李佳 格日力
青海大學(xué)醫(yī)學(xué)院高原醫(yī)學(xué)研究中心,青海省高原醫(yī)學(xué)應(yīng)用基礎(chǔ)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海-猶他聯(lián)合重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(西寧 810001)
MicroRNAs(miRNAs)是一類小非編碼的RNA分子,包含大約20~22個(gè)核苷酸,對(duì)基因表達(dá)調(diào)控具有重要意義。miRNAs普遍存在生物體內(nèi),并在許多器官和組織中表達(dá),包括脂肪組織。哺乳動(dòng)物含有兩種類型的脂肪組織,即白色脂肪組織(WAT)和棕色脂肪組織(BAT),前者是機(jī)體最大的能量?jī)?chǔ)存庫;后者的作用則是消耗能量,維持機(jī)體體溫。BAT最初是在冬眠動(dòng)物和新生兒體內(nèi)發(fā)現(xiàn),主要作用是對(duì)抗寒冷。后來BAT在成年人體內(nèi)也被發(fā)現(xiàn),并揭示了其保持能量平衡和改善代謝的潛能。另一類介于二者之間的脂肪細(xì)胞,米色脂肪細(xì)胞,即白色脂肪“棕色化”。近年來許多研究證明,miRNAs對(duì)脂肪組織的分化、棕色脂肪的激活以及白色脂肪“棕色化”的調(diào)控具有重要作用。因此,本文將從miRNAs對(duì)棕色脂肪生成和白色脂肪“棕色化”的調(diào)控作一綜述。
1.1白色脂肪組織WAT來源于Myf5陰性祖細(xì)胞,細(xì)胞呈圓形,只含有一個(gè)脂滴,線粒體含量少。WAT在機(jī)體廣泛存在,根據(jù)其分布,可分為內(nèi)臟白色脂肪組織(vWAT)和皮下白色脂肪組織(sWAT),前者主要包裹在器官周圍,后者則分布在腹股溝區(qū)、腰腹部、大網(wǎng)膜、脊柱旁等。WAT是人體最大的“能源儲(chǔ)存庫”。WAT的主要功能是以甘油三酯的形式儲(chǔ)存過剩的能量,在機(jī)體需要時(shí)快速補(bǔ)充。另外,WAT還有支持填充、保護(hù)內(nèi)臟、維持體溫的作用。
1.2棕色脂肪組織BAT來源于Myf5陽性細(xì)胞,含有大量線粒體和少量脂滴。早在16世紀(jì),科學(xué)家們認(rèn)為BAT只存在于冬眠的哺乳動(dòng)物和新生兒體內(nèi)。直到2007年科學(xué)家在成年人體內(nèi)發(fā)現(xiàn)具有功能的BAT才打破這一定論。BAT在人體主要分布在肩胛間區(qū)、頸部、腋窩、縱隔、腎周、鎖骨上。寒冷刺激能夠激活BAT,并通過非震顫性產(chǎn)熱產(chǎn)生熱量。這一過程是通過線粒體呼吸鏈內(nèi)膜的解耦聯(lián)蛋白?1(UCP?1)氧化磷酸化實(shí)現(xiàn)的。研究證實(shí),體型偏瘦的人群比肥胖人群BAT含量多。因此,移植BAT可能是減肥的一項(xiàng)潛在措施。
1.3白色脂肪棕色化“棕色化”的白色脂肪細(xì)胞即米色脂肪細(xì)胞,其來源于WAT本身,尤其是腹股溝區(qū)的WAT。米色脂肪組織在形態(tài)上與BAT相似,脂滴呈多腔室,富含大量線粒體,高表達(dá)UCP?1陽性細(xì)胞,并且表達(dá)棕色脂肪特異性基因,包括UCP?1、細(xì)胞死亡誘導(dǎo)的DNA片段因子A(Cidea)、過氧化物酶激活體共激活因子 1α(PGC?1α)、PR 結(jié)合域蛋白 16(PRDM16)以及 CCAAT/增強(qiáng)子β(C/EBPβ)。米色脂肪細(xì)胞在形態(tài)上以及產(chǎn)熱基因的表達(dá)與棕色脂肪細(xì)胞十分相似[1],這類脂肪細(xì)胞也被稱作誘導(dǎo)的棕色脂肪細(xì)胞[2]。