潘姝璇PAN Shu-xuan 王嘉怡 - 陳 建 n 夏 陳 鄧俊琳 - 蒲 彪

(1. 四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所，四川 成都 610066；2. 四川農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院，四川 雅安 625014；3. 四川大學(xué)華西公共衛(wèi)生學(xué)院，四川 成都 610041)

發(fā)芽糙米(germinated brown rice，GBR)是糙米在一定的濕度和溫度下發(fā)芽至一定芽長(一般為0.5～1.0 mm)，所得到的由幼芽和帶糠層的胚乳組成的糙米制品[1]。人們在養(yǎng)身的過程中發(fā)現(xiàn)糙米能產(chǎn)生較強(qiáng)的飽腹感，且對身體健康有很多益處[2]。但糙米口感粗糙。通過發(fā)芽處理后的糙米經(jīng)歷了種子萌發(fā)階段激活了大量的內(nèi)源酶，酶解作用導(dǎo)致糙米中多糖等活性物質(zhì)的含量、結(jié)構(gòu)、種類及其生物活性都有所改變或增強(qiáng)，不僅口感得到了一定程度的改善，而且富含許多生物活性物質(zhì)，如γ-氨基丁酸、菲汀、谷維素、神經(jīng)酰胺、阿魏酸、多糖等。因此發(fā)芽糙米營養(yǎng)物質(zhì)豐富，具有特殊的營養(yǎng)功效[3]。

很多報道[4-7]表明植物中的多糖對自由基有一定的抗氧化活性，可以作為新的潛在抗氧化劑進(jìn)行研究。氧化是許多生物能量生產(chǎn)的基本過程，但是過量的自由基在體內(nèi)會產(chǎn)生一些氧化反應(yīng)過程不僅與脂質(zhì)過氧化作用密切相關(guān)，還會引起疾病。因此，對高效的抗氧化劑的開發(fā)并用于保護(hù)機(jī)體免受自由基的破壞是十分必要的[8]。熱水浸提法為傳統(tǒng)且最為常用的水溶性多糖制備方法，但耗時長、效率低[9]。微波輔助提取法是利用微波對物質(zhì)進(jìn)行萃取的一種新興技術(shù)，具有耗時短、效率高、節(jié)省溶劑、最終產(chǎn)生的物質(zhì)產(chǎn)量高而不改變其性質(zhì)等優(yōu)勢[10-12]。作為一種替代傳統(tǒng)方法的潛在方法，該方法受到越來越多的關(guān)注[13-14]。

目前，在發(fā)芽糙米中的功能成分的研究報道中對多糖的研究甚少，劉曉飛等[15]曾采用超聲波輔助雙水相法萃取對發(fā)芽糙米多糖的工藝優(yōu)化及其抗氧化活性進(jìn)行過研究。本試驗擬采用微波輔助法對發(fā)芽糙米多糖(germinated brown rice polysaccharides, GBRP)進(jìn)行提取，用響應(yīng)面試驗對其工藝進(jìn)行優(yōu)化，并研究GBRP的抗氧化活性，旨在為發(fā)芽糙米的增值利用和新型多糖的制備提供依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

發(fā)芽糙米：由東北產(chǎn)糙米經(jīng)某谷物公司生產(chǎn)車間1 000 kg 級大生產(chǎn)制備；

石油醚(35～60 ℃)、濃硫酸、硫酸亞鐵、水楊酸、過氧化氫：分析純，成都市科龍化工試劑廠；

葡萄糖：分析純，國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；

苯酚：分析純，成都市萇征化玻有限公司；

1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH·) ：梯希愛化成工業(yè)發(fā)展有限公司；

