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廣東?、裥网喴呃锸蠗U菌分離鑒定及PFGE分型研究

2018-10-15 09:31郭晶瑩李亞菲蔣紅霞曾振靈
畜牧獸醫(yī)學報 2018年9期
關鍵詞:廣東地區(qū)鴨疫血清型

郭晶瑩,李亞菲,蔣紅霞,曾振靈*

(1.華南農業(yè)大學/國家獸藥安全評價實驗室,廣州 510642;2.廣東省農業(yè)科學院農產品公共監(jiān)測中心,廣州 510640)

鴨疫里氏桿菌病是由鴨疫里氏桿菌(Riemerellaanatipestifer)引起的急性、敗血性、接觸性的傳染病,呈急性或敗血癥感染,主要引起各種炎癥,如纖維素性心包炎、肝周炎、氣囊炎及關節(jié)炎等[1-2]。發(fā)病沒有季節(jié)性,多見于秋冬季節(jié)及潮濕天氣[3]。潛伏期較短,一般為2~5 d,最長為一周,可感染2~8周齡的雛鴨、雛鵝、火雞等,尤其以2~3周齡的雛鴨最易感染。該病可在世界范圍內廣泛傳播,最早發(fā)現(xiàn)于歐洲國家;隨后在前蘇聯(lián)、印度等國家都有發(fā)現(xiàn)[4-6];2004年,日本、韓國等東亞國家對其有所報道,亞洲已經成為鴨疫里氏桿菌病流行的主要地區(qū)[7-8]。自1982年在我國北京周邊地區(qū)發(fā)現(xiàn)鴨疫里氏桿菌病以來,浙江、山東、廣西等各個省、市、自治區(qū)都有該病的報道[9-11],已經嚴重影響了我國養(yǎng)鴨行業(yè)的發(fā)展,是造成水禽養(yǎng)殖行業(yè)重大經濟損失的主要原因之一。

利用血清型對鴨疫里氏桿菌進行分型是早年間常用的方法之一。目前已報道的鴨疫里氏桿菌血清型有25種,其中1~21型為國際上早已報道的血清型,22~25型為我國程安春等[12]在進行血清型調查時新發(fā)現(xiàn)的血清型。由于鴨疫里氏桿菌血清型眾多,各個血清型之間無明顯交叉保護現(xiàn)象[13],且不同地區(qū)不同年間鴨疫里氏桿菌的優(yōu)勢血清型會隨著時間的變化而變化,這給疾病的治療帶來了巨大的困難。除了傳統(tǒng)的血清型分型方法外,多種分型方法也可用于鴨疫里氏桿菌分子分型[14],如限制性片段長度多態(tài)性(restriction fragment length polymorphism,RFLP)技術、隨機擴增多態(tài)性DNA(random amplified polymorphic DNA, RAPD)技術、細菌基因組重復序列PCR(repetitive-element PCR,rep-PCR)技術及單鏈多態(tài)性(single strand conformation polymorphism, SSCP)技術等,其中脈沖場凝膠電泳(pulsed field gel electrophoresis,PFGE)技術被稱為調查細菌分子流行病學相關性及溯源的“金標準”[15],具有重復性好、分辨率高、結果穩(wěn)定、易于標準化等特點,已被運用于不同種屬細菌的分子分型[16-18]。本實驗室近年來已運用PFGE技術對鴨疫里氏桿菌菌株間遺傳關系進行了初步研究,Sun等[19]、張亞楠等[20]已對廣東地區(qū)鴨疫里氏桿菌部分菌株成功分型。為掌握廣東地區(qū)Ⅰ型血清型鴨疫里氏桿菌菌株流行情況,分析菌株間遺傳關系,本研究對2007至2017年間廣東地區(qū)分離的220株鴨疫里氏桿菌進行Ⅰ型血清型鑒定,并對血清Ⅰ型菌株進行SmaⅠ-PFGE分子分型。旨在調查近年來廣東地區(qū)鴨疫里氏桿菌優(yōu)勢血清型,并應用SmaⅠ-PFGE分子分型技術對優(yōu)勢血清型菌株之間進行遺傳關系的研究,不但為本地區(qū)鴨疫里氏桿菌滅活疫苗的研制及臨床治療提供一定的指導,還從分子水平確定菌株同源性,進而確定傳染源和流行范圍。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