然而,目前關(guān)于米色脂肪細(xì)胞的特性和來源仍存在許多爭(zhēng)議。主要有以下幾種觀點(diǎn):(1)它們是由白色脂肪細(xì)胞前體分化而來[3];(2)它們來源于白色脂肪細(xì)胞本身,可被寒冷誘導(dǎo)[4];(3)它們可由脂肪前體細(xì)胞分化[5]。因此,根據(jù)WAT的分布不同,米色脂肪細(xì)胞的來源和生成也有明顯差異[6]。最近的一項(xiàng)研究[7]表明,通過寒冷刺激誘導(dǎo)的皮下白色脂肪細(xì)胞來源于平滑肌前體細(xì)胞,這一發(fā)現(xiàn)暗示米色脂肪細(xì)胞具有多相性。因此,需要設(shè)計(jì)更多的實(shí)驗(yàn)誘導(dǎo)白色脂肪棕色化,通過形態(tài)學(xué)、分子生物學(xué)手段明確其來源和性質(zhì),使其得到廣泛應(yīng)用。
2.1PRDM16miRNAs對(duì)棕色脂肪和米色脂肪的調(diào)節(jié)主要通過轉(zhuǎn)錄因子作用。這些轉(zhuǎn)錄因子包括PRDM16,PRDM16是1個(gè)分子量為140 kD的鋅指蛋白,對(duì)棕色脂肪和米色脂肪的形成具有重要作用[8]。PRDM16可以與很多調(diào)節(jié)因子共同作用,包括PGC?1α、PGC?1β、C/EBPβ,常染色質(zhì)組蛋白?賴氨酸N端甲基轉(zhuǎn)移酶?1(EHMT1)[9]和C末端結(jié)合蛋白(CtBPs)。早期的B 細(xì)胞因子?2(EBF2)與PRDM16作用,是通過招募PPARγ與BAT選擇性的靶基因?qū)崿F(xiàn)[10]。PRDM16是米色脂肪分化和出生后BAT形成的主要調(diào)節(jié)因子,它可能與其他調(diào)節(jié)因子之間具有復(fù)雜的聯(lián)系。
2.2PPARs調(diào)節(jié)因子過氧化物酶增殖激活受體α(PPARα)對(duì)棕色脂肪細(xì)胞的分化作用并不清楚。然而,去除PPARα可減少棕色脂肪特異性基因的表達(dá),包括Zic1,Lhx8和PRDM16,這一結(jié)果暗示PPARα對(duì)棕色脂肪生成的重要性。2011年,Marta Giralt's團(tuán)隊(duì)證實(shí)PPARα通過鏈接PPAR與PGC?1α啟動(dòng)子末端的反應(yīng)元件誘導(dǎo)PGC?1α表達(dá)。
2.3其他轉(zhuǎn)錄因子其他調(diào)節(jié)棕色脂肪形成的轉(zhuǎn)錄因子包括,骨形成蛋白7(BMP7)和促食素(Orexin)。BMP7促進(jìn)棕色脂肪組織的形成和產(chǎn)熱通過許多機(jī)制實(shí)現(xiàn),包括誘導(dǎo)PRDM16和PGC?1α的表達(dá),增加 UCP?1的表達(dá),增強(qiáng)PPARγ和C/EPBs的表達(dá),以及誘導(dǎo)線粒體的生成。Orexin則通過p38/MAPK通路和骨形成蛋白受體?1α(BMPR1A)依賴的Smad信號(hào)通路起作用。
綜上所述,PRDM16和PPARs對(duì)白色脂肪棕色化具有重要作用。PPARα是通過PRDM16和PGC?1α促進(jìn)棕色化。近年來,PPARγ受體激動(dòng)劑廣泛且高效應(yīng)用于白色脂肪棕色化。給予PPARγ受體激動(dòng)劑以后,誘導(dǎo)PGC?1α表達(dá),從而產(chǎn)生棕色化反應(yīng)。PRDM16明顯促進(jìn)羅格列酮(一種PPARγ受體激動(dòng)劑)誘導(dǎo)白色脂肪棕色化[11]。相反地,去除PRDM16導(dǎo)致羅格列酮對(duì)棕色脂肪的形成作用減弱。最近的一項(xiàng)研究[12]表明,Sirtuin 1(SIRT1)促進(jìn)白色脂肪棕色化依賴于PPARγ脫乙酰作用,并通過招募PRDM16實(shí)現(xiàn)。另外一個(gè)誘導(dǎo)白色脂肪棕色化的重要通路是環(huán)鳥苷酸(cGMP)信號(hào)通路,cGMP通過增加鳥苷酸環(huán)化酶刺激因子[13]鈉尿肽(NPs)[14]或磷酸二酯酶?5抑制劑(例如西地那非)[15]誘導(dǎo)棕色化。