中藥粉碎機(jī)：FY-250型，永康市久品工貿(mào)有限公司；

微波科學(xué)實驗爐：ORW08S-3H型，南京奧潤微波科技有限公司；

掃描型紫外可見分光光度計：UV-6100型，上海美普達(dá)儀器有限公司；

高速冷凍離心機(jī)：Gentrifuge 5180R型，德國Eppendorf公司；

電子天平：FA2104型，上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司。

1.2 發(fā)芽糙米的前處理

將50 kg發(fā)芽糙米用碾米機(jī)去除胚乳(即分離除去大量淀粉)得到5.5 kg發(fā)芽糙米米糠(含有約10%碎米)。取該米糠1.0 kg浸泡于5 L 石油醚中并攪拌4 h脫脂處理后，過濾，置于通風(fēng)櫥風(fēng)干，粉碎，過60目篩，密封保存，備用。

1.3 多糖含量的測定

采用苯酚-硫酸法[16]。

1.4 微波輔助提取GBRP

1.4.1 提取工藝 稱取1.0 g前處理的發(fā)芽糙米米糠，在40 ℃ 下用去離子水按一定的液料比混合后，置于微波科學(xué)實驗爐，設(shè)定微波功率，采用不同的液料比、微波提取時間、微波功率、提取次數(shù)(具體數(shù)據(jù)設(shè)計見1.4.1)4個因素進(jìn)行微波輔助提取。提取完后將混合物離心(8 000 r/min，10 min)，取5 mL上清液加25 mL乙醇沉淀。醇沉之后再離心(8 000 r/min，10 min)，去上清液，將沉淀冷凍干燥后，復(fù)溶于5 mL去離子水中，采用苯酚-硫酸法測定多糖含量。

1.4.2 單因素試驗 參考文獻(xiàn)[17～18]的條件，以去離子水為提取劑，分別就微波功率、微波時間、液料比和微波次數(shù)做單因素試驗。

(1) 微波功率：固定微波溫度40 ℃，微波時間4 min，液料比20∶1 (mL/g)，提取次數(shù)2次，采用以上選出的結(jié)果，考察不同微波功率200，300，400，500，600，700 W對GBRP提取率的影響。

(2) 微波時間：固定微波溫度40 ℃，液料比20∶1(mL/g)，提取次數(shù)2次，采用以上選出的結(jié)果，考察不同微波時間2，3，4，5，6，7 min對GBRP提取率的影響。

(3) 液料比：固定微波溫度40 ℃，提取次數(shù)2次，采用以上選出的結(jié)果，考察不同液料比10∶1，15∶1，20∶1，25∶1，30∶1，35∶1 (mL/g)對GBRP提取率的影響。

(4) 提取次數(shù)：其他條件采用以上選出的結(jié)果，考察不同提取次數(shù)1，2，3，4，5次對GBRP提取率的影響。

1.5 GBRP的抗氧化活性試驗

1.5.1 GBRP溶液的配制 稱取50 g發(fā)芽糙米米糠，按照試驗得到的最優(yōu)提取條件提取GBRP，醇沉后冷凍干燥得GBRP固體，將其配制為不同濃度的多糖溶液，測定其抗氧化活性。

1.5.2 還原力測定 根據(jù)文獻(xiàn)[19]的方法，取不同濃度的樣品溶液5.0 mL，依次加入pH值6.6的1.0 mL 0.2 mo1/L的磷酸鹽緩沖溶液(PBS)、1.0 mL 1%鐵氰化鉀溶液，充分混合，于50 ℃水浴20 min，冷卻后加入10%三氯乙酸1.0 mL，并以5 000 r/min離心15 min，取上清液1 mL，再加1 mL蒸餾水和0.1 mL 0.1%三氯化鐵，靜置10 min后在波長700 nm 處測吸光值。以超純水作為陰性對照，以VC溶液為陽性對照，重復(fù)測3次，還原力Y1以吸光值為指標(biāo)。

1.5.3 清除·OH能力的測定 根據(jù)文獻(xiàn)[20]的方法修改如下，取不同濃度的樣液5.0 mL，加入9 mmol/L 硫酸鐵溶液1.0 mL后，加8.8 mmol/L 雙氧水溶液0.1 mL，搖勻，靜置10 min，加入9 mmol/L的水楊酸溶液300 μL，37 ℃水浴30 min后，于波長510 nm處測吸光度；以超純水代替雙氧水為樣品本底組；以超純水代替樣品溶液為空白對照組；以VC作為陽性對照，重復(fù)測3次?！H清除率按式(1)計算：