1.1.1 病料樣本 2007—2017年在廣東省廣州、清遠、佛山、惠州、江門等地采集疑似傳染性漿膜炎特征性癥狀的病死鴨、鵝的腦或肝組織,分離并鑒定得到鴨疫里氏桿菌220株。其中,在鵝源病料樣本中分離得到86株菌,在鴨源病料樣本中分離得到134株菌。2007—2013年和2013—2015年分離的35株和95株鴨疫里氏桿菌菌株分別為本實驗室前期Sun等[19]和張亞楠等[20]分離。

1.1.2 培養(yǎng)基和試劑 胰蛋白胨大豆瓊脂培養(yǎng)基(tryptic soy agar,TSA)、胰蛋白胨大豆肉湯(tryptic soy broth,TSB)購自廣州環(huán)凱微生物科技有限公司;酵母提取粉(yeast extract)購自英國OXOID公司;新生牛血清購自北京鼎國昌盛生物技術有限責任公司;rTaq DNA聚合酶、DL2000、dNTP Mixture(2.5 mmol·L-1)均購自寶生物工程(大連)有限公司。

其他試劑:氯化鈉、冰醋酸、氫氧化鈉、濃鹽酸、甲醛均購自廣州化學試劑廠;SmaⅠ內切酶、10×T buffer購自寶生物工程(大連)有限公司;低熔點瓊脂糖(MegaBase瓊脂糖)、PFGE瓊脂糖購自美BIO-RAD公司;蛋白酶K、溶菌酶均購自美國Sigma公司。十二烷基磺酸鈉(SDS)、Tris堿(Tris-base)、乙二胺四乙酸鈉(Na2EDTA)均購自北京普博欣生物科技有限責任公司。

血清Ⅰ型鴨疫里氏桿菌參考菌株RA1由廣東省農業(yè)科學院獸醫(yī)研究所惠贈,分型血清由華南農業(yè)大學獸醫(yī)學院藥理教研室以參考菌株免疫家兔制得。

1.1.3 實驗動物 2~2.5 kg雄性新西蘭兔,購自南方醫(yī)科大學。

1.1.4 標準菌株 沙門菌H9812作為標準菌株進行對比分析。

1.2 方法

1.2.1 菌株的分離鑒定 用滅菌的無菌棉簽蘸取病死鴨或鵝的腦、肝等組織,劃線接種于含有0.5% 酵母提取粉和5%新生牛血清的TSA平板上,在二氧化碳培養(yǎng)箱中(5%~10%CO2,37 ℃條件下)培養(yǎng)24 h。挑取TSA平板上呈圓形、微突起、表面光滑、奶油狀、直徑1~2 mm的菌落接種于3 mL含有0.5%酵母提取粉和5%新生牛血清的TSB肉湯中,37 ℃振蕩培養(yǎng)過夜后進行純化培養(yǎng)和鑒定,采用美國德靈公司Micro Scan Walk Away-40全自動微生物鑒定儀鑒定疑似菌株。

根據(jù)本實驗室前期建立的方法[19],合成鴨疫里氏桿菌外膜蛋白引物序列,PCR鑒定引物序列分別如下,RA-F:5′-CTTGGTATCCAAGGGGATTAATGTTT-3′,RA-R:5′-TTTAACTGAGATGGGTTACCAACTTC-3′,目的基因長度為707 bp。擴增的PCR產物經1%瓊脂糖凝膠電泳后,送北京華大基因有限公司進行測序。

1.2.2 凝集抗血清的制備 按文獻[5]報道方法,將Ⅰ型血清型菌株RA1蘸取少許用3 mL TSB肉湯溶解,37 ℃振蕩培養(yǎng)12 h后,用接種環(huán)在TSA平板上劃線,置于37 ℃二氧化碳培養(yǎng)箱中過夜培養(yǎng),挑取單個菌落進一步純化,將培養(yǎng)在TSA平板上的菌群用FPSS(0.3% formalinised physiological saline solution,即加入3%甲醛的生理鹽水)溶液洗滌,離心兩次后,將菌體以FPSS懸浮,調節(jié)OD值(optical density)至0.2(525 nm),作為制備抗血清的抗原。

將抗血清抗原經耳緣靜脈多次注射雄性健康新西蘭兔,每4 d注射一次,劑量分別如下:0.05、0.1、0.2、0.5、0.5、1.0、1.0、1.5、2.0 mL,最后1次注射抗原后7 d,進行心臟采血,制備血清。將收集到的血液室溫下靜置2 h,離心10 min,收集上清,獲得血清。

