蘇秀霞, 張 姣, 欒崇林, 霍文靜,徐 佳
(1.陜西科技大學(xué) 化學(xué)與化工學(xué)院 教育部輕化工助劑化學(xué)與技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 陜西 西安 710021; 2.深圳職業(yè)技術(shù)學(xué)院 應(yīng)用化學(xué)與生物技術(shù)學(xué)院, 廣東 深圳 518088)
液晶(LCs)兼具液體的流動(dòng)性和固體的光學(xué)各向異性[1],表面微小的地貌和化學(xué)結(jié)構(gòu)變化即會(huì)引起處于向列相的液晶分子的取向變化[2],進(jìn)而引起液晶膜顏色和亮度的變化.1998年,Abbot小組[3]首次以液晶作為“敏感元件”,基于構(gòu)建金膜法將基底表面發(fā)生的蛋白質(zhì)結(jié)合事件轉(zhuǎn)換為光學(xué)圖像信號(hào)檢測(cè)抗生物素蛋白(Av),這種液晶生物傳感技術(shù)具有低耗、快速、無(wú)需標(biāo)記,所呈現(xiàn)的光學(xué)信號(hào)肉眼可觀等優(yōu)點(diǎn),在非標(biāo)記生物傳感檢測(cè)方面具有潛在應(yīng)用價(jià)值,已經(jīng)實(shí)現(xiàn)了對(duì)酪氨酸[4]、膽固醇[5]、多肽[6]、蛋白質(zhì)[7]、核酸[8]、Hg2+[9]等的檢測(cè).
天蠶素B(CB)是人類(lèi)1980年從惜古比天蠶體內(nèi)發(fā)現(xiàn)的第一個(gè)抗菌肽[10],對(duì)革蘭氏陽(yáng)性菌[11]、革蘭氏陰性菌[12]、真菌[13]、癌細(xì)胞[14]、病毒[15]均有抑殺作用,其在動(dòng)植物抗病基因工程[16,17]、植物育種[18]、生物飼料添加劑[19]等領(lǐng)域有著巨大的潛在應(yīng)用價(jià)值.現(xiàn)有多肽的檢測(cè)方法主要有液相色譜-質(zhì)譜法[20]、毛細(xì)管電泳法[21]和免疫分析法[22]等.然而,以上方法樣品預(yù)處理繁瑣,有的還需要衍生化,對(duì)抗原抗體進(jìn)行標(biāo)記,耗時(shí)長(zhǎng)、成本高,且對(duì)操作人員要求高,應(yīng)用受限,因此,高靈敏性、特異性、非標(biāo)記、低成本的多肽檢測(cè)方法的研究迫在眉睫.
本文結(jié)合液晶生物傳感器無(wú)需標(biāo)記等優(yōu)點(diǎn),利用競(jìng)爭(zhēng)免疫法,通過(guò)在玻璃基底表面修飾自組裝膜誘導(dǎo)液晶分子垂直均一取向,觀察天蠶素B抗體(anti-CB)與天蠶素B結(jié)合前后液晶膜顏色和亮度的變化,并通過(guò)計(jì)算偏光顯微鏡成像灰度強(qiáng)度定量化分析天蠶素B濃度,構(gòu)建了一種非標(biāo)記、高靈敏、特異性的天蠶素B液晶生物傳感器.
(1)主要試劑:二甲基十八烷基[3-(三甲氧基硅基)丙基]氯化銨(DMOAP)、3-氨丙基三乙氧基硅烷(APTES)、天蠶素B均購(gòu)自美國(guó)Sigma-Aldrich公司;天蠶素B抗體購(gòu)自英國(guó)Abcam公司;4-氰基-4-戊基聯(lián)苯(5CB)購(gòu)自美國(guó)Instec公司;戊二醛(GA)購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;其余試劑均為分析純.
(2)主要儀器:XPL3230型透反兩用數(shù)碼偏光顯微鏡(上海光學(xué)儀器一廠);SPI3800N/SPA400型原子力顯微鏡(日本精工有限公司);OCA20視頻光學(xué)接觸角(德國(guó)dataphysics公司);玻片(江蘇飛舟玻塑有限公司);Mylar聚酯片(廣州市斯朗特電子科技有限公司).
