陳正毅,盧雅琳,梁 豫,曾 晨,張卓旻,李攻科
(中山大學 化學學院,廣東 廣州 510275)
表面增強拉曼光譜法快速測定干果類食品中的糖精鈉
陳正毅,盧雅琳,梁 豫,曾 晨,張卓旻*,李攻科*
(中山大學 化學學院,廣東 廣州 510275)
建立了干果中糖精鈉的表面增強拉曼光譜(SERS)快速分析方法。干果樣品經水提取、C18固相萃取柱凈化除雜后進行表面增強拉曼光譜分析。該方法的線性范圍為 50.0~250 mg/L,檢出限為 0.6 g/kg,回收率為80.0%~125%,相對標準偏差(RSD,n=5)不大于8.4% 。結果表明該方法靈敏度高、雜質干擾小、準確度高,滿足干果類食品中糖精鈉的快速檢測要求,在干果類食品安全質量監(jiān)控方面具有良好的應用潛力。
表面增強拉曼光譜法;快速分析;糖精鈉;干果
糖精鈉俗稱甜精、糖精,是一種常見的人工合成甜味劑。由于糖精鈉的甜度比蔗糖、紅糖等天然甜味劑甜300~600倍[1],被廣泛添加于各類干果類食品。相關研究表明,糖精鈉具有潛在的致癌效應[2-3],影響未成年人健康[1-2],因此許多國家對干果類食品中糖精鈉的用量有嚴格規(guī)定,如歐盟對其限量為0.5~3.0 g/kg[4],中國國標(GB 2760-2014)對其限量為1.0~5.0 g/kg[5]。目前,為了獲得更好的口感和消費者認可度,許多市售干果類產品經常被過量添加糖精鈉,因此干果類產品中糖精鈉含量的快速分析對干果類產品質量監(jiān)控具有重要意義。
目前,糖精鈉的檢測方法主要有高效液相色譜法(HPLC)[5]、液相色譜-質譜聯(lián)用法(LC-MS)[6]、薄層色譜法[7]、紫外分光光度法[8]、比色法[9]、電化學法[10]、酶聯(lián)免疫法[11]等。其中,HPLC法是國家標準(GB/T 5009.28-2003)采用的分析方法[12],但操作復雜、分析耗時長,不利于大量樣品的現(xiàn)場快速檢測。酚磺鈦比色法和紫外分光光度法曾是糖精鈉的快速篩查國標方法[13],但因其樣品提取和分離過程復雜,易受食品基體成分干擾,而最終被HPLC法取代。因此,目前尚無準確有效的干果類產品中糖精鈉的現(xiàn)場快速分析方法。
表面增強拉曼光譜(Surface-enhanced Raman spectroscopy,SERS)具有快速、靈敏及指紋特征分析等特點,由于便攜SERS儀器尺寸小,非常適合于現(xiàn)場快速分析,現(xiàn)已廣泛用于食品添加劑[14]、著色劑[15]和抗生素[16]等的快速分析。但實際樣品基體復雜,嚴重影響了SERS定性定量分析的準確性,而將適當的樣品前處理方法與SERS分析結合,能有效提高SERS分析的準確性。田中群課題組[17]研發(fā)出的殼層隔絕納米粒子(Shell-isolated nanoparticle-enhanced Raman spectroscopy,SHINERS)避免了基體或者目標物與Au產生的電化學作用,獲得了準確的待測物SERS光譜,提高了SERS定性的準確度[18],已應用于食物中農藥殘留[19]、添加劑[20]等的檢測。李攻科課題組[21]建立了一種固相萃取/SERS快速檢測牛奶中三聚氰胺的方法,有效去除了牛奶基體干擾,檢出限達0.1 mg/kg,回收率達75.3%~125%。本文旨在建立一種適用于干果類食品中糖精鈉快速分析的SERS方法。通過優(yōu)化超聲提取、離心時間、固相萃取及SERS分析條件,消除基體干擾,最終實現(xiàn)了干果中糖精鈉的SERS快速分析。
1.1 儀器與試劑
Delta Nu Inspector便攜式拉曼光譜儀(美國Delta Nu);TG16-WS臺式高速離心機(湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)有限公司);MIULAB微型離心機(杭州米歐儀器有限公司)。
