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小檗堿對(duì)銅綠假單胞菌密度感應(yīng)缺陷株及其分泌的致病因子的作用研究*

2017-05-16 05:56:28肖紅兵廖亞玲張明偉
關(guān)鍵詞:鼠李糖小檗菌素

夏 飛, 肖紅兵, 杜 鳴, 廖亞玲, 張明偉, 王 平

1湖北省第三人民醫(yī)院藥學(xué)部,武漢 4300332湖北省武漢市黃陂區(qū)蔡店街道衛(wèi)生院,武漢 4303233湖北省武漢市第一醫(yī)院漢西分院,武漢 430022

小檗堿對(duì)銅綠假單胞菌密度感應(yīng)缺陷株及其分泌的致病因子的作用研究*

夏 飛1, 肖紅兵2, 杜 鳴1, 廖亞玲1, 張明偉1, 王 平3△

1湖北省第三人民醫(yī)院藥學(xué)部,武漢 4300332湖北省武漢市黃陂區(qū)蔡店街道衛(wèi)生院,武漢 4303233湖北省武漢市第一醫(yī)院漢西分院,武漢 430022

目的 觀察小檗堿對(duì)銅綠假單胞菌(Pseudomonasaeruginosa,PA)密度感應(yīng)缺陷株的生長(zhǎng)及其分泌的致病因子的影響,初步探索小檗堿對(duì)銅綠假單胞菌密度感應(yīng)系統(tǒng)及調(diào)控致病因子表達(dá)的作用機(jī)制。方法 不同濃度小檗堿分別與銅綠假單胞菌野生株P(guān)AO1、密度感應(yīng)系統(tǒng)(quorum sensing system,QS)基因缺陷株P(guān)AO JP2、臨床分離QS缺陷株共培養(yǎng),運(yùn)用倍比稀釋法測(cè)定最小抑菌濃度,紫外分光光度法測(cè)定綠膿菌素分泌量,苔黑酚法測(cè)定鼠李糖脂水平,結(jié)晶紫法測(cè)定生物被膜起始量,熒光定量PCR檢測(cè)各株QS基因表達(dá)。結(jié)果 小檗堿對(duì)銅綠假單胞菌野生株P(guān)AO1 MIC值為12.50 mg/mL,臨床分離株C84 MIC值為1.56 mg/mL,PAO JP2株與C39株MIC值均為3.12 mg/mL,C104和C117株MIC值均為6.25 mg/mL。在低于MIC濃度下,小檗堿對(duì)PAO1株、C104株、C117株綠膿菌素水平有顯著抑制,且對(duì)各QS缺陷株鼠李糖脂有不同程度抑制作用。此外,PAO JP2株、C39株、C84株生物被膜可被小檗堿顯著抑制。各株殘留的LasR和rhI轉(zhuǎn)錄均受到小檗堿顯著抑制。結(jié)論 小檗堿對(duì)臨床分離QS缺陷株有良好的抑制作用,可能通過(guò)調(diào)節(jié)QS基因多種不同細(xì)菌毒力因子進(jìn)行調(diào)控。

銅綠假單胞菌; 小檗堿; 密度感應(yīng)缺陷; 致病因子

銅綠假單胞菌(Pseudomonasaeruginosa,PA)是臨床常見(jiàn)人體定植菌,可在機(jī)體抵抗力低下時(shí)誘發(fā)感染[1]。該菌對(duì)多種抗生素具有天然耐藥能力,使得臨床抗感染治療面臨巨大風(fēng)險(xiǎn),輕者病情遷延不愈,重者發(fā)生肺囊性纖維化直至死亡[2]。該菌還有多種致病因子,包括胞外蛋白酶、酯酶、毒素、鞭毛和菌毛等[3]。近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn),銅綠假單胞菌耐藥與該菌密度感應(yīng)系統(tǒng)(quorum sensing system,QS)調(diào)控相關(guān)[4]。這使對(duì)銅綠假單胞菌的防治有了新的可能,即通過(guò)干擾密度感應(yīng)系統(tǒng)抑制細(xì)菌耐藥與減弱細(xì)菌毒力和侵襲力[5-6],然而臨床上仍然有一部分從銅綠假單胞菌感染病例中分離的菌株為QS缺陷株[7],這表明該菌致病力的調(diào)控方面還有很多未為人知。本課題組在前期研究中發(fā)現(xiàn)黃連有效成分小檗堿對(duì)野生銅綠假單胞菌PAO1株具有殺菌或抑制作用,且對(duì)致病因子具有負(fù)調(diào)控作用[7-8]。故在前期研究基礎(chǔ)上,為進(jìn)一步探討小檗堿對(duì)QS系統(tǒng)的干預(yù)作用及機(jī)制,本研究以臨床分離的QS功能缺陷菌株為對(duì)象,研究小檗堿對(duì)QS功能缺陷株的影響,以期豐富中藥活性成分對(duì)細(xì)菌密度感應(yīng)系統(tǒng)調(diào)控的干預(yù)機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

