肝組織內(nèi)許多細(xì)胞因子能夠調(diào)控肝干細(xì)胞分化、增殖[1],可顯著促進(jìn)肝干細(xì)胞再生、生長及凋亡,因此一旦這些因子的表達(dá)出現(xiàn)異常,很可能影響肝功能并引起肝臟疾病。
絲裂霉素(mitomycin,MMC)由鏈霉菌提取,化學(xué)結(jié)構(gòu)含有苯醌、乙酰亞胺基及氨甲酰,可與DNA鏈形成交聯(lián),從而抑制細(xì)胞DNA復(fù)制[2],可誘導(dǎo)胃癌、結(jié)腸癌、肝癌、胰腺癌、非小細(xì)胞肺癌及乳腺癌等腫瘤細(xì)胞凋亡。磷脂酰肌醇-3激酶/蛋白激酶B(PI3K/Akt)作為誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡主要信號(hào)途徑之一,其功能可能受到MMC調(diào)控[3],但具體作用機(jī)制尚不清楚。本文通過研究PI3K/Akt和絲裂原激活的蛋白激酶(mitogen activated protein kinases,MAPK)信號(hào)途徑對(duì)MMC誘導(dǎo)大鼠肝干細(xì)胞凋亡的影響,探討其作用機(jī)制。
1.1 實(shí)驗(yàn)材料
從美國Sigma公司購置大鼠肝干細(xì)胞WB-F334、MMC、p38 MAPK抑制劑SB203580、PI3K/Akt抑制劑曲西立濱(triciribine,API-2)。DMEM培養(yǎng)液及胎牛血清購自美國Gibco公司,DNM-9602酶標(biāo)分析儀購自上海精密儀器儀表有限公司,流式細(xì)胞儀購自美國貝克曼公司,MTT試劑盒購自上海博谷生物科技有限公司。
1.2 細(xì)胞凋亡率檢測(cè)方法
WB-F334細(xì)胞按照每孔2×106個(gè)細(xì)胞密度接種于6孔板,分別加入0.2、0.4、0.8、1.0 mg/mL的MMC,對(duì)照組滴入等體積含10%胎牛血清DMEM培養(yǎng)液,各組細(xì)胞滴入0.25%胰酶消化后,收集細(xì)胞制成單細(xì)胞懸液,1 200 r/min離心5 min,棄培養(yǎng)液;冷PBS洗細(xì)胞2次,1 200 r/min離心5 min,收集細(xì)胞;用400 μL 1× 結(jié)合緩沖液懸浮細(xì)胞,濃度大約為1×106/mL;在細(xì)胞懸浮液中加入5 μL Annexin Ⅴ-FITC,混勻后于4℃避光條件下孵育15 min;加入10 μL PI后輕輕混勻于4℃避光條件下孵育5 min,2 h內(nèi)于流式細(xì)胞儀中檢測(cè),實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.3 細(xì)胞毒作用檢測(cè)方法
3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽(3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2-H-tetrazolium bromide,MTT)法測(cè)定細(xì)胞毒作用,WB-F344細(xì)胞按照5×105/孔置入96孔板,每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔,待細(xì)胞貼壁后,加入0.2、0.4、0.8、1.0 mg/mL的MMC,對(duì)照組滴入等體積含10%胎牛血清DMEM培養(yǎng)液,作用6、12、24 h后,置于37℃、5%CO2孵箱內(nèi)孵育24 h后,每孔滴入MTT 10 μL,37℃反應(yīng)6 h后,每孔再滴入鹽酸異丙醇100 μL,混勻、靜置20 min,DNM-9602酶標(biāo)分析儀檢測(cè)各孔A570nm值。
1.4 Western blot檢測(cè)信號(hào)分子磷酸化