miRNAs是一類非編碼的小分子RNA,在人和動(dòng)物體內(nèi)廣泛表達(dá)。miRNAs通過初級(jí)miRNA(pri?miRNA)轉(zhuǎn)錄,轉(zhuǎn)錄后,pri?miRNA在酶的作用下成熟,即形成具有發(fā)夾結(jié)構(gòu)的pre?miRNA,pre?miRNA在轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白?5的作用下轉(zhuǎn)運(yùn)到細(xì)胞質(zhì),在Dicer酶的作用下切除莖環(huán)結(jié)構(gòu),形成大約22個(gè)核苷酸的雙鏈miRNA。近年來,miRNAs被證實(shí)在許多不同物種的BAT中存在,同時(shí)研究證實(shí)miRNAs可調(diào)控經(jīng)典棕色脂肪的生成和白色脂肪棕色化。miRNAs對(duì)棕色化的調(diào)控包括正向調(diào)控和負(fù)向調(diào)控。最近的一項(xiàng)研究[16]證實(shí),通過miRNA途徑可以使棕色脂肪組織白色化,揭示了miRNA對(duì)BAT的分化影響。因此,探索和發(fā)現(xiàn)一些miRNA的作用和機(jī)制以及其對(duì)棕色化的影響具有重要意義。筆者將聚焦于近年來發(fā)現(xiàn)的一些miRNAs,并將其對(duì)棕色脂肪組織和棕色化的作用進(jìn)行概括。
3.1.1miRNA?196amiRNA?196a對(duì)白色脂肪祖細(xì)胞棕色化具有必不可少的作用,其通過C/EBPβ,PRDM16,UCP?1和PGC?1α等[17]轉(zhuǎn)錄因子誘導(dǎo)棕色脂肪基因的表達(dá)。miR?NA?196a還可通過抑制Homeobox C8(HoxC8)誘導(dǎo)棕色化,HoxC8是白色脂肪形成的決定因子[18]。HoxC8可直接抑制C/EBPβ的表達(dá),而C/EBPβ是誘導(dǎo)棕色脂肪產(chǎn)熱和UCP?1表達(dá)的關(guān)鍵因子。miRNA?196a的表達(dá)可通過寒冷暴露和β3?腎上腺受體刺激誘導(dǎo),然而機(jī)制并不清楚。因此,尚需更多設(shè)計(jì)合理的實(shí)驗(yàn),通過對(duì)影響棕色化的多靶點(diǎn)干預(yù),明確miRNA?196a促進(jìn)棕色化的信號(hào)通路和靶向作用。
3.1.2miRNA?26miRNA?26家族(包括miRNA?26a和miRNA?26b)已被證實(shí)是調(diào)節(jié)人類白色脂肪和米色脂肪分化的關(guān)鍵因子[19],在白色脂肪細(xì)胞分化時(shí)表達(dá)增加。miRNA?26a在棕色脂肪組織中含量豐富,并且通過寒冷刺激后在WAT中表達(dá)。模擬miRNA?26a/b對(duì)白色脂肪和米色脂肪的作用,是通過BAT 特異性基因,包括UCP?1、PGC?1α和aP2的表達(dá),進(jìn)而增加UCP?1陽性細(xì)胞實(shí)現(xiàn)的。miRNA?26家族對(duì)白色/米色脂肪的形成依賴于金屬鈦酶域?17(AD?AM17),它可能是抑制脂肪形成或者抑制棕色化的因子。然而,其作用機(jī)制并不清楚。由此可見,對(duì)ADAM17的上下游進(jìn)行深入的研究是十分必要的,這樣方能明確其對(duì)脂肪合成和棕色化的作用。