將玻片切割成2 cm×2 cm,用熱的Piranha溶液[V(H2O2)∶V(H2SO4)]=3∶7于80 ℃浸泡1 h,依次用超純水和乙醇清洗干凈,經(jīng)N2吹干,于110 ℃干燥3 h,防塵備用.
上玻片的DMOAP自組裝:將清洗干凈的玻片浸入0.2%(v/v)的DMOAP水溶液中,常溫下靜置半小時(shí),超純水沖洗干凈,N2吹干,于110 ℃干燥1 h,防塵備用.
下玻片的APTES/DMOAP混合自組裝:將清洗干凈的玻片浸入3%(v/v)APTES和1%(v/v)DMOAP的10 mmol/L的醋酸-醋酸鈉溶液中(pH=5),于80 ℃恒溫2 h,超純水沖洗干凈,N2吹干,于110 ℃干燥1 h,然后浸入1%(v/v)的GA溶液中37 ℃反應(yīng)1 h,取出后用大量超純水沖洗,N2吹干,防塵備用.
將天蠶素B溶解于0.01 mol/L的PBS緩沖液中(pH=7.4),配置成不同濃度的天蠶素B溶液.取適量的天蠶素B溶液滴加至下玻片表面,于37 ℃反應(yīng)2 h,取出后分別用0.01 mol/L的PBS緩沖液(pH=7.4)和超純水沖洗,除去未固定的天蠶素B分子,N2吹干,置于-20 ℃下冷凍保存.
將處理后的上下玻片面對(duì)面組裝,玻片之間用Mylar聚酯片(中間開(kāi)凸型空腔)隔開(kāi),除開(kāi)孔方向外,其他三邊用小夾子固定.將液晶5CB于40 ℃恒溫箱中加熱約10 min,使其從渾濁液晶態(tài)變?yōu)槌吻逋噶恋囊簯B(tài),取少許液晶從開(kāi)孔處利用毛細(xì)管作用力注入液晶池內(nèi),待液晶布滿(mǎn)整個(gè)空腔,停止加熱,使液晶池緩慢冷卻至室溫(25 ℃)后利用偏光顯微鏡觀察.
根據(jù)競(jìng)爭(zhēng)免疫法,將一定濃度的天蠶素B抗體溶液與不同濃度的待測(cè)天蠶素B抗原溶液于37 ℃恒溫混勻10 min,取適量混合后溶液依次滴加至固定有天蠶素B抗原的玻片上,37 ℃反應(yīng)1 h,抗原抗體即可實(shí)現(xiàn)競(jìng)爭(zhēng)免疫反應(yīng),分別用0.01 mol/L的PBS緩沖液(pH=7.4)和超純水沖洗,除去非特異性吸附物質(zhì),N2吹干.按照1.5節(jié)方法制備成液晶池,使用偏光顯微鏡觀察液晶膜顏色和亮度變化并采集圖像分析,通過(guò)Adobe Photoshop CS5 軟件計(jì)算偏光顯微鏡成像灰度強(qiáng)度.
本文的檢測(cè)原理如圖1所示,在下玻片表面修飾APTES/DMOAP混合自組裝膜(如圖1(b)所示),DMOAP用于誘導(dǎo)液晶分子垂直均一取向,APTES中的氨基與GA中的一個(gè)醛基反應(yīng)后作為功能分子固定天蠶素B(如圖1(c)所示).當(dāng)依次滴加一定濃度的天蠶素B抗體溶液與不同濃度的待測(cè)天蠶素B抗原溶液后,此時(shí)玻片上已固定的天蠶素B與待測(cè)天蠶素B競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合抗體上有限的反應(yīng)位點(diǎn)(如圖1(d)所示),基底固定的天蠶素B與天蠶素B抗體特異性結(jié)合后,由于抗體分子具有一定的空間立體結(jié)構(gòu)以及分子尺寸效應(yīng),能夠擾亂液晶5CB分子的取向,使其呈傾斜或近平行排列,隨著樣品中待測(cè)天蠶素B濃度的變化,結(jié)合到基底的天蠶素B抗體量也隨之變化,進(jìn)而使液晶膜的顏色和亮度發(fā)生變化(如圖1(e)所示)實(shí)現(xiàn)對(duì)天蠶素B的特異性檢測(cè).當(dāng)不含天蠶素B抗體時(shí),由于液晶5CB分子呈垂直均一的取向因而不具有雙折射,不能使偏振光透過(guò),光學(xué)成像為均一黑色圖案(如圖1(f)所示).