取各組培養(yǎng)細(xì)胞調(diào)整細(xì)胞至2×106個(gè),用磷酸鹽緩沖液洗3次,2 min/次,滴入600 μL高效蛋白裂解液(radio-immunoprecipitation assay,RIPA),置于冰上30 min,細(xì)胞刮取器刮取細(xì)胞,4℃下15 000 r/min離心30 min,取上清液(細(xì)胞蛋白溶解成分)。選擇十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺進(jìn)行常規(guī)凝膠電泳,分離膠濃度為10%;100 V下以PVDF膜轉(zhuǎn)膜,5%BSA封閉60 min后,滴入兔抗鼠Anti-PI3K或p38 MAPK一抗(用API-2或SB203580按照1∶2 000稀釋)中反應(yīng)1 h,TBST洗3次,10 min/次。置辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔IgG(應(yīng)用API-2或SB203580按照1∶5 000稀釋)二抗中止反應(yīng)l h,TBST洗3次,10 min/次。ECL系統(tǒng)檢測(cè)、膠片顯影。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
2.1 MMC作用不同時(shí)間WB-F334細(xì)胞凋亡率的變化比較
MMC作用6 h的WB-F334細(xì)胞凋亡率(9.18±10.45)%,12 h的WB-F334細(xì)胞凋亡率(32.67±12.58)%,24 h的WB-F334細(xì)胞凋亡率(58.42±12.09)%,均高于對(duì)照組(2.44±8.73)%,且隨時(shí)間的增加而上升(均P<0.05)。
2.2 不同濃度的MMC對(duì)肝干細(xì)胞的細(xì)胞毒作用比較
分別用0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL的MMC刺激大鼠的肝干細(xì)胞24 h,空白對(duì)照組和各濃度組的A值分別為0.835、0.601、0.574、0.498、0.369、0.305;與對(duì)照組比較,不同濃度的MMC對(duì)肝干細(xì)胞有明顯細(xì)胞毒作用,且隨著MMC濃度的升高而上升(圖1)。
圖1 不同濃度的MMC對(duì)肝干細(xì)胞的細(xì)胞毒作用比較Fig.1 Comparison of cytotoxicity of different concentrations of MMC on liver stem cells
2.3 MMC對(duì)WB-F334細(xì)胞不同信號(hào)途徑的激活
通過Western blot法檢測(cè)各信號(hào)分子的激活,結(jié)果如圖2所示。MMC刺激WB-F334細(xì)胞15 min后,與刺激前相比較,細(xì)胞中磷酸化MAPK、Akt(p-MAPK,p-Akt)蛋白的表達(dá)水平均顯著升高,提示MAPK和Akt蛋白均被活化;而且激活作用隨著時(shí)間延長而減弱,刺激30 min后,p-MAPK及p-Akt的表達(dá)水平呈現(xiàn)明顯下降的趨勢(shì),直至60 min后p-MAPK及p-Akt幾乎不表達(dá),說明MMC可以在短時(shí)間內(nèi)有效激活WB-F334細(xì)胞中的p38 MAPK及PI3K/Akt信號(hào)通路。
圖2 MMC對(duì)WB-F334細(xì)胞MAPK及PI3K/Akt信號(hào)通路的激活Fig.2 MMC activated MAPK and PI3K/Akt signaling pathway in WB-F334 cells
2.4 p38 MAPK及PI3K/Akt信號(hào)通路在MMC誘導(dǎo)的WB-F334細(xì)胞凋亡中的作用
為了進(jìn)一步研究p38 MAPK及PI3K/Akt信號(hào)通路在MMC誘導(dǎo)的WB-F334細(xì)胞凋亡中的作用,我們將細(xì)胞分為4個(gè)組別,分別為未處理組(control),MMC處理組(MMC),MMC處理組+ p38 MAPK抑制劑SB203580組(SB)及MMC處理組+PI3K/Akt抑制劑API-2組(API-2),以研究p38 MAPK及PI3K/Akt信號(hào)通路在MMC誘導(dǎo)的WB-F334細(xì)胞凋亡中的作用。首先,為了驗(yàn)證SB203580及API-2的效果,我們使用Western blot方法比較加入API-2及SB203580后MMC處理組WB-F334細(xì)胞中p-MAPK及p-Akt的表達(dá)情況。如圖3所示,與未加抑制劑相比,當(dāng)加入了SB203580后,MMC刺激的WB-F334細(xì)胞中未見p-MAPK的表達(dá),提示SB203580顯著抑制了MAPK的磷酸化,而加入API-2對(duì)WB-F334細(xì)胞中MAPK的磷酸化并未產(chǎn)生影響;而當(dāng)加入了API-2后,WB-F334細(xì)胞中Akt的磷酸化程度明顯減弱,而加入SB203580對(duì)WB-F334細(xì)胞中Akt的磷酸化并未產(chǎn)生影響。