1.1.1 實(shí)驗(yàn)用菌株及藥物 野生菌株P(guān)AO1和QS基因缺陷株P(guān)AO JP2為湖北省第三人民醫(yī)院實(shí)驗(yàn)室保存。QS功能缺陷株C39、C84、C104、C117為前期研究分離與保存[7],菌株特性見(jiàn)表1。實(shí)驗(yàn)前3 d,取上述保存于-80℃菌株快速解凍,取菌液接種于瓊脂平板,48 h后挑取生長(zhǎng)良好的菌落于LB培養(yǎng)液37℃ 150 r/min培養(yǎng)過(guò)夜,取適量菌液用LB培養(yǎng)液稀釋至A600 nm0.6備用。小檗堿(西安沃森生物科技有限公司,批號(hào):20140619),純度98%。

表1 實(shí)驗(yàn)用銅綠假單胞菌菌株QS基因與生物學(xué)特性

1.1.2 實(shí)驗(yàn)試劑 剛果紅彈性蛋白(美國(guó)Sigma公司,批號(hào):108K3575);0.2 mol/L鹽酸溶液;10 mmol/L Na2HPO4溶液;酵母提取物(Oxoid LP0021,批號(hào):1606468);胰蛋白胨(OxiA LP0042,批號(hào):1658785);氯化鈉(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,批號(hào):20121022)。

1.1.3 實(shí)驗(yàn)儀器 紫外分光光度計(jì)(HITACH U-2900、Amersham Genequant pro);生物安全柜(蘇州安泰,BHC-1300ⅡA/B3);小型臺(tái)式高速離心機(jī)(Eppendorf,5415D);低溫高速離心機(jī)(長(zhǎng)沙湘儀離心機(jī)儀器有限公司,H2050R);臺(tái)式恒溫振蕩器(太倉(cāng)華美生化儀器廠,THZ-C);電熱恒溫培養(yǎng)箱(上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司,DNP-9272BS-Ⅲ);熒光定量PCR儀(Life Technologies,ABI 7500 Fast)。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 最小抑菌濃度測(cè)定 根據(jù)前期研究結(jié)果采取微量倍比稀釋法將小檗堿稀釋為0.39~25 mg/mL濃度梯度。陰性對(duì)照組加入2 mL LB培養(yǎng)液。取新鮮菌液稀釋至A600 nm0.6,每管加入0.1 mL。混勻后置恒溫振蕩搖床37℃、150 r/min培養(yǎng)18 h;觀察每孔細(xì)菌生長(zhǎng)情況,以最低無(wú)可見(jiàn)細(xì)菌生長(zhǎng)濃度為最小抑菌濃度(minimum inhibitory concentrations,MIC)。隨后10 000 r/min離心細(xì)菌懸液1 min,分離細(xì)菌沉淀與上清。向沉淀中加入2 mL 0.85% NaCl溶液(含0.1%吐溫80),反復(fù)吹吸后,轉(zhuǎn)移至振蕩儀振蕩2 min,測(cè)定菌液吸光度值A(chǔ)600 nm。設(shè)立PAO1陽(yáng)性對(duì)照和不加小檗堿的各分離株平行對(duì)照。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取平均值。根據(jù)MIC值,選擇最接近MIC的亞MICs濃度開(kāi)展下列實(shí)驗(yàn)。

1.2.2 綠膿菌素測(cè)定 收集實(shí)驗(yàn)組、對(duì)照組培養(yǎng)上清,加入2 mL氯仿充分振蕩,靜置分層后分離下層溶液。取下層液體加入0.2 mol /L HCl 0.8 mL并充分振蕩后靜置,分離上層液體以16 000 g離心2 min,取上清測(cè)定A520 nm值[9]。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取平均值。

1.2.3 鼠李糖脂測(cè)定 采用苔黑酚法Ⅲ測(cè)定鼠李糖脂水平[10],取上述各組培養(yǎng)上清1 mL加入乙醚振蕩后凍干抽提。抽提物加入0.5 mL雙蒸水定容,取100 μL溶液加入900 μL苔黑酚中(含53% H2SO4,V/V),置80℃加熱30 min后,冷卻至室溫,并測(cè)量A421 nm值,所得值代入函數(shù)關(guān)系式中計(jì)算鼠李糖含量,并以1 g鼠李糖=2.5 g鼠李糖脂計(jì)算。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取平均值。