2.2基底表面APTES/DMOAP/GA自組裝膜比例優(yōu)化
已有研究表明,基底自組裝膜的化學(xué)結(jié)構(gòu)與液晶膜的有效雙折射(Δneff)直接相關(guān),進(jìn)而影響其光學(xué)成像[23],因此液晶生物傳感器的基底修飾對(duì)生物分子的檢測(cè)至關(guān)重要.本文采取APTES與DMOAP混合自組裝法構(gòu)建基底敏感膜,DMOAP中的長(zhǎng)鏈烷基鏈能夠誘導(dǎo)液晶分子沿長(zhǎng)鏈方向取向,呈垂直排列,此時(shí)偏振光不能透過(guò)液晶池,光學(xué)圖像為均一的黑色圖案.APTES中的氨基與GA中的一個(gè)醛基反應(yīng)后作為功能分子固定生物分子,由于APTES為短鏈烷基,不能有效的誘導(dǎo)液晶分子垂直排列,偏光顯微鏡成像會(huì)產(chǎn)生背景干擾,因此,需要探究APTES與DMOAP比例對(duì)液晶取向的影響,確定最優(yōu)比例,在此基礎(chǔ)上,進(jìn)一步確定GA最優(yōu)含量.
(a)裸玻片 (b)DMOAP/APTES/GA基底自組裝膜 (c)天蠶素B的固定 (d)天蠶素B抗體與天蠶素B特異性結(jié)合 (e)天蠶素B抗體與天蠶素B特異性結(jié)合后液晶5CB分子為傾斜排列 (f)未加入天蠶素B抗體時(shí)液晶5CB分子為垂直排列圖1 液晶生物傳感器檢測(cè)天蠶素B示意圖及液晶池的組裝過(guò)程
從圖2可以看出,當(dāng)APTES與DMOAP比例較高時(shí)(25∶1,如圖2(a)所示),由于DMOAP含量較少,不能有效誘導(dǎo)液晶分子垂直排列,光學(xué)成像中亮斑大且多,隨著APTES與DMOAP比例減小,光學(xué)成像中亮斑逐漸減少,當(dāng)兩者比例為5∶1和3∶1時(shí),光學(xué)成像均為均一黑色圖案,不會(huì)干擾生物分子的檢測(cè),因此,選取APTES與DMOAP比例為5∶1和3∶1,進(jìn)一步探討GA含量對(duì)液晶取向的影響.
(a)25∶1 (b)10∶1
(c)5∶1 (d)3∶1圖2 不同體積比的APTES/DMOAP基底自組裝膜制備的液晶池光學(xué)成像
GA含量決定基底表面醛基密度,當(dāng)GA含量為2.5%(v/v)時(shí),APTES與DMOAP比例為5∶1(如圖3(a)所示)和3∶1(如圖3(b)所示)光學(xué)成像中出現(xiàn)均勻分布的較大彩色亮斑.當(dāng)GA含量減少到1%(v/v)時(shí),圖像中亮斑減少,APTES與DMOAP為5∶1時(shí)(如圖3(c)所示),亮斑呈星點(diǎn)分布,而當(dāng)兩者比例為3∶1時(shí)(如圖3(d)所示),圖案呈現(xiàn)全黑背景,不干擾生物分子檢測(cè),因此實(shí)驗(yàn)最佳比例為APTES與DMOAP體積比為3∶1,GA含量為1%(v/v).