3.1.3miRNA?30miRNA?30家族(包括miRNA?30b和miRNA?30c)被證實(shí)可以促進(jìn)產(chǎn)熱過程和棕色化反應(yīng)[20]。它們?cè)贐AT中的表達(dá)高于WAT,且在寒冷刺激或β?腎上腺受體激活狀態(tài)下促進(jìn)BAT的分化。miRNA?30b/c促進(jìn)產(chǎn)熱是通過上調(diào)產(chǎn)熱基因(UCP?1和Cidea)的表達(dá),從而誘導(dǎo)棕色脂肪細(xì)胞線粒體呼吸。miRNA?30家族也可增強(qiáng)腹股溝區(qū)白色脂肪基質(zhì)血管成分產(chǎn)熱基因和線粒體呼吸作用。一項(xiàng)針對(duì)小鼠的體內(nèi)阻斷實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,抑制miRNA?30b/c的表達(dá)導(dǎo)致UCP?1表達(dá)下調(diào),同時(shí)BAT線粒體呼吸作用減弱。miRNA?30b/c對(duì)UCP?1和Cidea的作用是通過靶向作用受體交叉蛋白140(RIP140)實(shí)現(xiàn),RIP140是產(chǎn)熱基因UCP?1和Cidea的輔抑制物[21]。因此,miRNA?30b/c正向調(diào)控BAT,促進(jìn)白色脂肪棕色化。
3.1.4miRNA?455miRNA?455對(duì)棕色脂肪的形成起正向調(diào)控作用,使棕色脂肪特異性基因表達(dá),可以被寒冷和BMP7誘導(dǎo)[22]。在棕色脂肪細(xì)胞和白色脂肪前體細(xì)胞中過表達(dá)miRNA?455以及在多潛能祖細(xì)胞中過表達(dá)miRNA?455均可促進(jìn)細(xì)胞分化,并且增加脂滴積累,表達(dá)多種脂肪形成基因和棕色脂肪特異性基因。相反地,抑制miRNA?455的表達(dá)導(dǎo)致棕色脂肪生成被抑制。有研究證實(shí),在小鼠體內(nèi)移植表達(dá)miRNA?455的C3H/10T1/2細(xì)胞可以增加產(chǎn)熱。研究表明,高脂飲食誘導(dǎo)的miRNA?455轉(zhuǎn)基因小鼠出現(xiàn)腹股溝區(qū)白色脂肪棕色化,產(chǎn)熱能力增加,抵御寒冷能力增加,胰島素敏感性增加,糖耐量改善,體重減輕。相反地,miRNA?455敲除小鼠棕色脂肪減少,UCP?1、PGC?1α和PPARγ表達(dá)被抑制。miRNA?455作用的3個(gè)靶點(diǎn)包括Runx1t1、Necdin和低氧誘導(dǎo)因子?1α亞基抑制劑(HIF?1αn)。miRNA?455通過HIF?1αn減少AMP?激活蛋白激酶α1(AMPKα1)中Asn173的羥基化,增強(qiáng)AMPKα1活性,從而增加PGC?1α的表達(dá),促使線粒體合成,同時(shí)增加脂肪動(dòng)員和脂肪分解的基因表達(dá)。由于miRNA?455對(duì)HIF?1αn的作用,因此,探尋其在高原物種體內(nèi)的作用,極有可能為高原人群和土生動(dòng)物在高原極端寒冷、低氧環(huán)境下的適應(yīng)機(jī)制另辟蹊徑。