1.2.4 生物被膜起始量測(cè)定 準(zhǔn)備1.5 cm長(zhǎng)硅膠管高壓滅菌后置玻管內(nèi),加入A600 nm值為0.6的新鮮菌液3 mL,分別加入上述濃度藥液1 mL,37℃靜置培養(yǎng)。培養(yǎng)到期后取出硅膠管轉(zhuǎn)移至空白玻管內(nèi)用蒸餾水清洗殘留浮游菌3次,用1%結(jié)晶紫室溫孵育15 min,用蒸餾水清洗3次后加入3 mL 95%乙醇洗滌,測(cè)定洗滌液A540 nm值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取平均值。

1.2.5 實(shí)時(shí)熒光定量PCR 根據(jù)細(xì)菌生長(zhǎng)實(shí)驗(yàn)和彈性蛋白酶實(shí)驗(yàn),選取適宜濃度進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)QS基因表達(dá)。結(jié)果以2-ΔΔCt計(jì)算相對(duì)表達(dá)量,每個(gè)實(shí)驗(yàn)組重復(fù)3次計(jì)算統(tǒng)計(jì)量。Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)引物并委托上海英駿生物技術(shù)有限公司合成,見(jiàn)表2。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

2 結(jié)果

2.1 小檗堿對(duì)臨床分離株的最小抑菌濃度的檢測(cè)結(jié)果

本實(shí)驗(yàn)測(cè)定了小檗堿對(duì)臨床分離銅綠假單胞菌

QS功能缺陷株的最小抑菌濃度(MIC),結(jié)果見(jiàn)表3。小檗堿對(duì)野生株P(guān)AO1最低抑菌濃度為12.50 mg/mL,PAO JP2和C39株MIC值均為3.12 mg/mL,C104和C117株MIC值均為6.25 mg/mL。C84株MIC值為1.56 mg/mL,在各QS功能缺陷株中為最低。

表2 RT-PCR引物設(shè)計(jì)

表3 臨床分離銅綠假單胞菌QS缺陷株對(duì)小檗堿最小抑菌濃度±s,n=3)

2.2 小檗堿對(duì)臨床分離QS缺陷株綠膿菌素分泌水平的影響

選取各菌株的首個(gè)亞MICs梯度觀察其受QS調(diào)控的致病因子表達(dá)水平的變化。結(jié)果如圖1所示,C104和C117株的對(duì)照組綠膿菌素水平較PAO1株對(duì)照無(wú)明顯變化,而實(shí)驗(yàn)組PAO1株、C104株、C117株綠膿菌素水平較對(duì)照均有顯著降低(均P<0.05)。PAO JP2株、C39株、C84株幾乎不表達(dá)綠膿菌素(圖1B~D),這與我們前期研究結(jié)果一致[8]。

2.3 小檗堿對(duì)臨床分離QS缺陷株鼠李糖脂的影響

繼續(xù)觀察上述條件下銅綠假單胞菌分泌鼠李糖脂的水平變化。結(jié)果如圖2所示,PAO1 JP2菌株幾乎不產(chǎn)生鼠李糖脂(圖2B),各QS功能缺陷株對(duì)照組分泌鼠李糖脂的水平介于PAO1和PAO JP2之間(圖2C~F)。小檗堿實(shí)驗(yàn)組中,PAO1、C39、C84、C104、C107株分泌鼠李糖脂水平分別較對(duì)照組有顯著降低(均P<0.05)。

2.4 小檗堿對(duì)臨床分離QS缺陷株生物被膜起始量的影響

結(jié)果如圖3A所示,PAO1菌株在6.25 mg/mL小檗堿作用下,生物被膜起始量受到顯著抑制(P<0.05)。PAO JP2菌株生物被膜起始量亦明顯低于野生株P(guān)AO1株(圖3A~B);其余臨床分離株生物被膜起始量同樣明顯低于野生株P(guān)AO1株(圖3A,3C~F)。在低于MICs濃度條件下,小檗堿作用于臨床分離菌株C39和C84的生物被膜起始量較對(duì)照組有顯著降低(P<0.05),而C104和C117無(wú)顯著下降。

A:PAO1組;B:PAO JP2組;C:C39組;D:C84組;E:C104組;F:C117組;與同組對(duì)照比較,*P<0.05圖1 小檗堿對(duì)銅綠假單胞菌QS缺陷株分泌綠膿菌素的影響(n=3)Fig.1 Effects of berberine on the pyocyanin levels of clinically isolated QS-deficient P.aeruginosa strains(n=3)