1.2.3 血清型鑒定 玻板凝集試驗,取干凈載玻片一張,滴加陽性血清少許,用粗接種環(huán)蘸取待檢菌的純培養(yǎng)物,將載玻片輕輕晃動或用接種環(huán)涂開,在幾秒內出現(xiàn)明顯白色絮狀凝集塊者,判定為陽性結果。

1.2.4 脈沖場凝膠電泳 在仲崇岳[21]建立的快速脈沖場凝膠電泳技術和本試驗前期研究的基礎上改進,參照標準化PFGE流程進行。

1.2.4.1 模塊的制備:將凍干保存的鴨疫里氏桿菌及沙門菌H9812復蘇,37 ℃振蕩培養(yǎng)12 h后,用接種環(huán)在TSA平板上劃線,置于37 ℃含5% CO2二氧化碳培養(yǎng)箱中過夜培養(yǎng),將具有典型形態(tài)的菌落涂布于TSA平板上,過夜培養(yǎng)后,用一次性接種環(huán)刮取適量菌體于1 mL STE溶液(0.01 mol·L-1Tris-HCl,pH8.0;0.001 mol·L-1Na2EDTA,pH8.0;0.4%NaCl)中,重懸,使用分光光度計調整OD600nm值至2.0左右,取100 μL細菌混懸液至1.5 mL Eppendorf 管中,加入10 μL溶菌酶(20 mg·mL-1)和90 μL 1.2%STE溶解的低熔點瓊脂糖,充分混勻后注入一端封口的模具中,4 ℃放置5~10 min使模塊凝固。

1.2.4.2 細菌原位裂解:小心取出模具的模塊后,轉入含有3 mL lysis buffer(含有2 mg·mL-1溶菌酶的STE)溶液,于42 ℃水浴2 h。棄去lysis buffer,加入5 mL CLP溶液(cell lysis/proteinase K Buffer,即0.05 mol·L-1Tris-HCl,pH8.0;0.05 mol·L-1Na2EDTA,pH8.0;1%十二烷基肌胺酸鈉;1% SDS;0.2 mg·mL-1蛋白酶K),55 ℃水浴3 h。

1.2.4.3 模塊洗滌:小心取出模塊,加入8~10 mL預熱至50 ℃的滅菌雙蒸水,于50 ℃水浴輕微振蕩20 min,重復兩次。然后用8~10 mL預熱至50 ℃的TE緩沖液液(0.01 mol·L-1Tris-HCl,pH8.0;0.001 mol·L-1Na2EDTA,pH8.0)于50 ℃緩慢振蕩洗滌20 min,重復兩次。洗滌完畢后,在室溫下于TE溶液中緩慢冷卻。

1.2.4.4 限制性內切酶消化:切下2 mm寬洗滌后的膠塊,依次加入145 μL的滅菌雙蒸水、25 μL的BSA、25 μL的10×T buffer、3.5 μL的SmaⅠ(5 U·μL-1),于30 ℃水浴酶切3~4 h。剩下的膠塊置于TE溶液中于4 ℃保存。

1.2.4.5 制備PFGE瓊脂糖凝膠:按照1.0%的比例,用0.5×TBE電泳緩沖液制備PFGE凝膠。將酶切處理后的膠塊置于梳齒位置,然后用低熔點瓊脂糖對點樣端封口,于冰板上靜置待其凝固。

1.2.4.6 電泳:加入約2.5 L 0.5×TBE電泳緩沖液于CHEF-DR?III System(Bio-Rad Laboratories,USA)電泳槽中,依次打開電源開關-循環(huán)泵開關-冷卻系統(tǒng)I/O開關。脈沖場凝膠電泳參數(shù)設置如下:起始緩沖時間2.16 s,結束緩沖時間54.17 s,電泳時間20 h,電壓6 V·cm-1,溫度14 ℃,角度120 °,斜率:線性。待電泳緩沖液冷卻到14 ℃時開始電泳。

1.2.4.7 染色與拍照:電泳結束后,將電泳膠塊放入濃度為1 μg·mL-1的EB溶液中,染色30 min以上,然后用雙蒸水漂洗凝膠塊20 min后,放入凝膠成像系統(tǒng),照像拍照,保存圖像并記錄結果。用BioNumerics(Version6.0 Applied Math,Inc)軟件處理并分析PFGE分型圖譜,比較鴨疫里氏桿菌DNA條帶同源性,條帶解釋參考Tenover等[22]的報道。