3.2.1miRNA?378miRNA?378對(duì)BAT起正向調(diào)控作用[23],而對(duì)白色脂肪棕色化卻呈現(xiàn)出負(fù)向調(diào)控。miRNA?378轉(zhuǎn)基因小鼠在寒冷暴露下,腹股溝區(qū)WAT產(chǎn)熱途徑被完全抑制。出現(xiàn)這種現(xiàn)象的原因可能是BAT和WAT之間的串?dāng)_作用,而不是miRNA?378本身的影響。miRNA?378轉(zhuǎn)基因能夠改善肥胖基因小鼠的肥胖狀態(tài)和飲食誘導(dǎo)的肥胖,miRNA?378對(duì)棕色脂肪的作用可能是靶向作用Pde1b(一種磷酸二酯酶),通過催化cAMP的翻轉(zhuǎn)作用,從而導(dǎo)致cAMP水平降低。也就是說,miRNA?378能夠促進(jìn)棕色脂肪的合成,但對(duì)皮下白色脂肪組織棕色化作用鈍化。出現(xiàn)這種結(jié)果可能與實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)、物種差異以及寒冷暴露的溫度有關(guān),因此,需要更多的實(shí)驗(yàn)來驗(yàn)證其可靠性,譬如對(duì)冷暴露溫度進(jìn)行逐級(jí)分組,通過miRNA?378干擾明確其對(duì)白色脂肪和棕色脂肪的作用。
3.2.2miRNA?133miRNA?133在肌肉組織中高表達(dá),是第一個(gè)被證實(shí)抑制棕色脂肪合成的miRNAs之一[24]。miRNA?133直接作用于PRDM16,并負(fù)向調(diào)控其表達(dá)。寒冷暴露后,BAT中miRNA?133下調(diào),PRDM16和其下游的產(chǎn)熱基因表達(dá)增加。miR?133在BAT和腹股溝區(qū)WAT中均表達(dá)。敲除miRNA?133的小鼠腹股溝區(qū)白色脂肪棕色化[25]。所以,miRNA?133通過抑制PRDM16影響棕色脂肪的生成和白色脂肪棕色化。為進(jìn)一步證實(shí)miR?133對(duì)棕色脂肪的作用,可通過其在高原鼠兔等完全寒冷適應(yīng)的物種體內(nèi)驗(yàn)證,即分別在室溫和寒冷暴露下檢測(cè)miR?133的表達(dá),觀察高原鼠兔棕色脂肪的激活以及腹股溝區(qū)白色脂肪棕色化的程度,并通過機(jī)體的產(chǎn)熱量和能量代謝參數(shù)證實(shí)棕色脂肪的激活。
3.2.3miRNA?155miRNA?155在BAT中高表達(dá),研究證實(shí)其對(duì)棕色脂肪和白色脂肪棕色化呈負(fù)向調(diào)控。miRNA?155在BAT增殖時(shí)高表達(dá),并隨細(xì)胞分化衰退。miRNA?155直接作用于C/EBPβ,C/EBPβ對(duì)BAT的分化和白色脂肪棕色化具有關(guān)鍵作用。盡管C/EBPβ與白色脂肪和棕色脂肪細(xì)胞的分化均相關(guān),C/EBPβ/C/EBPδ基因敲除小鼠對(duì)棕色脂肪生成具有明顯抑制作用,C/EBPβ對(duì)白色脂肪細(xì)胞的作用甚微。敲除C/EBPβ導(dǎo)致BAT性狀改變(包括脂滴減少以及UCP?1表達(dá)下調(diào))。C/EBPβ對(duì)BAT的作用可概括為:(1)C/EBPβ在棕色脂肪對(duì)抗白色脂肪表達(dá)時(shí)的短暫動(dòng)力不同;(2)其與PRDM16相互作用形成轉(zhuǎn)錄復(fù)合體。C/EBPβ對(duì)棕色脂肪細(xì)胞的生成具有關(guān)鍵作用。應(yīng)用慢病毒表達(dá)miRNA?155影響棕色脂肪的生成以及UCP?1和PGC?1α的產(chǎn)熱能力[26]。相反,miRNA?155抑制劑促進(jìn)棕色脂肪的生成以及誘導(dǎo)寒冷暴露后白色脂肪棕色化。一方面,miRNA?155對(duì)C/EBPβ起負(fù)向調(diào)控作用,導(dǎo)致miRNA?155和C/EBPβ的雙向負(fù)反饋。另一方面,miRNA?155對(duì)轉(zhuǎn)換生長(zhǎng)因子?β1(TGFβ1)起正向調(diào)控作用,抑制3T3?L1細(xì)胞的脂肪合成。miRNA?155轉(zhuǎn)基因小鼠棕色脂肪組織重量減少,脂滴減小,甘油三酯含量減少,成脂基因和產(chǎn)熱基因表達(dá)減少,并導(dǎo)致棕色脂肪特異性轉(zhuǎn)基因小鼠皮溫降低。然而,miRNA?155敲除小鼠肩胛區(qū)皮溫上升,冷暴露后脂肪分解和細(xì)胞內(nèi)呼吸增強(qiáng),腹股溝區(qū)棕色樣細(xì)胞增加。