高級純糖精鈉(上海阿拉丁生化科技股份有限公司);SERS增強試劑CP-2(SHINERS,廈門市普識納米科技有限公司);鹽酸(分析純,廣州化學試劑廠);活性碳粉、氧化鋁(分析純,天津市福晨化學試劑廠);硅膠(分析純,煙臺黃務硅膠開發(fā)試驗廠);十八烷基硅烷鍵合硅膠(C18,上海博勢生物科技有限公司);無花果、話梅等樣品購自廣州市當地超市。
糖精鈉標準溶液的配制:用超純水配制濃度為5 000 mg/L 的糖精鈉標準儲備液,將儲備液逐級稀釋成50.0,100,150,200,250 mg/L 的系列濃度標準溶液。
1.2 樣品測定
將無花果、話梅、橄欖干樣品剪碎并搗勻,稱取2.0 g 樣品,加入10.0 mL水,300 W下超聲提取10 min,8 000 r/min離心5 min;將100 μL上清液轉移至含有0.10 g C18的固相小柱中,加2.0 mL水,接收濾液,待測。移取200 μL SERS增強試劑CP-2于拉曼管中,加入100 μL待測液和10 μL 1.2 mol/L鹽酸溶液,混勻后進行SERS檢測。SERS條件:積分時間為20 s,測定次數為3,每次測試扣除暗電流背景1次,激光功率為High,結果為Average,分辨率為Low。
2.1 樣品前處理條件的優(yōu)化
2.1.1 提取條件 采用超聲提取樣品中的糖精鈉,優(yōu)化了超聲時間和離心時間,實現(xiàn)了干果中糖精鈉的快速提取,結果如圖1A所示。在300 W超聲功率下,對比了超聲時間分別為4,6,8,10,12,14,16 min時的提取結果,結果表明,提取時間為12 min時目標峰的SERS信號開始穩(wěn)定。在8 000 r/min離心條件下,對比離心時間分別為1,3,5,7,9 min時的提取結果,結果表明,離心5 min時目標峰的SERS響應最強。離心時間過短導致雜質沉淀不完全,影響后續(xù)SERS測定,所以提取階段超聲時間設為12 min,離心時間設為5 min。
2.1.2 固相萃取條件 由于糖精鈉既包含疏水的苯環(huán)結構,又包含親水的磺胺結構,不同萃取劑的吸附性能對糖精鈉的分離富集效果不同。實驗分別考察了活性碳、硅膠、氧化鋁、C18作為固相萃取吸附劑對糖精鈉分離富集效果的影響。結果表明,活性碳、C18對糖精鈉的分離富集效果良好,但活性碳吸附的糖精鈉難以洗脫,硅膠、氧化鋁吸附劑易產生穿透現(xiàn)象,因此實驗采用C18作為吸附劑。實驗考察了不同C18吸附劑用量(0.02,0.05,0.10 g)對糖精鈉SERS檢測信號的影響,結果表明采用0.10 g C18吸附劑時,糖精鈉的SERS信號最強。實驗還考察了不同洗脫液體積(0.5,1.0,1.5,2.0,2.5 mL)對糖精鈉洗脫效果的影響,結果如圖1B所示,當洗脫液體積2.0 mL時可將糖精鈉完全洗出。
2.2 SERS分析條件的優(yōu)化
2.2.1 鹽酸用量 向待測溶液中添加鹽酸,可使SHINERS粒子表面帶正電,從而改善SHINERS粒子對糖精鈉的吸附選擇性,有效提高方法的靈敏度。實驗對比了鹽酸加入量為2,4,6,8,10,12,14,16 μL 的SERS信號,結果如圖1C所示。當HCl用量少于10 μL時,隨著HCl 加入量的增加,SERS信號增強,HCl用量為10 μL時峰信號最強;繼續(xù)加入HCl,SERS信號反而減弱。這可能是因為過多的鹽酸導致帶負電的糖精離子與H+結合,形成分子態(tài)的糖精,帶正電荷SHINERS對其吸附量降低,從而導致SERS信號減弱。糖精鈉在~710 cm-1處有明顯SERS響應,且峰強度隨濃度的增加而增大,是由SHINERS粒子與糖精鈉中帶負電的氨基連接所形成的磺胺環(huán)結構的呼吸振動引起[22-23],這也證實了H+可以促進SHINERS對糖精鈉的吸附選擇性,提高SERS響應。因此,最終選擇HCl的加入量為 10 μL。