(a)APTES/DMOAP為5∶1,GA含量為2.5%(v/v) (b)APTES/DMOAP為3∶1,GA含量為2.5%(v/v) (c)APTES/DMOAP為5∶1,GA含量為1%(v/v) (d)APTES/DMOAP為3∶1,GA含量為1%(v/v)圖3 GA含量對(duì)液晶池光學(xué)成像的影響
液晶分子的取向?qū)妆砻娴孛沧兓浅C舾?,天蠶素B與GA交聯(lián)固定到基底表面后,會(huì)在一定程度上改變表面地貌結(jié)構(gòu)從而影響液晶分子的取向,因此需要考察固定化天蠶素B濃度對(duì)液晶池光學(xué)成像的影響.結(jié)果如圖4所示,當(dāng)天蠶素B濃度較高時(shí)(500 ng/mL),對(duì)液晶分子取向擾亂程度較大,光學(xué)成像中有較大的彩色亮斑出現(xiàn)(如圖4(a)所示),背景值較高,干擾后續(xù)檢測(cè).隨著固定化天蠶素B抗原濃度的減小,對(duì)液晶分子取向擾亂減小,液晶池光學(xué)成像逐漸變暗,當(dāng)固定化抗原濃度為150 ng/mL、100 ng/mL、80 ng/mL時(shí),光學(xué)成像中只有少數(shù)星點(diǎn)亮斑,趨近于全黑背景(如圖4(d)、(e)、(f)所示),由于需要足夠的抗原與抗體反應(yīng),因此選擇能夠使光學(xué)成像背景保持黑暗的最高固定化天蠶素B濃度150 ng/mL固定于基底表面.
(a)500 ng/mL (b)250 ng/mL
(c)200 ng/mL (d)150 ng/mL
(e)100 ng/mL (f)80 ng/mL圖4 不同濃度的固定化天蠶素B制備的液晶池光學(xué)成像
進(jìn)一步考察天蠶素B抗體濃度對(duì)液晶池光學(xué)成像的影響.如圖5所示,在樣品中不含待測(cè)天蠶素B抗原的條件下,天蠶素B抗體濃度為1 000、500 ng/mL時(shí)(如圖5(a)、(b)所示),偏光顯微鏡成像中有彩色亮斑出現(xiàn),當(dāng)天蠶素B抗體濃度為300、150、75 ng/mL時(shí),偏光顯微鏡成像只有少數(shù)亮點(diǎn)趨近于全黑背景(如圖5(c)、(d)、(e)所示).在后續(xù)檢測(cè)中,基底已固定天蠶素B會(huì)與待測(cè)天蠶素B競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合天蠶素B抗體上有限的反應(yīng)位點(diǎn),當(dāng)待測(cè)天蠶素B濃度趨于0時(shí)(檢測(cè)限無(wú)限低),天蠶素B抗體最大限度地與基底已固定天蠶素B結(jié)合擾亂液晶分子取向,使液晶池光學(xué)成像產(chǎn)生亮斑.隨著待測(cè)天蠶素B濃度的增加,與基底已固定天蠶素B結(jié)合的天蠶素B抗體隨之減小,光學(xué)成像由亮變暗,從而實(shí)現(xiàn)對(duì)天蠶素B的檢測(cè).由于樣品中待測(cè)天蠶素B含量較低,基于競(jìng)爭(zhēng)免疫反應(yīng)產(chǎn)生的信號(hào)變化非常小,較大濃度的天蠶素B抗體會(huì)影響檢測(cè)限,因此選擇能夠使光學(xué)成像出現(xiàn)亮斑的最低天蠶素B抗體濃度500 ng/mL進(jìn)行后續(xù)檢測(cè).
(a)1 000 ng/mL (b)500 ng/mL
(c)300 ng/mL (d)150 ng/mL
(e)75 ng/mL圖5 不同濃度的天蠶素B抗體制備的液晶池光學(xué)成像
基于競(jìng)爭(zhēng)免疫原理,在一定濃度范圍內(nèi),待測(cè)天蠶素B的濃度越低,結(jié)合到基底玻片表面的天蠶素B抗體分子越多,圖像越亮;反之,待測(cè)天蠶素B濃度越高,結(jié)合到基底玻片表面的天蠶素B抗體分子越少,圖像趨于全黑.如圖6所示,當(dāng)待測(cè)天蠶素B含量超過(guò)0.1 ng/mL時(shí),光學(xué)信號(hào)出現(xiàn)明顯變化.