接下來我們研究了p38 MAPK及PI3K/Akt信號(hào)通路在MMC誘導(dǎo)的WB-F334細(xì)胞凋亡中的作用。結(jié)果顯示,MMC組(33.74±5.57)%,SB組(34.06±5.49)%及API-2組(12.04±5.62)%的細(xì)胞凋亡率均顯著高于control組(2.44±8.73)%,且差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05)。此外,SB組與MMC組中細(xì)胞的凋亡率并無顯著差異(P>0.05),提示SB對(duì)MMC誘導(dǎo)的WB-F334細(xì)胞凋亡并沒有明顯的作用;而API-2組中的細(xì)胞凋亡率明顯低于MMC組,提示API-2對(duì)MMC誘導(dǎo)的WB-F334細(xì)胞凋亡有明顯的抑制作用(P<0.05)。
圖3 p38 MAPK抑制劑和PI3K/Akt抑制劑對(duì)MAPK及PI3K/Akt信號(hào)通路的抑制作用Fig.3 Effect of p38 MAPK inhibitor and Akt inhibitor on MAPK and PI3K/Akt signaling pathway in WB-F334 cells
肝干細(xì)胞可被定向誘導(dǎo)分化成肝細(xì)胞和膽管細(xì)胞[4],當(dāng)肝細(xì)胞受到嚴(yán)重?fù)p害或受特定因素影響而造成肝臟組織再生時(shí),可選擇促使肝干細(xì)胞增殖、分化,實(shí)現(xiàn)對(duì)肝損傷的修復(fù)[5]。信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑作為調(diào)控細(xì)胞發(fā)育和生長的關(guān)鍵性因素之一,可顯著影響細(xì)胞增殖、分化及凋亡等機(jī)制。
PI3K屬于機(jī)體細(xì)胞內(nèi)重要磷脂酰肌醇激酶之一,結(jié)構(gòu)包括1個(gè)催化亞基和1個(gè)調(diào)節(jié)亞基[6]。該蛋白酶可作為關(guān)鍵信號(hào)分子參與機(jī)體多種生理活動(dòng)。Akt則為PI3K下游直接靶蛋白[7],屬于一種原癌基因c-Akt過表達(dá)產(chǎn)物。已有研究者將多種細(xì)胞因子與其受體相互結(jié)合、作用生成PI3K基因p85片段亞單位位點(diǎn),其具有高親和性,可刺激Akt活化而誘發(fā)細(xì)胞生命活動(dòng)[8]。文獻(xiàn)報(bào)道稱,PI3K/Akt通路可調(diào)控多種細(xì)胞生理信息傳導(dǎo),參與機(jī)體內(nèi)各細(xì)胞周期運(yùn)轉(zhuǎn)[9-10],啟動(dòng)細(xì)胞凋亡機(jī)制,并激活細(xì)胞侵襲特性。在肝細(xì)胞再生的過程中,有許多細(xì)胞因子參與肝細(xì)胞的生長、凋亡調(diào)控。MAPK作為一類胞質(zhì)內(nèi)蛋白激酶,其家族成員包括細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(ERK)、p38 MAPK和c-Jun氨基末端激酶(JNK)[11],均可調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、分化或凋亡等?;诖?,筆者認(rèn)為可通過人工干預(yù)方式調(diào)控MAPK和PI3K/Akt通路,實(shí)現(xiàn)對(duì)肝干細(xì)胞生長、增殖及分化的定向誘導(dǎo)。