2 結 果

2.1 鴨疫里氏桿菌的分離鑒定

在2007—2017年分離得到的220株鴨疫里氏桿菌中,130株菌株由本實驗室前期Sun等[19]和張亞楠等[20]分離鑒定。因此,需將從2015年9月至2017年6月在廣東廣州、清遠、佛山、惠州、江門五個城市采集的病料樣品中分離的90株菌株進行16S RNA鑒定。提取菌株DNA作為模板,采用已發(fā)表的外膜蛋白基因OmpA特異性引物進行PCR擴增鑒定,結果如圖1所示。將鑒定擴增結果送北京華大基因有限公司進行測序,NCBI進行對比分析,結果顯示這90株菌株均為鴨疫里氏桿菌,其中,77株鴨疫里氏桿菌菌株為鵝源,13株鴨疫里氏桿菌

菌株為鴨源,對確定為鴨疫里氏桿菌的菌株編號命名,采用“菌株種屬+編號+來源+時間”的方式進行命名,以RAGD211QYGoose2015為例,其為一株編號為211的鵝源鴨疫里氏桿菌,在2015年清遠分離得到。

M.DL2000 DNA相對分子質量標準;1~3.樣品PCR產物;P.陽性擴增結果M. DL2000 marker;1-3. PCR products;P. Positive result圖1 鴨疫里氏桿菌OmpA基因的PCR擴增結果Fig.1 PCR amplification of OmpA gene

2.2 血清型鑒定

對本實驗室現(xiàn)存的220株鴨疫里氏桿菌進行Ⅰ型血清型鑒定,其中,Ⅰ型血清型共119株,占總分離株54.09%,非Ⅰ型血清型為101株,占總分離株的45.91%。Ⅰ型血清型為2007—2017年間廣東地區(qū)的主要流行血清型。不同年代間菌株分布結果、各個地區(qū)菌株分布結果、不同來源菌株分布結果分別見表1~3。

表1各年份Ⅰ型血清型菌株比例

Table1ProportionoftypeⅠserotypeR.anatipestiferisolatesindifferentperiod

年份Year鴨疫里氏桿菌菌株數(shù)Number of R. anatipestifer isolatesⅠ型血清型菌株數(shù)Number of serotypeⅠstrains比例/%Proportion2007.05—2013.01351851.432013.02—2015.07955456.842015.09—2016.06281760.712016.07—2017.06623048.392007.01—2017.0622011954.09

表2各地區(qū)Ⅰ型血清型菌株比例

Table2ProportionoftypeⅠserotypeR.anatipestiferisolatesineachplace

來源地Origin鴨疫里氏桿菌菌株數(shù)Number of R. anatipestifer isolatesⅠ型血清型菌株數(shù)Number of serotypeⅠ strains比例/%Proportion清遠1155144.35廣州553054.55江門44100.00惠州6466.67佛山312580.65云浮11100.00東莞11100.00肇慶100.00汕尾6350.00廣東22011954.09

表3各來源Ⅰ型血清型菌株比例

Table3ProportionoftypeⅠserotypeR.anatipestiferisolatesineachsource

來源Source鴨疫里氏桿菌菌株數(shù)Number of R. anatipestifer isolatesⅠ型血清型菌株數(shù)Number of serotypeⅠ strains比例/%Proportion鴨源1347052.24鵝源864956.98

2.3 優(yōu)勢血清型SmaⅠ-PFGE分型

119株Ⅰ型血清型鴨疫里氏桿菌進行SmaⅠ-PFGE分型,有110株成功分型。部分代表性菌株的SmaⅠ-PFGE分型圖譜如圖2所示。使用BioNumerics6.0聚類軟件進行分析,110株鴨疫里氏桿菌的相似度為19.98%~100%,以相似度≥85%進行歸類,共得到33種不同的類型,可分為19個簇和14個單一型。在這19個簇中,Cluster F和Cluster S為優(yōu)勢簇,都含有12個菌株,除優(yōu)勢簇以外,Cluster C、J、M、N、P中各有2個菌株;Cluster A、E、Q、R中各有3個菌株;Cluster D、K、L中各有6個菌株;Cluster G、H中各有8個菌株;Cluster B、I、O中分別含有4、5、7個菌株。除了圖2中各個簇代表菌株,其余每簇所包含具體菌株信息如表4所示。結果表明Ⅰ型鴨疫里氏桿菌分子型別呈現(xiàn)多樣化,不同的菌株之間的同源性差異較高,但存在小范圍的克隆傳播。

