国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

miR—222基因、ERα、膠原蛋白在陰道前壁膨出患者陰道壁中的表達

2018-01-09 07:35馬喆鮑俊翠王慧軍肖愛民李小蘭李環(huán)
現(xiàn)代儀器與醫(yī)療 2017年5期
關鍵詞:前壁膠原蛋白膠原

馬喆 鮑俊翠 王慧軍 肖愛民 李小蘭 李環(huán)

[摘 要] 目的:檢測miR-222基因、雌激素受體α(ERα)、膠原蛋白在陰道前壁膨出(AVP)患者陰道壁中的表達,分析其臨床價值。方法:2014年6月至2016年3月,選取40例AVP患者(AVP組)和同期40例接受其他婦科手術的良性病變患者(對照組)。按照月經(jīng)狀態(tài),再分為絕經(jīng)前亞組、絕經(jīng)后亞組,檢測各組患者陰道壁miR-222基因、ERα及膠原蛋白表達情況,計算各指標間相關性并分析其臨床意義。結果:AVP組絕經(jīng)前、絕經(jīng)后亞組陰道壁miR222高于對照組相應亞組,其ERα及Ⅰ型、Ⅲ型膠原蛋白表達水平均低于對照組相應亞組,兩組內(nèi)比較絕經(jīng)后亞組miR-222表達水平高于絕經(jīng)前亞組,其ERα表達水平低于絕經(jīng)前亞組,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。Pearson相關性分析可見miR-222與ERα表達水平呈負相關,Ⅰ型膠原蛋白與Ⅲ型膠原蛋白表達水平呈正相關(P<0.05)。結論:miR-222表達增加所致ERα含量下降以及Ⅰ型、Ⅲ型膠原蛋白表達水平的減少,是引發(fā)AVP的重要機制,注重絕經(jīng)前后上述指標變化的監(jiān)測有望為AVP的診斷及靶向治療提供一定參考。

[關鍵詞] miR-222基因;雌激素受體α;膠原蛋白;陰道前壁膨出

中圖分類號:R711 文獻標識碼:A 文章編號:2095-5200(2017)05-078-03

DOI:10.11876/mimt201705032

陰道前壁膨出(AVP)是最常見的盆腔器官脫垂(POP)類型,盆底支持組織結構與功能完整性的破壞對患者生活質(zhì)量造成嚴重影響[1]。目前,臨床對AVP的發(fā)病機制尚無明確闡釋,多數(shù)研究認為,年齡、妊娠及分娩、肥胖、遺傳等與AVP相關[2],絕經(jīng)后女性AVP呈上升趨勢,可能與雌激素水平變化有關[3]。此外,有學者認為,POP的發(fā)生與結締組織變化亦具有密切關聯(lián),如膠原蛋白代謝異常者有著更高的POP發(fā)生率,且治療后復發(fā)率較高[4]。此次研究檢測miR-222基因、雌激素受體α(ERα)及膠原蛋白在AVP患者陰道壁中的表達,旨在進一步了解AVP發(fā)生機制。

1 資料與方法

1.1 對象與分組

征得醫(yī)學倫理委員會批準,2014年6月至2016年3月期間40例于我院接受手術的AVP患者納入AVP組;同期40例因為其他良性婦科疾病需行手術患者納入對照組。兩組均排除合并惡性腫瘤、子宮內(nèi)膜異位癥、婦科急性炎癥者以及既往有盆底手術史或術前3個月內(nèi)有雌激素藥物使用史者?;颊呔橥獠⒑炇鹬橥鈺侔凑栈颊咴陆?jīng)狀態(tài)分為絕經(jīng)前亞組、絕經(jīng)后亞組。

1.2 檢測方法

術中取患者陰道前壁組織,以10%甲醛溶液固定,常規(guī)脫水、石蠟包埋,5 μm連續(xù)切片,使用逆轉錄聚合酶鏈反應(RT-PCR)法,檢測miR-222基因相對表達水平 [5];使用免疫組化法,檢測ERα[6],一抗為兔抗人多克隆ERα抗體(美國Santa Cruz公司),二抗為辣根過氧化酶標記的山羊抗兔多克隆抗體(英國Abcam公司);采用免疫組化S-P法,通過平均陽性染色面積百分比對I 型、III型膠原蛋白的表達水平進行檢測[7],試劑盒購自杭州江萊ELISA檢測中心。

1.3 結果判讀

miR-222表達水平判讀[8]:在目的基因與內(nèi)參基因擴增效率相同的前提下,以U6為內(nèi)參,測定循環(huán)閾值(Ct值),計算△Ct(△Ct=miR-222 Ct值-U6 Ct值),以2-△△Ct表示miR-222表達水平;ERα表達水平判讀[9]:染色后顯微鏡下觀察細胞核ERα表達情況,棕黃色染色為陽性細胞,于400×視野下選取5個視野,計數(shù)100個細胞內(nèi)陽性染色強弱、陽性細胞百分率,二者乘積為ERα表達水平,其中,染色強弱計分0~3分,依次為無棕黃色染色、淺黃色染色、深黃色染色、深棕色染色;陽性細胞百分率計分0~4分,依次為0、1%~25%、26%~50%、51%~75%/、76%~100%;膠原蛋白表達水平判讀[10]:在光鏡下觀察所有染色切片,I、III型型膠原蛋白以細胞間質(zhì)內(nèi)出現(xiàn)淺棕色或者棕黃色為陽性表達。每張切片隨機選取5個完整而不互相重復的×200視野,拍照后運用Image-Pro Plus計算機圖像分析系統(tǒng),計算I型 、III型膠原蛋白所占面積百分比,即相對陽性染色面積平均值(%),得出I型、III型膠原蛋白的相對表達量。