3.2.4miRNA?27miRNA?27通過作用于PPARγ使白色脂肪的生成抑制。同時(shí),有研究證實(shí),miRNA?27抑制棕色脂肪的生成和棕色化反應(yīng)。寒冷暴露或β?腎上腺激動(dòng)劑治療后,miRNA?27表達(dá)減少。miRNA?27抑制劑促使內(nèi)臟和sWAT中棕色脂肪生成基因表達(dá)增加(包括UCP1、PRDM16、PPARα/γ、Cidea和PGC1α)。miRNA?27負(fù)向調(diào)控棕色脂肪或棕色化作用是通過PRDM16、PPARα/γ、cAMP反應(yīng)元件結(jié)合蛋白(Creb)和部分PGC?1β實(shí)現(xiàn)。因此,可通過下調(diào)miRNA?27的表達(dá)及使用其抑制劑促進(jìn)白色脂肪棕色化和激活棕色脂肪,從而為肥胖等代謝性疾病提供潛在治療。
3.2.5miRNA?34amiRNA?34a對(duì)棕色脂肪生成或棕色化起負(fù)向調(diào)控作用,在肥胖時(shí)表達(dá)增加。下調(diào)miRNA?34a對(duì)高脂飲食誘導(dǎo)的肥胖具有正向調(diào)控作用,即在飲食正常的情況下減輕體重和白色脂肪的重量。下調(diào)miRNA?34a的表達(dá)促進(jìn)棕色脂肪生成和棕色化反應(yīng),這種作用是通過上調(diào)棕色脂肪生成基因(UCP?1、PRDM16和PGC?1α)的表達(dá)實(shí)現(xiàn),從而增強(qiáng)白色脂肪和棕色脂肪組織中線粒體功能。FGF21被證實(shí)能夠促進(jìn)棕色脂肪生成及白色脂肪棕色化[27],miRNA?34a可直接作用于 FGF21受體 FGFR1。因此,可通過下調(diào)miRNA?34a增加NAD+水平,SIRT1表達(dá)以及PGC?1α脫乙?;纳浦窘M織中FGF21信號(hào)通路,從而誘導(dǎo)白色脂肪棕色化。
BAT在激活狀態(tài)下可以燃燒脂滴和分解葡萄糖,從而增加能量消耗。因此,BAT是治療肥胖的一個(gè)潛在靶點(diǎn)。多項(xiàng)研究以及對(duì)嚙齒類動(dòng)物的研究表明,除了BAT,白色脂肪棕色化也可增加能量消耗,從而抵抗肥胖。迄今為止,許多miRNAs被證實(shí)能夠調(diào)控轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá),包括PRDM16、PPARα/γ、C/EBPβ和PGC1α/β。盡管許多文獻(xiàn)報(bào)道了miRNAs對(duì)棕色脂肪的生成及白色脂肪棕色化具有關(guān)鍵作用,然而,只有少數(shù)miRNA對(duì)棕色脂肪生成及白色脂肪棕色化作用機(jī)制被闡明,如 miRNA?196a、miRNA?26、miRNA?30、miRNA?455起正向調(diào)控作用;而 miRNA?378、miRNA?133、miRNA?155、miRNA?27、miRNA?34a則起負(fù)向調(diào)控作用。因此,亟需建立比較完整的miRNAs調(diào)控網(wǎng)絡(luò)。盡管一些miRNA的治療已經(jīng)進(jìn)入臨床[28-29],但更加完善、系統(tǒng)的關(guān)于miRNAs對(duì)棕色脂肪組織生成和白色脂肪棕色化的研究仍在進(jìn)行中,最終為肥胖以及代謝相關(guān)性疾病提供有效治療。