2.2.2 SHINERS粒子與樣品體積比的優(yōu)化 為獲得最佳SERS信號,優(yōu)化了SHINERS粒子與樣品溶液體積比。在總加入體積保持一致條件下,考察了SHINERS粒子與樣品溶液的體積比分別為1∶4,1∶3,1∶2,1∶1,2∶1,3∶1,4∶1時糖精鈉的SERS特征峰響應,結果如圖1D所示。隨著體積比的增加,SERS響應逐漸增加,當比例為2∶1時SERS響應最強,繼續(xù)增加體積比反而使SERS響應降低。這是因為SHINERS粒子過少時,導致提供的熱點少而使得SERS響應弱,而SHINERS粒子過多時,由于熱點過剩導致SERS的響應減弱。因此,最終選擇SHINERS粒子與樣品溶液的體積比為2∶1。
圖2 糖精鈉標準溶液的SERS譜圖Fig.2 SERS spectra of saccharin sodium salt standard solution spectra(a-e) refer to standard solutions with concentrations of 50.0,100,150,200,250 mg/L,respectively; insert:calibration curve
圖3 實際樣品中糖精鈉的SERS圖譜Fig.3 SERS spectra of saccharin sodium salt in real samples spectra(a-d) refer to plum candy,Chinese olive,Ficus carica and 250 mg/L of standard solutions,respectively
2.3 方法選擇性的研究
通過考察干果類食品中雜質對糖精鈉SERS分析的干擾,研究了方法的選擇性。以~710 cm-1峰強度變化為評價標準,若加入干擾物后峰強無明顯變化,則視為不干擾。實驗考察了干果類食品中的主要基體物質(包括蔗糖、苯甲酸鈉、山梨酸鉀、NaCl、維生素C等)對糖精鈉SERS分析的干擾影響。其中,最大的干擾來自于防腐劑苯甲酸鈉和山梨酸鉀,因為其電離出的酸根可以吸附在SHINERS粒子表面,從而影響糖精鈉的SERS測定。但苯甲酸鈉(pKa=4.2)和山梨酸鉀(pKa=4.8)[24]與H+的結合能力比糖精鈉(pKa=2.1)[25]強,說明在優(yōu)化的酸度條件下(pH=3.0,實測),糖精負離子的分布系數比苯甲酸根和山梨酸根大,故大部分糖精負離子可以吸附在帶正電的SHINERS粒子表面,可能存在的雜質對糖精鈉的測定影響可以忽略。此外,同一酸度條件下,由于分子態(tài)的苯甲酸和山梨酸在溶液中的分布系數比分子態(tài)的糖精大,所以大部分苯甲酸和山梨酸被C18吸附,從而可排除雜質干擾。實驗結果顯示,當蔗糖、苯甲酸鈉、山梨酸鉀、NaCl、維生素C濃度為糖精鈉濃度的50倍時,糖精鈉的SERS譜圖中710 cm-1處的特征峰面積無明顯變化,表明干果食品基體物質不干擾糖精鈉的SERS分析,方法的選擇性滿足實際樣品分析要求。
2.4 SERS 快速分析方法的建立
配制濃度分別為 50.0,100,150,200,250 mg/L的系列糖精鈉標準溶液,在優(yōu)化條件下以~710 cm-1處特征峰峰面積(Y)對應標準溶液濃度(X,mg/L)繪制標準曲線(見圖2)。結果表明,糖精鈉在50.0~250 mg/L濃度范圍內具有良好的線性關系,方法的工作曲線為Y=51.3X+179.1(r2=0.987 9),相對標準偏差(RSD)為6.5%,檢出限(S/N=3)為0.6 g/kg,定量下限(S/N=10)為2 g/kg。方法的靈敏度滿足國標方法(GB 2760-2014)中干果類食品中糖精鈉限量(5 g/kg)的檢測要求。
2.5 實際樣品分析