3 討 論

鴨疫里氏桿菌血清型眾多,各血清型之間交叉免疫保護弱,這給鴨疫里氏桿菌病的防控帶來了巨大的困難,因此,掌握我國各個地方的鴨疫里氏桿菌的優(yōu)勢血清型,對于該地流行病學的調查、疫病的防控和疫苗株的選擇具有重要的意義。廣東省地處南方,天氣潮濕,極易導致該病的發(fā)生,同時又是水禽養(yǎng)殖的大省,一旦發(fā)病,將造成嚴重的經濟損失。本試驗研究了2007—2017年廣東地區(qū)近十年來分離的220株鴨疫里氏桿菌Ⅰ型血清型的流行特點,研究時間跨度長,涉及地方較多,為廣東地區(qū)鴨疫里氏桿菌病的滅活疫苗的研制及使用提供了重要的數(shù)據(jù)參考。

目前,對廣東地區(qū)鴨疫里氏桿菌優(yōu)勢血清型的報道雖然不少,但是研究涉及的菌株量較少,且時間跨度短。吳彩艷等[23]對2006—2008年廣東地區(qū)86株鴨疫里氏桿菌血清型鑒定結果表明有81株為Ⅰ型血清型,Ⅰ型血清型為廣東優(yōu)勢血清型。魏秀麗等[24]對廣東地區(qū)20株鴨疫里氏桿菌的血清型鑒定結果顯示有15株為10型,但僅有3株為Ⅰ型。張濟培等[25]對珠三角地區(qū)100株鴨疫里氏桿菌進行血清型鑒定,發(fā)現(xiàn)有83株為Ⅰ型血清型。而本研究對近十年來廣東省220株鴨疫里氏桿菌進行了血清型鑒定,發(fā)現(xiàn)Ⅰ型血清型菌株占總分離株的54.09%,雖然不同年間Ⅰ型血清型所占比例各不相同,但總體而言Ⅰ型血清型仍然是優(yōu)勢血清型。與之前該地區(qū)優(yōu)勢血清型流行情況相比,本試驗調查結果與其基本保持一致,即:呈現(xiàn)出以Ⅰ型血清型為主要流行血清型,其他血清型同時存在的流行趨勢。將本試驗結果與吳彩燕等[23]、張濟培等[25]所報道的廣東地區(qū)鴨疫里氏桿菌Ⅰ型血清型所占比例進行對比,發(fā)現(xiàn)本研究得到的Ⅰ型血清型菌株所占比例嚴重下降,但與魏秀麗等[24]報道的對比,Ⅰ型血清型菌株所占比例明顯升高,這可能與不同實驗室分離的菌株來源不同有關,同時也與之前張大丙和郭玉璞[5]、程安春等[12]報道的鴨疫里氏桿菌血清型流行情況基本相符:即使是同一地方,不同時間內,鴨疫里氏桿菌主要流行血清型也會隨著時間的改變而改變。

圖2 鴨疫里氏桿菌分離株PFGE代表性圖譜Fig.2 PFGE fingerprinting patterns of SmaⅠ-digested total DNA patterns from representative R. anatipestifer isolates

研究也發(fā)現(xiàn),即使是在同一時間同一地區(qū),不同鴨場的優(yōu)勢血清型不盡相同。例如同為2015年在廣州采集到的病料,增城區(qū)分得的鴨疫里氏桿菌優(yōu)勢血清型為Ⅰ型,花都區(qū)分得的則非Ⅰ型,這可能是不同養(yǎng)殖場引進的種鴨或種鵝不同。同一鴨場不同時間也會存在不同的血清型,如同為在廣東佛山三水一個養(yǎng)殖場采集到的鵝源病料,RAGD204FSGoose2015、RAGD205FSGoose2015、RAGD206FSGoose、RAGD318FSGoose2016為Ⅰ型血清型,而RAGD313FSGoose2016為非Ⅰ型,推測此鵝場可能引進新的雛鵝或在繁殖過程中發(fā)生血清型變化。