(a)0 ng/mL (b)0.01 ng/mL
(c)0.1 ng/mL (d)1 ng/mL
(e)10 ng/mL (f)100 ng/mL圖6 不同濃度的待測(cè)天蠶素B制備的液晶池光學(xué)成像
以上方法能夠?qū)崿F(xiàn)對(duì)天蠶素B的定性檢測(cè).為了進(jìn)一步定量化檢測(cè)天蠶素B濃度,探究了圖6中偏光顯微鏡成像灰度強(qiáng)度值與天蠶素濃度之間的相關(guān)性.如圖7所示,隨著天蠶素B濃度的增加,偏光顯微鏡成像灰度值逐漸減小,當(dāng)天蠶素B濃度大于10 ng/mL時(shí),灰度強(qiáng)度值趨于0.天蠶素B濃度在0.01~0.1 ng/mL范圍內(nèi)時(shí),偏光顯微鏡成像灰度強(qiáng)度值與天蠶素B濃度之間具有線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)為0.985 2.液晶生物傳感器傳感器能夠使天蠶素B的檢測(cè)限低至0.01 ng/mL.
圖7 偏光顯微鏡成像灰度強(qiáng)度與天蠶素B濃度關(guān)系(插圖:天蠶素B濃度在0.01~0.1 ng/mL范圍內(nèi)與偏光顯微鏡灰度強(qiáng)度之間為線性關(guān)系.誤差線為每個(gè)濃度進(jìn)行四次測(cè)量后的標(biāo)準(zhǔn)偏差.)
(1) 硅烷化試劑自組裝膜法構(gòu)建的基底敏感膜能夠很好的誘導(dǎo)液晶分子垂直取向,偏光顯微鏡觀測(cè)結(jié)果表明:APTES與DMOAP體積比為3∶1,GA含量為1%時(shí)(v/v),光學(xué)成像為均一黑色圖案,不干擾后續(xù)檢測(cè).
(2) 基于競(jìng)爭(zhēng)免疫原理,固定化天蠶素B濃度為150 ng/mL時(shí)光學(xué)成像為黑色圖案,天蠶素B抗體濃度為500 ng/mL時(shí),光學(xué)成像中有彩色亮斑出現(xiàn),以此為基礎(chǔ)進(jìn)一步檢測(cè)待測(cè)天蠶素B.
(3) 液晶生物傳感器可在0.01~0.1 ng/mL線性范圍內(nèi)實(shí)現(xiàn)對(duì)天蠶素B的非標(biāo)記、高靈敏性、特異性檢測(cè),檢測(cè)低至0.01 ng/mL.
[1] Hussain Z,Qazi F,Ahmed M I,et al.Liquid crystals based sensing platform-technological aspects[J].Biosensors & Bioelectronics,2016,85:110-127.
[2] Price A D,Schwartz D K.DNA hybridization-induced reorientation of liquid crystal anchoring at the nematic liquid crystal/aqueous interface[J].Journal of the American Chemical Society,2008,130(26):8 188-8 194.
[3] Gupta V K,Skaife J J,Dubrovsky T B,et al.Optical amplification of ligand-receptor binding using liquid crystals[J].Science,1998,279(5 359):2 077-2 080.
[4] 李廣,陳龍聰,陳萌夢(mèng),等.基于金納米顆粒生長(zhǎng)的液晶生物傳器檢測(cè)酪氨酸[J].高等學(xué)?;瘜W(xué)學(xué)報(bào),2013,34(11):2 493-2 498.
[5] Munir S,Khan M,Park S Y.Bienzyme liquid-crystal-based cholesterol biosensor[J].Sensors & Actuators B Chemical,2015,220(5):508-515.
[6] Qiongzheng Hu,Changhyun Jang.Using liquid crystals to report molecular interactions between cationic antimicrobial peptides and lipid membranes[J].Analyst,2012,137(3):567-570.