(1)

式中：

Y2——·OH清除率，%；

AX——樣品組吸光值；

AXo——樣品本底組吸光值；

A——空白對照組吸光值。

(2)

式中：

AX——樣品組吸光值；

A——空白對照組吸光值。

1.5.5 清除DPPH·能力的測定 根據(jù)文獻(xiàn)[22]的方法，取不同濃度的樣液5.0 mL，加入1.0 mL(0.2 mmol/L)DPPH· 乙醇溶液，避光反應(yīng)30 min，于517 nm波長處測定吸光度Ax。超純水為空白組；將相同量無水乙醇置換DPPH·溶液為本底組，以同濃度的VC溶液作為陽性對照，重復(fù)測3次。DPPH·清除率按式(3)計算：

(3)

式中：

Y4——DPPH·清除率，%；

AX——樣品組吸光值；

AXo——樣品本底組吸光值；

A——空白對照組吸光值。

1.5.6 抑制脂質(zhì)過氧化能力的測定 根據(jù)文獻(xiàn)[23]的方法，分別加入脂質(zhì)體磷酸鹽緩沖分散系(LLS)1.0 mL、400 μmol/L三氯化鐵溶液1.0 mL、不同濃度的樣品5.0 mL，避光于37 ℃ 水浴1 h，加入三氯乙酸-硫代巴比妥酸-鹽酸 2.0 mL，沸水浴15 min，以6 000 r/min離心15 min，取上清液于波長535 nm處測吸光度?？瞻坠芤哉麴s水代替樣品測得吸光度，重復(fù)測3次。脂質(zhì)過氧化抑制率按式(4)計算：

(4)

式中：

Y5——脂質(zhì)過氧化抑制率，%；

AX——樣品組吸光值；

A——空白對照組吸光值。

2 結(jié)果與分析

2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=0.015 4x+0.002 8，R2=0.999 5，表明標(biāo)準(zhǔn)溶液的吸光度與不同濃度之間有很好的線性關(guān)系。

2.2 單因素試驗結(jié)果

2.2.1 微波功率對GBRP提取率的影響 由圖1可知， GBRP提取率在微波功率600 W以下時逐漸增加；微波功率在600 W時，提取率達(dá)到最大值(2.30%)；而功率繼續(xù)增加時，GBRP提取率隨著功率的增加而緩慢降低，可能是在微波功率較小時，促進(jìn)發(fā)芽糙米米糠中多糖的溶出；當(dāng)微波功率達(dá)到一定值后，過高的功率對溶出的多糖結(jié)構(gòu)產(chǎn)生了影響，多糖的提取率降低。因此微波功率在600 W時為最佳條件。

圖1 微波功率對GBRP提取率的影響

Figure 1 Effect of microwave power on the extraction efficiency of polysaccharides from germinated brown rice

2.2.2 微波時間對GBRP提取率的影響 由圖2可知，GBRP提取率在 4 min內(nèi)隨著時間的延長而增加；在4 min時達(dá)到最大提取率(2.01%)；提取時間繼續(xù)延長后多糖的提取率卻明顯降低，可能是長時間的微波輻照會破壞多糖的結(jié)構(gòu)，也可能是長時間的微波處理使提取環(huán)境中局部溫度升高而導(dǎo)致多糖的損失，進(jìn)而影響了多糖的提取率。因此微波時間在4 min時為最佳條件。

圖2 微波時間對GBRP提取率的影響

Figure 2 Effect of extraction time on the extraction efficiency of polysaccharides from germinated brown rice

