周童 袁澤斌 萬可 牟昌紅 王從梅 歐陽秀琴 王波

摘 要：為了更好地對(duì)園林廢棄物進(jìn)行資源化利用，試驗(yàn)以堆肥腐熟后的園林廢棄物作為供試材料，進(jìn)行其菌株的分離和鑒定。通過細(xì)菌16S rDNA測(cè)序分析，鑒定出21株細(xì)菌，分屬于3門5綱7目10科13種，其中，厚壁菌門（Firmicutes）、變形菌門（Proteobacteria）和放線菌門（Actinobacteria）分別鑒定出4種、6種和3種；通過真菌rDNA ITS 測(cè)序分析，鑒定出9株真菌，分屬于1門（子囊菌門）2綱2目2科3屬5種，其中青霉菌屬（Penicillium）鑒定出3種，曲霉屬（Aspergillus）和短梗霉屬（Aureobasidium）各鑒定出1種。

關(guān)鍵詞：園林廢棄物；菌株；分離；鑒定

中圖分類號(hào)：S961.6 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼：A DOI 編碼：10.3969/j.issn.1006-6500.2018.10.001

Abstract： In order to make better use of garden wastes， the experiment was conducted to isolate and identify the strains from the garden wastes composting. According to the bacterial 16S rDNA sequencing analysis， 21 bacteria strains were identified， which were belonged to 3 phyla， 5 classes， 7 orders， 10 families and 13 species. Among the three phyla， the bacteria of Firmicutes， Proteobacteria， Actinobacteria were identified 4 species， 6 species， and 3 species， respectively. According to fungal rDNA ITS sequencing analysis， 9 fungi strains were identified， which were belonged to 1 phylum （Ascomycota）， 2 classes， 2 orders， 2 families， 3 genuses， 5 species. Among the three genuses， the fungi of Penicillium， Aspergillus， and Aureobasidium were identified 3 species， 1 species， and 1 species， respectively.

Key words： garden waste； strains； isolation； identification

隨著城市綠化建設(shè)的飛速發(fā)展以及人們對(duì)生態(tài)環(huán)境要求的提高，園林廢棄物的數(shù)量快速增加，焚燒、填埋、粉碎粗回收等非資源化的處理方式既帶來了嚴(yán)重的環(huán)境問題[1]，同時(shí)也造成了資源的浪費(fèi)。大多數(shù)園林廢棄物含有豐富的有機(jī)質(zhì)，部分地區(qū)通過堆肥使其形成基質(zhì)重新應(yīng)用于園林和城市綠化，對(duì)土壤有很好的改良作用，是一種變廢為寶的科學(xué)手段，一方面降低了對(duì)自然環(huán)境的污染，另一方面也節(jié)約了資源，是一種適合可持續(xù)發(fā)展的處置方式。

目前，處理園林廢棄物堆肥的主要模式是參照農(nóng)業(yè)廢棄物的堆肥方式，然而，相較于一般的農(nóng)業(yè)廢棄物，園林廢棄物中有更加豐富的、難以降解的木質(zhì)纖維素，主要存在于植物細(xì)胞壁的微管組織中，纖維素分子鏈聚集成的微纖絲相互交織鑲嵌排列形成結(jié)晶相和非結(jié)晶相，該結(jié)構(gòu)具有超強(qiáng)的防御作用，化學(xué)試劑難以有效接觸纖維素表面[2]，降解速率低，嚴(yán)重阻礙以園林廢棄物為原料的堆肥處理進(jìn)程。

芽孢桿菌、諾卡氏菌、高溫放線菌、黑曲霉、青霉等微生物均具有木質(zhì)纖維素降解能力[3]，可提高木質(zhì)纖維素降解速率，因此，高效降解纖維素的微生物菌株篩選對(duì)園林廢棄物高效資源化利用意義重大。

試驗(yàn)對(duì)腐熟的園林廢棄物進(jìn)行微生物分離實(shí)驗(yàn)以及分子生物學(xué)鑒定，獲得園林廢棄物腐熟過程中的細(xì)菌和真菌信息，旨在為具有纖維素降解能力的菌株篩選提供基礎(chǔ)。