將該方法用于隨機購買的3種干果類食品(無花果、話梅、橄欖干)中糖精鈉的快速分析,結果表明無花果、話梅、橄欖干中的糖精鈉均可定量檢出(圖3),其含量分別為3.1,1.5,2.2 g/kg(表1)。3種實際樣品均作加標回收實驗,分別取5份平行樣,加標量均為1.0,2.0,4.0 g/kg。加標回收實驗結果表明方法的回收率為80.0%~125%,RSD(n=5)為1.3%~9.3%,與HPLC標準方法獲得的結果比值在0.85~1.12之間,表明該方法準確可靠,可滿足干果類食品中糖精鈉的快速分析要求。
表1 實際樣品分析及加標回收實驗結果Table 1 Rapid analysis of saccharin sodium salt in real samples and recoveries from spiked experiments
*relative error referred to the difference of determination results achieved by SERS and HPLC
本文結合超聲提取及固相萃取等前處理方法,建立了干果食品中糖精鈉的SERS快速分析方法。系統(tǒng)優(yōu)化了超聲提取條件、固相萃取條件及SERS分析條件,有效消除了基體干擾,提高了方法的選擇性和靈敏度。在優(yōu)化實驗條件下,該方法的線性范圍為50.0~250 mg/L,檢出限為0.6 g/kg,RSD(n=5)為6.5%。將該方法用于實際樣品分析,檢出無花果、話梅、橄欖干中的糖精鈉含量分別為3.1,1.5,2.2 g/kg,回收率為80.0%~125%,與HPLC標準方法的相對偏差為-17%~10%,結果表明該方法準確可靠,可用于實際干果類食品中糖精鈉的現(xiàn)場快速分析。
[1] Grenby T H.TrendsFoodSci.Technol.,1991,2:2-6.
[2] Weihrauch M R.Ann.Oncol.,2004,15(10):1460-1465.
[3] Oser B L.FoodChem.Toxicol.,1985,23(4):535-542.
[4] European Commission.Opinion on Saccharin and Its Sodium,Potassium and Calcium Salts.1997.http://ec.europa.eu/food/fs/sc/oldcomm7/out26_en.pdf.
[5] Liu Y,Yin Z,Zou X X,Cao L F.J.Instrum.Anal.(劉英,尹州,鄒曉筱,曹麗芬.分析測試學報),2011,30(6):651-655.
[6] Chen L J,F(xiàn)ei X Q,Tan M R,Wu B,Shen C Y,Zhang R,Ding T,Liu Y,Yang G J.J.Instrum.Anal.(陳麗娟,費曉慶,譚夢茹,吳斌,沈崇鈺,張睿,丁濤,劉蕓,楊功俊.分析測試學報),2016,35(9):1142-1146.
[8] Xuan Y W,Xie D P,Yin W X,Wu W.Phys.Test.Chem.Anal.:Chem.Anal.(宣亞文,謝東坡,尹文星,武文.理化檢驗:化學分冊),2010,46(1):57-58.
[9] Sang H Q,Du C L,Shi C F.TheBeverageIndustry(桑宏慶,杜傳來,石承鳳.飲料工業(yè)),2004,(1):42-46.
[10] Song Y Z,Lu G H,Zhou X,Yang Y L,Chen H.Chin.J.Anal.Chem.(宋遠志,陸光漢,周新,楊雁玲,陳輝.分析化學),2004,(2):209-212.
[11] Wang Y,Xu Z L,Xie Y Y,Tian Y X,Shen Y D,Young G M,Wang H,Lei H T,Sun Y M.FoodChem.,2011,126(2):815-820.