2.2.3 液料比對GBRP提取率的影響 由圖3可知，多糖的提取率隨液料比的增加先增加后減少，當(dāng)液料比為25∶1(mL/g)時提取率最大(2.68%)。這可能是，液料比較少時隨著溶劑量的增加，物料與溶劑間的濃度差增加，有利于多糖的傳遞速度且增加了多糖的溶出量；液料比較大時微波對物料輻照能力減弱，或使非多糖物質(zhì)的溶出量增加，從而導(dǎo)致了多糖含量的降低。因此液料比在25∶1 (mL/g)時為最佳條件。

圖3 液料比對GBRP提取率的影響

Figure 3 Effect of liquid-solid ratio on the extraction efficiency of polysaccharides from germinated brown rice

2.2.4 提取次數(shù)對GBRP提取率的影響 由圖4可知，提取1次的效果不佳，提取2次的多糖提取率(2.56%)相較于提取1次的(1.46%)增加了約1倍；提取次數(shù)超過2次后，提取率卻不再顯著增大。從效率和成本等多方面考慮，提取2次為宜。

圖4 提取次數(shù)對GBRP提取率的影響

Figure 4 Effect of number of extractions on the extraction efficiency of polysaccharides from germinated brown rice

2.3 響應(yīng)面法優(yōu)化超聲波輔助提取GBRP條件

2.3.1 響應(yīng)面優(yōu)化試驗設(shè)計 根據(jù)各單因素試驗結(jié)果，采用響應(yīng)面Box-Behnken模型，選擇自變量為微波功率、液料比、微波時間，以GBRP提取率(Y)為響應(yīng)值，設(shè)計三因素三水平試驗。試驗因素及水平見表1。

2.3.2 響應(yīng)面試驗設(shè)計及結(jié)果 根據(jù)表2試驗結(jié)果，運(yùn)用Design-Expert 8.0數(shù)據(jù)統(tǒng)計軟件進(jìn)行多元回歸擬合，得到GBRP提取率對自變量微波功率、微波時間和液料比的二次多項回歸方程：

Y=2.8+0.076A-0.26B-0.28C-0.085AB-0.072AC-0.37BC-1.1A2-0.59B2-0.48C2。

(5)

表1 GBRP響應(yīng)面分析因素及水平表

表2 GBRP響應(yīng)面試驗設(shè)計及結(jié)果

Table 2 Experimental design and result of response surface of germinated brown rice prolysaccharides

試驗號ABCY/%110-11．6821010．983-1010．924-1-101．2251-101．4961100．8370002．788-1100．9090110．80100002．79110002．87120-1-11．93130002．82140002．75150-112．101601-12．1017-10-11．33

表3 GBRP響應(yīng)面回歸方程的方差分析表?

Table 3 Variance analysis table of response surface regression equation of germinated brown rice prolysaccharides

來源平方和自由度均方F值P值顯著性模型10．0791．12 470．19<0．0001??A0．0510．0519．550．0031??B0．5610．56233．900．0031??C0．6310．63263．61<0．0001??AB0．0310．0312．150．0102?AC0．0210．028．840．0207?BC0．0110．012．68<0．0001??A25．0815．082135．45<0．0001??B21．4811．48623．35<0．0001??C20．9510．95400．96<0．0001??失擬檢驗0．0132．79×10-3 1．35 0．3775不顯著 純差0．0142．07×10-3總差10．0916

由表3可知，模型顯著(P模型<0.000 1)，失擬檢驗不顯著(P失擬>0.05)，可用于提取GBRP試驗的預(yù)測；各因素對GBRP提取率的影響程度大小為微波時間>液料比>微波功率；A、B、C、BC、A2、B2、C2影響極顯著，AB、AC影響顯著，說明各因素對GBRP提取率的影響均為非線性關(guān)系。

2.3.3 響應(yīng)面的優(yōu)化與驗證 在回歸方程優(yōu)化所得最佳條件下，即微波功率604.89 W，液料比23.81∶1 (mL/g)，微波時間3.85 min，GBRP提取率的預(yù)測值為2.85%；在改進(jìn)后所得條件下，即在微波功率604 W，液料比24∶1(mL/g)，微波時間3.83 min，驗證實驗所得提取率平均值為2.82%，誤差值為1.05%，說明回歸方程能有效地反映各因素對GBRP提取率的影響，證明應(yīng)用響應(yīng)面法優(yōu)化微波輔助法提取GBRP的回歸模型可靠。