對鴨疫里氏桿菌分子學分型的方法有很多,各有優(yōu)缺點[14]。Kiss等[26]首次運用PFGE技術和Eric-PCR技術對鴨疫里氏桿菌進行菌株間親緣鑒定,兩者分型的結果具有相似性,故認為兩種方法都可以作為分子分型的方法。仲崇岳[21]運用快速脈沖場凝膠電泳技術對四川地區(qū)70多株鴨疫里氏桿菌進行分型得到了60種表型(以相似度80%為標準)。本研究室近年來對鴨疫里氏桿菌PFGE分型的方法進行研究,Sun等[19]對68株鴨疫里氏桿菌進行PFGE分型,有43株成功分型,并以85%的相似度作為標準將其分成了13種表型。張亞楠等[20]對廣東地區(qū)115株鴨疫里氏桿菌進行SmaⅠ-PFGE分型,僅有58株分型成功,推測鴨疫里氏桿菌血清型可能會對脈沖場凝膠電泳產生影響。因此,本研究對Ⅰ型血清型鴨疫里氏桿菌進行了PFGE分型。根據(jù)之前的研究,對現(xiàn)有的實驗室技術進行改進,增加了溶菌酶的含量以及裂解時間,使得菌體得到充分的裂解。119株Ⅰ型血清型鴨疫里氏桿菌中共有110株成功分型。但仍有9株未成功分型,這可能與菌株自身有關,也可能與PFGE實驗操作過程中某些參數(shù)設置有關,因此需要進一步的研究與優(yōu)化。

通過SmaⅠ酶對鴨疫里氏桿菌基因組不同位點進行酶切,并運用PFGE分型技術將同一血清型的菌株根據(jù)相似度≥85%分成不同的條帶型別,110株菌可得到33種不同的表型。同一血清型經PFGE分型后得到不同表型說明PFGE分型法比血清學分型法分辨力更高。這33種不同的SmaⅠ-PFGE表型可分為19個簇和14個單一型。在這19個簇中,不同簇所含菌株數(shù)量不相同,優(yōu)勢簇Cluster F和S含有較多菌株(12株),而其他簇所含菌株量都較少,如僅含有2個菌株的Cluster C、J、M、N、P;含有3個菌株的Cluster A、E、Q、R等。另外不同簇之間相似度相差很大,例如,Cluster D和Cluster E之間相似度為84%,而Cluster E與Cluster S之間相似度僅為19%。

根據(jù)PFGE分型圖譜發(fā)現(xiàn),即使是同一養(yǎng)殖場Ⅰ型血清型的鴨疫里氏桿菌,也存在多樣化的遺傳背景,例如:RAGD201GZGoose2015和RAGD203GZGoose2015的SmaⅠ-PFGE遺傳圖譜同屬于Cluster F,它們之間的相似度達到了99%,而與RAGD202GZGoose2015相比則相差甚遠。鴨疫里氏桿菌在局部地區(qū)不僅具有多樣化的遺傳背景,同時還存在克隆傳播。以優(yōu)勢簇Cluster F為例,RAGD201GZGoose2015、RAGD103GZDuck2010、RAGD147QYGoose2015及RAGDFSDuck2015,是分別來自廣州、清遠、佛山不同時間、不同來源的優(yōu)勢簇菌株,從PFGE關系圖譜來看他們是屬于同一進化群的,具有相似度很高的SmaⅠ-PFGE遺傳圖譜。此外還發(fā)現(xiàn),同一進化群的鴨疫里氏桿菌對雛鴨、雛鵝的侵害是不分種屬的,既可在種屬之內、之間相互感染,也可在種屬之間相互感染。

本文對2007—2017年廣東地區(qū)分離的鴨里氏桿菌Ⅰ型血清型進行調查和鑒定,并運用脈沖場凝膠電泳技術對菌株進行分子分型,不僅從宏觀的角度上為該地區(qū)鴨疫里氏桿菌病的疫苗的研發(fā)及使用提供參考指導,使得疾病的發(fā)生和治療有了相應的依據(jù)。還在分子層次上將PFGE技術應用于監(jiān)測所得的菌株,建立了近年來廣東地區(qū)優(yōu)勢血清型鴨疫里氏桿菌遺傳圖譜,揭示了優(yōu)勢血清型鴨疫里氏桿菌的遺傳多態(tài)性及傳播特性,有助于實現(xiàn)該菌的主動監(jiān)測和傳染源溯源,對控制鴨疫里氏桿菌引起的動物源性疾病的流行有著重要的意義。

4 結 論

本研究通過對廣東地區(qū)220株鴨疫里氏桿菌進行Ⅰ型血清型鑒定,并對血清Ⅰ型菌株進行SmaⅠ-PFGE分子分型,發(fā)現(xiàn)Ⅰ型血清型為近年來廣東地區(qū)鴨疫里氏桿菌的優(yōu)勢血清型,且Ⅰ型血清型菌株之間分子型別呈現(xiàn)多樣化,同源性差異較高,但存在小范圍內的克隆傳播。

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