A:PAO1組;B:PAO JP2組;C:C39組;D:C84組;E:C104組;F:C117組;與同組對(duì)照比較,*P<0.05圖2 小檗堿對(duì)銅綠假單胞菌QS缺陷株分泌鼠李糖脂的影響(n=3)Fig.2 Effects of berberine on rhamnolipid secretion by the clinically isolated QS-deficient P.aeruginosa strains(n=3)

A:PAO1組;B:PAO JP2組;C:C39組;D:C84組;E:C104組;F:C117組;與同組對(duì)照比較,*P<0.05圖3 小檗堿對(duì)銅綠假單胞菌生物被膜形成的影響(n=3)Fig.3 Effect of berberine on the biofilm forming ability of P.aeruginosa strains(n=3)

2.5 小檗堿對(duì)臨床分離QS缺陷株密度感應(yīng)系統(tǒng)表達(dá)的影響

在6株QS缺陷株中,各株實(shí)驗(yàn)組QS基因的相對(duì)表達(dá)量較各株對(duì)照均有不同程度降低。其中,LasR基因,即編碼Las系統(tǒng)信號(hào)分子受體的基因在所有保留有LasR的菌株中均有顯著抑制(均P<0.05),包括JP2、C39、C104、C117(圖4A~C、E)。與之對(duì)應(yīng)的是,在僅有rh1I保留的C84株中,rh1I相對(duì)表達(dá)量有顯著下降(圖4D)(P<0.05)。其余各菌株LasI、rh1R相對(duì)表達(dá)量雖沒(méi)有明顯統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,但均呈下降趨勢(shì)。

A:PAO JP2組;B:C39組;C:C104組;D:C84組;E:C117組圖4 小檗堿對(duì)銅綠假單胞菌QS基因相對(duì)表達(dá)量的影響(n=3)Fig.4 Effect of berberine on the mRNA level of QS gene in P.aeruginosa strains(n=3)

3 討論

截止目前,已發(fā)現(xiàn)銅綠假單胞菌密度感應(yīng)系統(tǒng)是由3個(gè)不同的子系統(tǒng)組成,包括Las系統(tǒng)、rhl系統(tǒng)、PQS系統(tǒng)。研究認(rèn)為這3個(gè)子系統(tǒng)參與調(diào)控的基因約占銅綠假單胞菌全基因的4% ~12%[4,11]。其中,Las系統(tǒng)和rhl系統(tǒng)是以N-乙酰高絲氨酸內(nèi)酯(N-acyl homoserine lactones,AHLs)作為信號(hào)分子,分別為3-O-C12-HSL和C4-HSL[12];PQS系統(tǒng)則利用喹諾酮信號(hào)(Pseudomonas quinolone signal,PQS)完成密度感應(yīng)調(diào)控[13]。QS系統(tǒng)編碼并表達(dá)相應(yīng)的信號(hào)分子和受體,并以信號(hào)分子-受體復(fù)合物調(diào)控下游致病基因表達(dá),此外各子系統(tǒng)間還呈現(xiàn)級(jí)聯(lián)調(diào)控和越級(jí)調(diào)控特征[1,14]。故銅綠假單胞菌的QS信號(hào)通路被認(rèn)為是一套有效而復(fù)雜的調(diào)控機(jī)制。

本研究首先發(fā)現(xiàn)QS系統(tǒng)缺失或突變會(huì)降低小檗堿環(huán)境下的細(xì)菌MICs,即有助于提高小檗堿對(duì)臨床分離株的體外抑菌效果。然而在小檗堿環(huán)境中,PAO JP2、C39、C84株綠膿菌素的表達(dá)水平無(wú)顯著變化,這進(jìn)一步表明該致病因子主要是受LasI和rhlI調(diào)控。故此二種基因發(fā)生缺失或缺陷后,綠膿菌素便無(wú)法表達(dá),使得小檗堿未能對(duì)此3種菌株綠膿菌素產(chǎn)生抑制作用;而在C104和C117株中,僅有rhlI缺陷,故綠膿菌素水平的降低可能是受小檗堿對(duì)其余QS基因負(fù)調(diào)控的影響,特別是抑制LasI。對(duì)于鼠李糖脂,小檗堿未顯示出對(duì)PAO JP2株鼠李糖脂的負(fù)調(diào)控作用,提示鼠李糖脂的合成受LasI和rhlI的共同調(diào)控,即LasI和rhlI同時(shí)發(fā)生缺失或缺陷后,細(xì)菌便失去生成鼠李糖脂的能力。各臨床分離株鼠李糖脂水平均高于PAO JP2株,一方面符合各臨床分離株均未同時(shí)發(fā)生LasI和rhlI缺失或突變的特征;另一方面表明小檗堿可對(duì)QS缺陷株保留的多個(gè)QS基因產(chǎn)生負(fù)調(diào)控作用,如LasI和rhlI。與以上結(jié)果相異的是,小檗堿對(duì)各菌株生物被膜形成能力均有抑制作用,提示生物被膜的形成除有多種QS基因調(diào)控外,還有其他受小檗堿負(fù)調(diào)控的基因參與此過(guò)程。值得注意的是,在小檗堿環(huán)境中,4種QS基因的相對(duì)表達(dá)量均有不同程度降低,其中LasR和rhlI呈現(xiàn)顯著性降低,提示小檗堿對(duì)此2種基因轉(zhuǎn)錄的干預(yù)程度較LasI和rhl R顯著。但并不排除小檗堿對(duì)其余基因的潛在抑制作用,相關(guān)機(jī)制有待我們進(jìn)一步研究。