2.4 GBRP的抗氧化活性

2.4.1 GBRP還原力的測定 由圖5可知，微波輔助法提取的GBRP還原力逐漸增加，當(dāng)濃度達(dá)到0.4 mg/mL時，吸光度達(dá)到0.196，之后趨于平穩(wěn)；而VC在該濃度時吸光度達(dá)1.073，GBRP的還原力約為VC的1/5。

圖5 GBRP的還原力

2.4.2 GBRP對·OH的清除作用 由圖6可知，微波輔助法提取的GBRP對·OH清除能力也是隨著濃度的增大而增加，達(dá)到一定濃度值后趨于相對平穩(wěn)。當(dāng)GBRP濃度達(dá)到0.5 mg/mL時，對·OH的清除率達(dá)到最大值(88.41%)。但VC在此濃度對·OH清除率僅為64.46%。由擬合曲線Y=183.57X+112.04 (R2=0.909)計算得到GBRP的半最大效應(yīng)濃度(EC50)值為0.211 mg/mL。說明GBRP溶液對·OH 有很強(qiáng)的清除能力，不僅高于文獻(xiàn)[24]報道的普通糙米米糠多糖對·OH的最高清除率(63.8%)，也明顯高于VC的清除能力。提示糙米在發(fā)芽時啟動并激活了各種酶，經(jīng)酶促作用改變了多糖的活性，提高了多糖的抗氧化能力。

圖6 GBRP對·OH的清除作用

Figure 6 Scavenging effect on hydroxyl radical of prolysaccharides from germinated brown rice

圖7 GBRP對的清除作用

Figure 7 Scavenging effect on Super oxide anion radical of polysaccharide from germinated brown rice

2.4.4 GBRP對DPPH·的清除作用 由圖8可知，超聲波輔助提取的GBRP溶液對DPPH·清除能力隨著濃度的增大而增加，清除率達(dá)到最大值后趨于平穩(wěn)。當(dāng)GBRP濃度達(dá)到0.4 mg/mL時，對DPPH·清除率達(dá)到最大值(52.71%)，但VC在此濃度對DPPH·清除率達(dá)90.49%。由擬合曲線Y=24.728X+41.712 (R2=0.875)計算得GBRP的EC50值為0.34 mg/mL。結(jié)果表明，GBRP溶液對DPPH· 的清除能力低于VC的，而與文獻(xiàn)[24]和[25]報道的同濃度的普通糙米米糠多糖溶液對DPPH·的清除能力(51.8%)相近。

圖8 GBRP對DPPH·的清除作用

Figure 8 Scavenging effect on DPPH radical of polysaccharide from germinated brown rice bran

2.4.5 GBRP對脂質(zhì)過氧化的抗氧化作用 脂質(zhì)過氧化過程將產(chǎn)生多種小分子產(chǎn)物，如丙二醛，會引起多種細(xì)胞功能的衰退，并且會導(dǎo)致多種疾病的發(fā)生[26]。由圖9可知，微波輔助法提取的GBRP溶液對抑制脂質(zhì)過氧化能力隨GBRP濃度的增大而逐漸增加，當(dāng)GBRP濃度為0.5 mg/mL時，對抑制脂質(zhì)過氧化能力趨于平穩(wěn)(60.86%)，而VC濃度在0.5 mg/mL 時僅為39.97%。由擬合曲線Y=568.12X+6.473 4 (R2=0.865 2)計算得到GBRP的EC50值為0.077 mg/mL。GBRP溶液的抑制脂質(zhì)過氧化能力不僅高于文獻(xiàn)[27]報道的普通糙米米糠多糖的(49.30%)，還高于VC的。提示糙米經(jīng)發(fā)芽過程改變了多糖的活性，提高了多糖的抗氧化能力，特別是對脂質(zhì)過氧化的抗氧化能力明顯增強(qiáng)。