[7] Quan He,Han Lei,Suxin Luo,et al.Liquid crystal biosensor for detecting ischemia modified albumin[J].Research on Chemical Intermediates,2017,43:353-360.
[8] Hui Tan,Xia Li,Shuzhen Liao,et al.Highly-sensitive liquid crystal biosensor based on DNA dendrimers-mediated optical reorientation[J].Biosensors & Bioelectronics,2014,62(20):84-89.
[9] Shengyuan Yang,Chao Wu,Hui Tan,et al.Label-free liquid crystal biosensor based on specific oligonucleotide probes for heavy metal ions[J].Analytical Chemistry,2013,85(1):14-18.
[10] Dan H,Steiner H,Rasmuson T,et al.Insect immunity.purification and properties of three inducible bactericidal proteins from hemolymph of immunized pupae of hyalophora cecropia[J].European Journal of Biochemistry,1980,106(1):7-16.
[11] Hara S,Yamakawa M.A novel antibacterial peptide family isolated from the silkworm,bombyx mori[J].Biochemical Journal,1995,310(2):651-656.
[12] Sato H,Feix J B.Peptide-membrane interactions and mechanisms of membrane destruction by amphipathicα-helical antimicrobial peptides[J].Biochimica Et Biophysica Acta Biomembranes,2006,1 758(9):1 245-1 256.
[13] Maloy W L,Kari U P.Structure-activity studies on magainins and other host defense peptides[J].Biopolymers,1995,37(2):105-122.
[14] Suttmann H,Retz M,Paulsen F,et al.Antimicrobial peptides of the cecropin-family show potent antitumor activity against bladder cancer cells[J].Bmc Urology,2008,8(1):1-7.
[15] Tajui Chia,Yuchi Wu,Jyhyih Chen,et al.Antimicrobial peptides (AMP) with antiviral activity against fish nodavirus[J].Fish & Shellfish Immunology,2010,28(3):434-439.
[16] Ghiselli R,Giacometti A,Cirioni O,et al.Cecropin B enhances betalactams activities in experimental rat models of gram-negative septic shock[J].Annals of Surgery,2004,239(2):251-256.
[17] Peyshynan Jan,Hsuyuang Huang,Hueihmin Chen.Expression of a synthesized gene encoding cationic peptide cecropin B in transgenic tomato plants protects against bacterial diseases[J].Applied & Environmental Microbiology,2010,76(3):769-775.
[18] Yongrui He,Shanchun Chen,Aihong Peng,et al.Production and evaluation of transgenic sweet orange (Citrus sinensis,Osbeck) containing bivalent antibacterial peptide genes (Shiva,A and Cecropin,B) via a novel agrobacterium-mediated transformation of mature axillary buds[J].Scientia Horticulturae,2011,128(2):99-107.
[19] Jiazhi Yu,Chiumin Wen,Cheming J.Yang,et al.Antimicrobial peptides characteristics and their applications as feed additives in domestic animals[J].J.Chin.Soc.Anim.Sic,2013,42(1):1-13.
[20] Thomas A,Kohler M,Schanzer W,et al.Determination of synacthen in urine for sports drug testing by means of nano-ultra-performance liquid chromatography/tandem mass spectrometry[J].Rapid Communications in Mass Spectrometry:RCM,2009,23(17):2 669-2 674.
[21] Varesio E,Rudaz S,Krause K H,et al.Nanoscale liquid chromatography and capillary electrophoresis coupled to electrospray mass spectrometry for the detection of amyloid-βpeptide related to alzheimer′s disease[J].J Chromatorgr A,2002,974(1-2):135-142.
[22] Clerico A,Franzini M,Masotti S,et al.State of the art of immunoassay methods for B-type natriuretic peptides:An update[J].Critical Reviews in Clinical Laboratory Sciences,2015,52(2):56-69.
[23] Iglesias W,Abbott N L,Mann E K,et al.Improving liquid crystal-based biosensing in aqueous phases[J].Acs Applied Materials & Interfaces,2012,4(12):6 884-6 890.