綜上所述,將小檗堿作為干預(yù)因素,利用銅綠假單胞菌野生株P(guān)AO1、雙缺陷株P(guān)AO JP2及4種臨床QS缺陷株為對(duì)象初步探索了QS基因?qū)Σ煌虏∫蜃拥母深A(yù)作用。初步發(fā)現(xiàn)小檗堿對(duì)QS功能缺陷株不同致病因子的調(diào)控模式不盡相同。這為深入開(kāi)展銅綠假單胞菌QS系統(tǒng)調(diào)控模式的基礎(chǔ)研究與中藥抗感染的臨床研究提供了新的研究方向與模式。

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(2016-12-15 收稿)

Inhibitory Effect of Berberine on the Growth and Virulence of Clinical Isolatesof Quorum Sensing-deficientPseudomonasaeruginosa

Xia Fei1,Xiao Hongbing2,Du Ming1etal

1DepartmentofPharmacy,TheThirdPeople’sHospitalofHubeiProvince,Wuhan430033,China2HealthCenterofCaidianStreetofHuangpiDistrict,Wuhan430323,China

Objective To investigate the effects of berberine on the growth and virulence of clinical isolates ofPseudomonasaeruginosa(P.aeruginosa)with quorum sensing(QS)deficiency and the underlying mechanism.MethodsP.aeruginosaPAO1,QS-deficient PAO JP2 and clinically isolated QS-deficient strains were cultured with berberine at difference concentrations.The minimum inhibitory concentrations(MICs)of berberine against different isolates were determined by double-dilution analysis.The secretion of pyocyanin was measured by ultraviolet spectroscopy,the amount of rhamnolipid by oricinol assay,the biofilm formation by crystal violet staining,and the transcription levels of QS gene by real-time PCR.Results The MICs of berberine againstP.aeruginosawere 12.50 mg/mL in the PAO1 strain,1.56 mg/mL in the C84 strain,3.12 mg/mL in both JP2 and C39 strains,and 6.25 mg/mL in both C104 and C117 stains.Berberine at sub-MIC could significantly decrease the pyocyanin levels in strains PAO1,C104,and C117,and suppress the rhamnolipid levels in QS-deficient stains to varying degrees.Additionally,the biofilm formation was profoundly inhibited by berberine in strains JP2,C39,and C84.The transcription of remaining LasR and rhI was significantly down-regulated by berberine at sub-MIC.Conclusion Berberine can significantly inhibit the growth of clinically isolated QS-deficientP.aeruginosastains and down-regulate the QS-dependent virulence by reducing the transcription levels of QS gene.

Pseudomonasaeruginosa; berberine; quorum-sensing deficiency; pathogenic factors

*湖北省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No.2011CDB302)

R378.991

10.3870/j.issn.1672-0741.2017.02.008

夏 飛,男,1978年生,助理研究員,E-mail:53042940@qq.com

△通訊作者,Corresponding author,E-mail:WP0166@139.com

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生物表面活性劑鼠李糖脂研究概況
交泰丸中小檗堿聯(lián)合cinnamtannin D1的降血糖作用
中成藥(2018年12期)2018-12-29 12:25:18
黃芩苷-小檗堿復(fù)合物的形成規(guī)律
中成藥(2018年3期)2018-05-07 13:34:18
硫酸黏菌素促生長(zhǎng)作用將被禁
廣東飼料(2016年6期)2016-12-01 03:43:24
銅綠假單胞菌半固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)鼠李糖脂
以甘油為底物鼠李糖脂高產(chǎn)菌株的誘變選育
多黏菌素E和多黏菌素B:一模一樣,還是截然不同?
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