[12] GB/T 5009.28-2003.Dertermination of Sacchar in Foods.National Standards of the People's Republic of China(食品中糖精鈉的測定.中華人民共和國國家標準).
[13] GB/T5009.28-1985.Dertermination of Sacchar in Foods.National Standards of the People's Republic of China(食品中糖精鈉的測定.中華人民共和國國家標準).
[14] Peica N.J.RamanSpectrosc.,2009,40(12):2144-2154.
[15] López M I,Ruisánchez I,Callao M P.Spectrochim.ActaA,2013,111:237-241.
[16] Zheng J K,He L L.ComprehensiveReviewsinFoodScienceandFoodSafety,2014,13(3):317-328.
[17] Li J F,Huang Y F,Ding Y,Yang Z L,Li S B,Zhou X S,Fan F R,Zhang W,Zhou Z Y,Wu D Y,Ren B,Wang Z L,Tian Z Q.Nature,2010,464(7287):392-395.
[18] Fang P P,Lu X H,Liu H,Tong Y X.TrAC-TrendAnal.Chem.,2015,66:103-117.
[19] Zhu Y J,Wu J F,Gao H Y,Liu G K,Tian Z Q,Feng J L,Guo L,Xie J W.RSCAdv.,2016,6(65):59919-59926.
[20] Zhang K G,Hu Y L,Li G K.Talanta,2013,116:712-718.
[21] Chen X M,Lei H Y,Hu Y L,Li G K.J.Instrum.Anal.(陳小曼,雷浩宇,胡玉玲,李攻科.分析測試學報),2016,35(10):1343-1346.
[22] Kwon H,Gewirth A A.J.Electrochem.Soc.,2007,154(11):577-583.
[23] Imai Y,Kamada J.Spectrochim.ActaA,2005,61(4):711-715.
[24] Tan L F,Ning Z X,Zhang D C,Gao J H.Food&Machinery(譚龍飛,寧正祥,張德聰,高建華.食品與機械),1995,4:24-26.
[25] Kiani F,Hosseini S B,Shahidi S A,Fardard K.Chim.Oggi-ChemistryToday,2016,34(4):26-29.
Rapid Analysis of Saccharin Sodium Salt in Dried Fruits by Surface-enhanced Raman Scattering Spectroscopy
CHEN Zheng-yi,LU Ya-lin,LIANG Yu,ZENG Chen,ZHANG Zhuo-min*,LI Gong-ke*
(School of Chemistry,Sun Yat-sen University,Guangzhou 510275,China )
A rapid analytical method was developed for the determination of saccharin sodium salt in dry fruits by surface-enhanced Raman spectroscopy(SERS).The saccharin in real samples was extracted with water, followed being separated and cleaned up on the activated C18solid phase extraction column before surface-enhanced Raman scattering measurement.The linear range of this method was from 50.0 mg/L to 250 mg/L,and the detection limit was 0.6 g/kg.The good recoveries were in range of 80.0%-125% with relative standard deviations(RSD,n=5) no more than 8.4%.The results suggested that this method, with good anti-interference capability, was sensitive and reliable in the rapid determinattion of saccharin sodium salt in dry fruits.It is expected that this SERS based rapid analytical method possesses a great potential in monitoring the quality of dry fruits.
SERS;rapid analysis;saccharin sodium salt;dry fruits
2016-12-12;
2017-01-20
國家自然科學基金(21275168,21475154,21475153);國家重大科學儀器設備開發(fā)專項(2011YQ0301240901);廣東省自然科學基金(2015A030311020);廣東省公益研究與能力建設專項(2015A030401036);廣州市民生科技重大專項(201604020165)
10.3969/j.issn.1004-4957.2017.05.012
O657.37;O629.1
A
1004-4957(2017)05-0650-05
*通訊作者:張卓旻,博士,副教授,研究方向:食品安全分析,Tel:020-84110922,E-mail:zzm@mail.sysu.edu.cn 李攻科,博士,教授,研究方向:色譜光譜分析、復雜體系分離分析,Tel:020-84110922,E-mail:cesgkl@mail.sysu.edu.cn