研究顯示[12],機(jī)體內(nèi)多種細(xì)胞因子均可調(diào)控肝組織細(xì)胞增殖及凋亡,從而促使肝臟再生。MMC可由鏈霉菌提取,分子含有苯醌、乙酰亞胺基和氨甲酰等活性基團(tuán),并于DNA鏈形成交聯(lián)從而實(shí)現(xiàn)對(duì)DNA及RNA轉(zhuǎn)錄的調(diào)控,可誘導(dǎo)肝細(xì)胞或腫瘤細(xì)胞凋亡。但既往研究中,關(guān)于MMC誘發(fā)肝干細(xì)胞凋亡及其在肝干細(xì)胞生長調(diào)控過程中具體作用文獻(xiàn)較少。在本研究中,筆者通過選擇不同濃度MMC對(duì)肝干細(xì)胞采取細(xì)胞毒干擾,結(jié)果顯示,MMC作用6、12和24 h時(shí)的WB-F334細(xì)胞凋亡率均高于對(duì)照組,且隨時(shí)間的增加而上升,而MMC對(duì)肝干細(xì)胞的細(xì)胞毒作用也隨MMC濃度升高而上升,結(jié)果表明MMC可明顯抑制肝干細(xì)胞增殖及促使肝干細(xì)胞凋亡。
在研究中,筆者進(jìn)一步采取MMC刺激WB-F334細(xì)胞,結(jié)果顯示MAPK,Akt均發(fā)生磷酸化,且磷酸化程度隨著時(shí)間而減弱,這表明p38 MAPK和PI3K/Akt途徑能夠被MMC激活。在此基礎(chǔ)上,筆者使用抑制劑API-2阻斷PI3K/Akt和SB203580阻斷p38 MAPK,結(jié)果顯示API-2處理可以成功阻斷Akt的磷酸化過程,而其對(duì)p38 MAPK的磷酸化并無影響;SB203580可以成功阻斷p38 MAPK的磷酸化而并不影響Akt的磷酸化。我們發(fā)現(xiàn)MAPK途徑阻斷后,由MMC引起的肝干細(xì)胞凋亡率并沒有受到明顯抑制,而PI3K/Akt途徑被阻斷后則造成MMC誘導(dǎo)凋亡效應(yīng)顯著下降,這表明MMC誘導(dǎo)肝干細(xì)胞凋亡機(jī)制可能以PI3K/Akt途徑介導(dǎo)為主,而p38 MAPK途徑可能不參與MMC介導(dǎo)肝干細(xì)胞凋亡過程或參與程度較低。
綜上所述,MMC能夠刺激肝干細(xì)胞WB-F334發(fā)生凋亡,其誘導(dǎo)凋亡的作用是通過激活PI3K/Akt信號(hào)通路實(shí)現(xiàn)的。當(dāng)然,信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)調(diào)節(jié)細(xì)胞生理功能作用機(jī)制較復(fù)雜,故仍需進(jìn)一步研究加以完善。
[1] 牛堅(jiān),朱樂樂,王月,等.下調(diào)CD133表達(dá)對(duì)肝癌細(xì)胞惡性生物學(xué)行為的影響[J].中國普通外科雜志,2016,25(1):77-82.
[2] 康朋朋.miR-148a在HMGB1誘導(dǎo)的小鼠系膜細(xì)胞增殖中的作用及其可能機(jī)制[D].石家莊:河北醫(yī)科大學(xué),2014.
[3] 張雪,李大玉,祝小波,等.Artemis對(duì)人肝癌細(xì)胞系BEL-7402/5FU DNA損傷的影響[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2016,36(3):353-357.
[4] Martin V,Wilhelm P,Hanne I.Activation of the SOS response increases the frequency of small colony variants[J].BMC Res Notes,2015,8(1):1-5.
[5] 瞿虎,袁浩鋒,汪中揚(yáng),等.鹽霉素及其聯(lián)合紫杉醇、絲裂霉素對(duì)人膀胱移行細(xì)胞癌T24細(xì)胞增殖的抑制作用[J].中華實(shí)驗(yàn)外科雜志,2015,32(9):2190-2193.
[6] Lu W Y,Bird T G,Luke B,et al.Hepatic progenitor cells of biliary origin with liver repopulation capacity[J].Nat Cell Biol,2015,17(8):971-983.