表1 參與調(diào)控白色脂肪棕色化的miRNAsTab.1 MicroRNAs participate in white fat browning
[1]WU J,BOSTROM P,SPARKS L M,et al.Beige adipocytes are a distinct type of thermogenic fat cell in mouse and human[J].Cell,2012,150(2):366?376.
[2]HOFFMANN L S,LARSON C J,PFEIFER A.cGMP and brown adipose tissue[J].Handb Exp Pharmacol,2015,233:283?299.
[3]VITALI A,MURANO I,ZINGARETTI M C,et al.The adi?pose organ of obesity?prone C57BL/6J mice is composed of mixed white and brown adipocytes[J].J Lipid Res,2012,53(4):619?629.
[4]NEDERGAARD J,CANNON B.The browning of white adipose tissue:Some burning issues[J].Cell Metab,2014,20(3):396?407.
[5]WANG Q A,TAO C,GUPTA R K,et al.Tracking adipogene?sis during white adipose tissue development,expansion and re?generation[J].Nat Med,2013,19(10):1338?1344.
[6]LEE Y H,PETKOVA A P,MOTTILLO E P,et al.In vivo identification of bipotential adipocyte progenitors recruited by beta3?adrenoceptor activation and high?fat feeding[J].Cell Metab,2012,15(4):480?491.
[7]LONG J Z,SVENSSON K J,TSAI L,et al.A smooth muscle?like origin for beige adipocytes[J].Cell Metab,2014,19(5):810?820.
[8]COHEN P,LEVY J D,ZHANG Y,et al.Ablation of PRDM16 and beige adipose causes metabolic dysfunction and a subcuta?neous to visceral fat switch[J].Cell,2014,156(1-2):304?316.
[9]OHNO H,SHINODA K,OHYAMA K,et al.EHMT1 controls brown adipose cell fate and thermogenesis through the PRDM16 complex[J].Nature,2013,504(7478):163?167.
[10]RAJAKUMARI S,WU J,ISHIBASHI J,et al.EBF2 deter?mines and maintains brown adipocyte identity[J].Cell Metab,2013,17(4):562?574.