1.4 統(tǒng)計學分析

指標表達組間比較采用t檢驗,使用Pearson相關性分析,計算各指標間相關性,SPSS18.0處理數(shù)據(jù),以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

2 結果

2.1 患者陰道壁各項指標表達情況

AVP組絕經(jīng)前、絕經(jīng)后亞組陰道壁miR222高于對照組相應亞組,其ERα及Ⅰ型、Ⅲ型膠原蛋白表達水平均低于對照組相應亞組,兩組患者組內(nèi)比較,絕經(jīng)后亞組miR-222表達水平高于絕經(jīng)前亞組,其ERα表達水平低于絕經(jīng)前亞組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

2.2 相關性分析

Pearson相關性分析顯示,miR-222與ERα表達水平呈負相關,Ⅰ型膠原蛋白與Ⅲ型膠原蛋白表達水平呈正相關(P<0.05)。

3 討論

女性盆底由盆底肌、韌帶、筋膜等結構組成,共同形成盆底支持結構,在維持膀胱、尿道、陰道、子宮和直腸等盆腔器官正常位置中發(fā)揮著重要作用[11]。盆底結構的松弛可引發(fā)POP,包括AVP、陰道頂端脫垂、陰道后壁脫垂等,其中AVP最為常見,且往往伴隨陰道分泌物增多、陰道脫出物、下尿路癥狀、腸道癥狀、性功能障礙等 [12]。

一項流行病學調(diào)查顯示,老年女性POP發(fā)生率高達32.8%,且人群中約有11%~19%的POP患者需手術治

療[13]。隨著人口老齡化的加劇,POP發(fā)生率不斷上升,已成為影響全球婦女健康和生活質(zhì)量的疾患。endprint

miRNA是近年來發(fā)現(xiàn)的一種小分子非編碼RNA,可調(diào)控靶基因轉錄過程,參與生物體的發(fā)育、細胞凋亡、增殖及分化等活動,其中,miR-222是一種高度保守的非編碼小分子RNA,與ERα存在靶向調(diào)控關系,且已有研究證實miR-222在乳腺癌發(fā)生發(fā)展過程中扮演的重要角色[14]。此次研究從絕經(jīng)前后不同狀態(tài)觀察AVP患者發(fā)病機制,結果表明,女性絕經(jīng)后miR-222表達水平大幅增加,AVP患者陰道壁miR-222表達水平高于非AVP患者,且miR-222與ERα表達水平呈負相關,說明miR-222、ERα可能參與了AVP的發(fā)展,其機制可能為:隨著女性年齡的增加,雌激素等內(nèi)分泌指標的變化可能引發(fā)miR-222過表達,而miR-222過表達可下調(diào)ERα表達、降低雌激素敏感性,進而影響陰道和盆底正常組織結構,造成盆底結構支撐力下降,以及陰道前壁松弛、膨出[15-16]。

在盆底支持組織中,子宮主韌帶、子宮骸韌帶以及肛提肌均發(fā)揮著重要作用,其中,韌帶的主要成分包括平滑肌、結締組織,而膠原蛋白是結締組織的重要組成部分,約占機體全部蛋白的25%以上[17]。盆底組織主要由Ⅰ型膠原和Ⅲ型膠原組成,Ⅰ型硬度大、直徑粗,主要分布于皮膚、肌肉、骨骼、韌帶等組織,發(fā)揮支持作用;Ⅲ型彈性大、直徑較細,主要調(diào)控組織彈性。Ⅰ型膠原和Ⅲ型膠原的比例平衡才能維持女性盆底結構的穩(wěn)定性[18]。本研究結果中AVP患者陰道壁Ⅰ型膠原和Ⅲ型膠原表達水平均較非AVP患者顯著下降,是導致盆底結締組織膠原變細、抗張能力不足的主要原因,而上述病理變化也是造成盆腔支持能力不足特別是AVP的主要原因。

綜上所述,AVP患者陰道壁miR-222基因高表達,ERα、Ⅰ型膠原和Ⅲ型膠原表達水平顯著下降,且miR-222、ERα表達水平與患者月經(jīng)狀態(tài)具有一定關聯(lián),尋求高選擇性雌激素受體以逆轉ERα下降、探索改善盆腔組織彈性及支持力的方法,有望為AVP的治療提供新的思路與方向。

參 考 文 獻

[1] Jelovsek, Eric J, Maher, et al. Pelvic organ prolapse[M]// Practical Functional Urology. Springer International Publishing, 2007:15-26.