圖9 GBRP抑制脂質(zhì)過氧化能力

3 結(jié)論

本試驗對微波輔助提取GBRP的工藝條件及其抗氧化活性進(jìn)行研究。結(jié)果表明，其最佳提取工藝條件為提取溫度40 ℃、微波功率604 W、液料比24∶1 (mL/g)、微波時間3.83 min、提取次數(shù)2次，該條件下GBRP提取率為2.82%；同未發(fā)芽的糙米多糖的抗氧化活性進(jìn)行對比后證明微波輔助有利于GBRP的提取，并且通過多指標(biāo)結(jié)果表明糙米經(jīng)發(fā)芽活化，改變了其多糖活性，GBRP的抗氧化性高于普通糙米多糖的。

GBRP對·OH的清除率和抑制脂質(zhì)過氧化能力不僅高于普通糙米多糖，甚至高于同濃度VC的，表明發(fā)芽糙米可作為高抗氧化性多糖進(jìn)行研究開發(fā)，并可作為功能食品、化妝品等增值產(chǎn)品的一個新的原料。但該試驗僅對發(fā)芽糙米的粗提多糖進(jìn)行了研究，后期將從成分和結(jié)構(gòu)角度對GBRP進(jìn)一步深入分析。

[1] 汪阿虎. 高含量GABA發(fā)芽糙米的制備工藝優(yōu)化和GABA的提取純化初探[D]. 長沙: 中南林業(yè)科技大學(xué), 2012: 1-2.

[2] 張守文. 糙米的營養(yǎng)保健功能[J]. 糧食與飼料工業(yè), 2003(12): 39-42.

[3] 高麗紅, 吳盛文, 何旭孔, 等. 糙米及其制品營養(yǎng)成分含量的比較[J]. 糧食與飼料工業(yè), 2016(5): 4-5.

[4] CAPEK P, MACHOVA E, TURJAN J, et al. Scavenging and antioxidant activities of mmunomodulating polysaccharides isolated from Salvia officinal is L[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2009, 44(1): 75-80.

[5] LUO Ao-xue, HE Xing-jin, ZHOU Song-dong, et al. Purification, composition analysis and antioxidant activity of the polysaccharides from Dendrobium nobile Lindl[J]. Carbohydrate Polymers, 2010, 79(4): 1 014-1 019.

[6] GAN Chee-yuen, LATIFF A A. Extraction of antioxidant pectic-polysaccharide from mangosteen (Garcinia mangostana) rind: optimization using response surface methodology[J]. Carbohydrate Polymers, 2011, 83(2): 600-607.

[7] HAN Jiang-wei, JIANG Xing-ming, ZHANG Li-da. Optimisa-tion of extraction conditions for polysaccharides from the roots ofIsatistinctoriaL. by response surface methodology and their in vitro free radicals scavenging activities and effects on IL-4 and IFN-mRNA expression in chicken lymphocytes[J]. Carbohydr-ate Polymers, 2011, 86(3): 1 320-1 326.

[8] CHEN Jing-jing, ZHANG Tao, JIANG Bo, et al. Characterization and antioxidant activity of Ginkgo biloba exocarp polysaccharides[J]. Carbohydrate Polymers, 2012, 87(1): 40-45.

[9] LEI Jin-wei, DING Shao-dong, DING Xiao-lin,et al. Optimiz-ation of the ultrasonically assisted extraction of polysaccharides from Zizyphus jujuba cv. jinsixiaozao[J]. Journal of Food Engineering, 2007, 80(1): 176-183.

[10] BALAVIGNESWARAN C K, SUJIN J K T, MOSES P R,et al. Anti-oxidant activity of polysaccharides extracted from Isocrysis galbana using RSM optimized conditions[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2013, 60(6): 100-108.