[11]OHNO H,SHINODA K,SPIEGELMAN B M,et al.PPAR gamma agonists induce a white?to?brown fat conversion through stabilization of PRDM16 protein[J].Cell Metab,2012,15(3):395?404.
[12]QIANG L,WANG L,KON N,et al.Brown remodeling of white adipose tissue by SirT1?dependent deacetylation of PPAR gamma[J].Cell,2012,150:620?632.
[13]HOFFMANN L S,ETZRODT J,WILLKOMM L,et al.Stimu?lation of soluble guanylylcyclase protects against obesity by re?cruiting brown adipose tissue[J].Nat Commun,2015,6:7235.
[14]BORDICCHIA M,LIU D,AMRI E Z,et al.Cardiac natriuret?ic peptides act via p38 MAPK to induce the brown fat thermo?genic program in mouse and human adipocytes[J].J Clin In?vest,2012,122(3):1022?1036.
[15]MITSCHKE M,HOFFMANN L S,GNAD T,et al.Increased cGMP promotes healthy expansion and browning of white adi?pose tissue[J].FASEB J,2013,27(4):1621?1630.
[16]MORI M A,RAGHAVAN P,THOMOU T,et al.Role of mi?croRNA processing in adipose tissue in stress defense and lon?gevity[J].Cell Metab,2012,16(3):336?347.
[17]MORI M,NAKAGAMI H,RODRIGUEZ?ARAUJO G,et al.Essential role for miR?196a in brown adipogenesis of white fat progenitor cells[J].PLoS Biol,2012,10(4):e1001314.
[18]GESTA S,TSENG Y H,KAHN C R.Developmental origin of fat:Tracking obesity to its source[J].Cell,2017,131(2):242?256.
[19]KARBIENER M,PISANI D F,F(xiàn)RONTINI A,et al.MicroRNA?26 family is required for human adipogenesis and drives char?acteristics of brown adipocytes[J].Stem Cells,2014,32(6):1578?1590.
[20]HU F,WANG M,XIAO T,et al.miR?30 promotes thermogen?esis and the development of beige fat by targeting RIP140[J].Diabetes,2015,64(6):2056?2068.
[21]NAUTIYAL J,CHRISTIAN M,PARKER M G.Distinct func?tions for RIP140 in development,inflammation,and metabo?lism[J].Trends Endocrinol Metab,2013,24(9):451?459.
[22]ZHANG H,GUAN M,TOWNSEND K L,et al.MicroRNA?455 regulates brown adipogenesis via a novel HIF1an?AMPK?PGC1alpha signaling network[J].EMBO Rep,2015,16(10):1378?1393.
[23]PAN D,MAO C,QUATTROCHI B,et al.MicroRNA?378 con?trols classical brown fat expansion to counteract obesity[J].Nat Commun,2014,5:4725.
[24]TRAJKOVSKI M,AHMED K,ESAU C ,et al.MyomiR?133 regulates brown fat differentiation through Prdm16[J].Nat Cell Biol,2012,14(12):1330?1335.
[25]LIU W,BI P,SHAN T,et al.miR?133a regulates adipocyte browning in vivo[J].PLoS Genet,2013,9(7):e1003626.
[26]CHEN Y,SIEGEL F,KIPSCHULL S,et al.miR?155 regu?lates differentiation of brown and beige adipocytes via a bistable circuit[J].Nat Commun,2013,4:1769.
[27]LEE P,LINDERMAN J D,SMITH S,et al.Irisin and FGF21 are cold?induced endocrine activators of brown fat function in humans[J].Cell Metab,2014,19(2):302?309.
[28]BOUCHIE A.First microRNA mimic enters clinic[J].Nat Bio?technol,2013,31(7):577.
[29]JANSSEN H L,REESINK H W,LAWITZ E J,et al.Treat?ment of HCV infection by targeting microRNA[J].N Engl J Med,2013,368(18):1685?1694.