[2] Ward R M, Edwards D R V, Edwards T, et al. Genetic epidemiology of pelvic organ prolapse: a systematic review[J]. Am J Obstet Gynecol, 2014, 211(4): 326-335.

[3] Zhou L, Shangguan A J, Kujawa S A, et al. Estrogen and Pelvic Organ Prolapse[J]. J Mol Genet Med, 2016, 10(221): 1747-1862.

[4] Weber A M, Richter H E. Pelvic organ prolapse.[J]. Obstet Gynecol, 2005, 106(3):615.

[5] Jeon M J, Kim E J, Lee M, et al. MicroRNA‐30d and microRNA‐181a regulate HOXA11 expression in the uterosacral ligaments and are overexpressed in pelvic organ prolapse[J]. J Cell Mol Med, 2015, 19(2): 501-509.

[6] Maldonado P A, Montoya T I, Acevedo J F, et al. Effects of vaginal conjugated equine estrogens and ospemifene on the rat vaginal wall and lower urinary tract[J]. Biol Reprod, 2016, 96(1): 81-92.

[7] Liapis A, Bakas P, Pafiti A, et al. Changes of collagen type III in female patients with genuine stress incontinence and pelvic floor prolapse[J]. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol, 2001, 97(1):76.

[8] 胡芝. miR-221和miR-222在宮頸癌中的表達及臨床意義[D]. 溫州:溫州醫(yī)學院, 2010.

[9] Han L, Wang L, Wang Q, et al. Association between pelvic organ prolapse and stress urinary incontinence with collagen[J]. Exp Ther Med, 2014, 7(5): 1337-1341.

[10] 高芳圓. 盆底支持組織中轉化生長因子β_1和Ⅰ、Ⅲ型膠原蛋白的表達與盆底功能障礙性疾病的關系[D]. 石家莊:河北醫(yī)科大學, 2011.

[11] Alarab M, Kufaishi H, Lye S, et al. Expression of extracellular matrix-remodeling proteins is altered in vaginal tissue of premenopausal women with severe pelvic organ prolapse[J]. Reprod Sci, 2014, 21(6): 704-715.endprint

[12] Vasavada S P, Barber M D. Anterior Vaginal Prolapse[J]. Pelvic Floor Dysfunction, 2006:207-215.

[13] Allen-Brady K, Cannon-Albright L A, Farnham J M, et al. Evidence for pelvic organ prolapse predisposition genes on chromosomes 10 and 17[J]. Am J Obstet Gynecol, 2015, 212(6): 771.

[14] 許踐剛. miR-221和miR-222在乳腺浸潤性導管癌中的表達及臨床意義[D]. 溫州:州醫(yī)學院, 2010.

[15] Kufaishi H, Alarab M, Drutz H, et al. Static mechanical loading influences the expression of extracellular matrix and cell adhesion proteins in vaginal cells derived from premenopausal women with severe pelvic organ prolapse[J]. Reprod Sci, 2016, 23(8): 978-992.

[16] Rhee S H, Zhang P, Hunter K, et al. Pelvic organ prolapse is associated with alteration of sphingosine-1-phosphate/Rho-kinase signalling pathway in human vaginal wall[J]. J Obstet Gynaecol, 2015, 35(7): 726-732.

[17] Veit-Rubin N, Cartwright R, Singh A U, et al. Association between joint hypermobility and pelvic organ prolapse in women: a systematic review and meta-analysis[J]. Int Urogynecol J, 2016, 27(10): 1469-1478.

[18] Kim T, Sridharan I, Ma Y, et al. Identifying distinct nanoscopic features of native collagen fibrils towards early diagnosis of pelvic organ prolapse[J]. Nanomedicine, 2016, 12(3): 667-675.endprint

猜你喜歡
前壁膠原蛋白膠原
小切口擴張后氣管前壁穿刺切開術在危重病人中的應用與探討
想不到你是這樣的膠原蛋白
經(jīng)閉孔陰道前壁尿道懸吊術與自體闊筋膜懸吊術治療張力性尿失禁的療效比較
美國肉參膠原蛋白肽對H2O2損傷PC12細胞的保護作用
膠原蛋白在食品中的應用現(xiàn)狀及其發(fā)展前景分析
膠原無紡布在止血方面的應用
梭魚骨膠原蛋白的提取及其性質(zhì)
紅藍光聯(lián)合膠原貼治療面部尋常痤瘡療效觀察
膠原ACE抑制肽研究進展
二維斑點追蹤與雙源CT分析左心室前壁缺血的局部心肌功能
安徽省| 孙吴县| 榆林市| 杭锦旗| 江城| 陇南市| 清水河县| 彰化县| 水城县| 庐江县| 财经| 莒南县| 安塞县| 海安县| 沁阳市| 双柏县| 凉城县| 肇东市| 台州市| 长岛县| 沈丘县| 孝昌县| 淮南市| 平遥县| 宁蒗| 红原县| 从化市| 靖江市| 岢岚县| 榆树市| 昌江| 赤水市| 溧水县| 合阳县| 定南县| 沙田区| 平邑县| 兰考县| 确山县| 桂东县| 登封市|