1 材料和方法

1.1 試驗(yàn)材料

腐熟材料是不同植物枝葉的混合物，取自常州新北區(qū)園林綠化服務(wù)處。

1.2 試驗(yàn)儀器

高壓滅菌鍋（MLS-3780）、人工氣候箱（韶關(guān)市泰宏醫(yī)療器械有限公司生產(chǎn)）、電子天平（梅特勒-托利多EL303）、恒溫培養(yǎng)振蕩器（ZD-810，上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司生產(chǎn)）、pH計(jì)（梅特勒-托利多S220）、高速臺(tái)式離心機(jī)（TDL-8-AC，上海安亭科學(xué)儀器廠生產(chǎn)）、超凈試驗(yàn)臺(tái)（SW-CJ-1F，蘇州尚田潔凈技術(shù)有限公司生產(chǎn)）。

1.3 培養(yǎng)基及配置

1.3.1 改良高氏1號(hào)培養(yǎng)基（培養(yǎng)真菌） 葡萄糖10.0 g·L-1，蛋白胨5.0 g·L-1，硝酸鉀 1.0 g·L-1，磷酸氫二鉀0.5 g·L-1，硫酸鎂 0.5 g·L-1，氯化鈉 0.5 g·L-1，硫酸亞鐵0.01 g·L-1，去離子水1 000 mL，pH值調(diào)至7.2，添加瓊脂粉15.0 ～20.0 g·L-1。

1.3.2 牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基（培養(yǎng)細(xì)菌） 牛肉膏5.0 g·L-1，蛋白胨10.0 g·L-1，氯化鈉5.0 g·L-1，去離子水1 000 mL，pH值調(diào)至7.2，添加瓊脂粉15 ～20 g·L-1。

1.3.3 牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基（培養(yǎng)細(xì)菌） 牛肉膏5.0 g·L-1，蛋白胨10.0 g·L-1，NaCl 5.0 g·L-1，去離子水1 000 mL，pH值調(diào)至7.2。

1.3.4 馬鈴薯培養(yǎng)基 馬鈴薯200.0 g·L-1，葡萄糖20.0 g·L-1，瓊脂15.0 ～20.0 g·L-1，去離子水1 000 mL，pH值調(diào)至7.2。

1.4 試驗(yàn)方法

1.4.1 微生物分離純化 在無菌條件下稱量1.0 g園林廢棄物腐熟材料樣品，裝入無菌三角瓶中，加入99 mL無菌水，密封后置于培養(yǎng)振蕩器（200 r·min-1、25 ℃）振蕩20 min，對(duì)混勻的樣品進(jìn)行梯度稀釋，配制成1×10-2，1×10-3，……1×10-8不同濃度梯度的稀釋液。

微生物分離純化試驗(yàn)在蘇州大學(xué)植物栽培與生理實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行。使用移液槍吸取各濃度梯度的園林廢棄物稀釋液100 μL，在牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基和改良高氏1號(hào)培養(yǎng)基上均勻涂布，進(jìn)行細(xì)菌以及真菌分離，每個(gè)濃度園林廢棄物稀釋液平行凃板3個(gè)。細(xì)菌于31 ℃培養(yǎng)24～48 h，觀察各梯度平板中菌落數(shù)量及分布情況，挑選出優(yōu)勢(shì)菌落分布較均勻的平板，根據(jù)菌落形態(tài)特征各異分別挑取單菌落，劃線接種于新的牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基上，將純化2～3次后的菌株接種于牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基中，在31 ℃ 200 r·min-1振蕩12～24 h；吸取0.7 mL菌液注入菌種保存管內(nèi)，再加入0.7 mL已滅菌的80%甘油，搖晃使其混勻，置于-70 ℃冷凍保存。真菌平板于28 ℃倒置培養(yǎng)72 h，觀察各梯度平板中菌落數(shù)量及分布情況，篩出優(yōu)勢(shì)菌落數(shù)量分布均勻的梯度平板，將不同形態(tài)特征的微生物菌落依次分離單接種到新的改良高氏1號(hào)培養(yǎng)基上純化2～3次，將分離幾次后的微生物菌株在28 ℃下培養(yǎng)3 d，后置于4 ℃冰箱保藏。