[11] BAGHERIAN H, ASHTIANI F Z, FOULADITAJAR A. Comparisons between conventional, microwave-and ultrasound-assisted methods for extraction of pectin from grapefruit[J]. Chemical Engineering & Processing Process Intensification, 2011, 50(11/12): 1 237-1 243.

[12] SENTHIL KC, SIVAKUMAR M. Microwave-assisted extraction of polysaccharides from Cyphomandra betacea and its biological activities[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2016, 92: 682-693.

[13] HOSSEINI S S, KHODAIYAN F, YARMAND M S. Optimization of microwave assisted extraction of pectin from sour orange peel and its physicochemical properties[J]. Carbohydrate Polymers, 2016, 140: 59.

[14] WANG Yong-gang, LENG Fei-fan, LIU Xiao-feng, et al. Optimization of microwave-assisted extraction of water-soluble polysaccharides from piteguo fruit by response surface methodology[J]. Food Science & Technology Research, 2014, 20(4): 755-764.

[15] 劉曉飛, 王鑫, 孟慶紅, 等. 發(fā)芽糙米多糖雙水相萃取工藝優(yōu)化及其抗氧化活性[J]. 食品與機(jī)械, 2017, 33(7): 149-154.

[16] 董群, 鄭麗伊. 改良的苯酚—硫酸法測定多糖和寡糖含量的研究[J]. 中國藥學(xué)雜志, 1996, 31(9): 550-553.

[17] 馮自立, 黨婭. 響應(yīng)面法優(yōu)化微波提取枳椇子多糖及其清除羥自由基活性研究[J]. 食品科學(xué), 2013, 34 (12): 56-60.

[18] KIT Leong Cheong, WANG Lan-ying, WU Ding-tao, et al. Microwave-assisted extraction, chemical structures, and chain conformation of polysaccharides from a novel cordyceps sinensis fungus UM01[J]. Journal of Food Science, 2016, 81(9): C2 167.

[19] 何傳波, 魏好程, 熊何健, 等. 酶與微波處理對海帶多糖提取及抗氧化活性的影響[J]. 食品科學(xué), 2013(18): 51-55.

[20] 劉水英, 李新生, 黨婭, 等. 響應(yīng)面法優(yōu)化紫山藥花青苷提取工藝及其抗氧化活性[J]. 食品科學(xué), 2014, 35(22): 84-91.

[21] 程知慶, 沈和定, 姚理想, 等. 干燥方法對瘤背石磺多糖抗氧化性和還原力的影響[J]. 食品與機(jī)械, 2015， 31(6): 169-172.

[22] 周中流, 石任兵, 等. 卷丹乙醇提取物及其不同極性部位抗氧化活性的比較研究[J]. 食品科學(xué), 2011(9): 55-58.

[23] 董秀芳, 李楠, 韓冬, 等. 裙帶菜孢子葉多糖的超聲輔助提取工藝優(yōu)化及其抗氧化活性研究[J]. 食品與機(jī)械, 2015, 31(4): 162-166.

[24] ZHA Xue-qiang, WANG Jun-hui, YANG Xue-fei, et al. Antioxidant properties of polysaccharide fractions with different molecular mass extracted with hot-water from rice bran[J]. Carbohydrate Polymers, 2009, 78(3): 570-575.

[25] YUAN Jiang-feng, ZHANG Zhi-qi, FAN Zhi-chao, et al. Antioxidant effects and cytotoxicity of three purified polysacchar-ides from Ligusticum chuanxiong Hort[J]. Carbohydrate Polymers, 2008, 74(4): 822-827.

[26] HALLIWELL B. Vitamin C and genomic stability[J]. Mutation Research/fundamental & Molecular Mechanisms of Mutagenesis, 2001, 475 (1/2): 29-35.

[27] HEFNAWY H T M, ELSHOURBAGY G A. Chemical analysis and antioxidant activity of Polysaccharide extracted from rice bran[J]. World Journal of Dairy & Food Sciences, 2014, 9(2): 95-104.