[7] 姚鵬,楊大偉,胡大榮.PI3K/Akt在絲裂霉素誘導(dǎo)肝干細(xì)胞凋亡中的作用[J].中華肝臟病雜志,2015,23(3):200-203.
[8] Zuo C,Qiu X,Liu N et al.Interferon-α and cyclooxygenase-2 inhibitor cooperatively mediates TRAIL-induced apoptosis in hepatocellular carcinoma[J].Exp Cell Res,2015,333(2):316-326.
[9] 嚴(yán)威,文霆,林素瓊,等.SIS3逆轉(zhuǎn)多藥耐藥肝癌細(xì)胞的干性作用[J].中華腫瘤雜志,2015,37(10):731-735.
[10] 韋柳婷,馮潔,莫書榮.PI3K-Akt信號(hào)通路與腫瘤相關(guān)性的研究進(jìn)展[J].腫瘤學(xué)雜志,2014,20(4):331-336.
[11] Duan S,Yuan G,Liu X,et al.PTEN deficiency reprogrammes human neural stem cells towards a glioblastoma stem cell-like phenotype[J].Nat Commun,2015,6:10068.
[12] Manfredi M A.Endoscopic management of anastomotic eso-phageal strictures secondary to esophageal atresia[J].Gastrointest Endosc Clin N Am,2016,26(1):201-219.
(2016-10-11 收稿)
Role of PI3K/Akt Pathway in MMC Induced Apoptosis of Liver Stem Cells
Liu Huijie1,Xu Dan2,Peng Rong3
1DepartmentofOncology,XiangyangCentralHospitalAffiliatedtoHubeiCollegeofArtsandScience,Xiangyang441021,China2DepartmentofGastroenterology,WuhanHospitalofTraditionalChineseMedicine,Wuhan430014,China3DepartmentofOncology,YichengHospital,Yicheng441400,China
Objective To investigate the role of PI3K/Akt pathway in mitomycin(MMC) induced apoptosis of liver stem cells.Methods Rat liver stem cells were stimulated with MMC,and the effect of MMC on the apoptosis rate of WB-F334 cells at different time points(6,12,24 h),as well as the effects of different concentrations of (0.2,0.4,0.6,0.8,1.0 mg/mL) MMC on the cytotoxicity of WB-F334 cells were evaluated;moreover,cells were treated with p38 MAPK inhibitor and PI3K/Akt inhibitor,and the roles of MAPK and PI3K/Akt signaling pathway in MMC mediated apoptosis of WB-F334 cells were explored.Results The apoptosis rate of the MMC-treated WB-F334 increased with time(P<0.05).Compared with the un-treated control group,different concentrations of MMC had obvious cytotoxicity on liver stem cells,and the cytotoxicity increased with concentration.Western blotting results showed that Akt and MAPK in WB-F334 cells were significantly phosphorylated 15 min after MMC stimulation;the degree of phosphorylation decreased with time,and phosphorylation disappeared after 60 min,suggesting that the p38 MAPK,PI3K/Akt pathway can be activated by MMC;furthermore,when p38 MAPK inhibitor was added to MMC treated cells,the apoptosis rate of p38 MAPK inhibitor treated cells showed no significant difference compared to the un-treated cells(P>0.05),indicating that the MAPK pathway had no significant effect on MMC induced WB-F334 cell death;however,when the PI3K/Akt inhibitor(API-2)was added,the apoptosis rate of API-2 treated cells was significantly decreased compared to the un-treated cells(P<0.05),indicating that the PI3K/Akt pathway had a significant effect on MMC induced apoptosis of WB-F334 cells(P<0.05).Conclusion Stimulation of MMC can induce apoptosis of hepatic stem cells WB-F334 through the activation of the PI3K/Akt signaling pathway.
hepatic stem cell; apoptosis; mitomycin; PI3K; Akt; signal pathway
*湖北省襄陽市2014年市級(jí)立項(xiàng)課題(No.20140915)
劉暉杰,女,1977年生,副主任醫(yī)師,E-mail:xfhuahua@163.com
R322.4
10.3870/j.issn.1672-0741.2017.01.015
華中科技大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2017年1期