1.4.2 菌株鑒定 （1）細(xì)菌和真菌基因組DNA提取。取液體培養(yǎng)基內(nèi)容物5 mL，12 000 r·min-1離心1 min，清除上清液；加入細(xì)胞懸浮液500 μL，置于37 ℃溫水浴中1 h，期間相隔幾分鐘混勻1次；12 000 r·min-1離心2 min，清除上清液；加入225 μL緩沖液A，使菌體與緩沖液混合均勻；再加入10 μL蛋白酶K，振蕩使其混勻；加入裂解緩沖液S 25 μL，振蕩使其混勻；57 ℃水浴放置20 min，其間顛倒混勻1～2次；加入緩沖液B 250 μL，顛倒混勻；加入乙醇250 μL，混勻，瞬時(shí)離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠；把離心管中所有物質(zhì)加入吸附柱內(nèi)，12 000 r·min-1離心30 s，倒棄廢液，將吸附柱放入收集管中；取緩沖液 C 500 μL添加到吸附柱內(nèi)，12 000 r·min-1離心30 s，倒棄廢液，將吸附柱放入收集管中；將700 μL漂洗液W2添加到吸附柱內(nèi)，12 000 r·min-1離心30 s，倒棄廢液，將吸附柱放入收集管中；將500 μL漂洗液W2添加到吸附柱內(nèi)，12 000 r·min-1離心30 s，倒棄廢液，將吸附柱放入收集管中；將吸附柱放回收集管中；12 000 r·min-1離心2 min；將吸附柱置于一個(gè)新的1.5 mL離心管中，去除殘存的漂洗液；將吸附柱放回收集管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加100～200 μL洗脫緩沖液TE，室溫放置2～5 min，12 000 r·min-1離心2 min，將溶液收集到離心管中；所提取DNA稀釋20倍作為PCR模板，剩余菌液加入等體積甘油放-80 ℃保存。

（2）細(xì)菌16S rDNA及真菌rDNA ITS基因克隆。PCR反應(yīng)體系：9.5 μL焦碳酸二乙酯水，上下游引物各1 μL，1 μL模板DNA，Taqmix 12.5 μL。

PCR的反應(yīng)條件：在98 ℃條件下預(yù)變性3 min，然后98 ℃變性10 s，55 ℃退火30 s，72 ℃延伸1 min，共35個(gè)循環(huán)；72 ℃延伸10 min；在4 ℃條件下保存。

細(xì)菌16S rDNA基因克隆選用引物對(duì)：27F 5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'，1492R 5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3'；真菌rDNA ITS基因克隆選用引物對(duì)：ITS1 5'-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3'，ITS4 5'-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3'。

（3）細(xì)菌16S rDNA及真菌rDNA ITS序列分析。 在PCR結(jié)束后進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)，將含有預(yù)期片段大小的PCR產(chǎn)物送到蘇州木芮生物科技有限公司檢測(cè)。用Contig Express軟件對(duì)雙向測(cè)序完成的產(chǎn)物序列進(jìn)行拼接，通過 NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)的BLAST工具進(jìn)行在線檢索，對(duì)序列進(jìn)行同源性分析，通過其相似度和覆蓋度進(jìn)行真菌和細(xì)菌的種屬鑒定。

2 結(jié)果與分析

2.1 優(yōu)勢(shì)菌落的分離

通過對(duì)不同稀釋梯度平板中的微生物菌落進(jìn)行觀察，結(jié)果發(fā)現(xiàn)，1×10-2，1×10-3，1×10-4，1×10-5的園林廢棄物稀釋液平板中微生物菌落數(shù)量多且分布雜亂，菌落交叉生長(zhǎng)，難以區(qū)分單菌落；1×10-6，1×10-7，1×10-8的稀釋液平板中微生物數(shù)量及種類分布較為均勻，菌落獨(dú)立不重疊，且所出現(xiàn)的菌落種類在各梯度均有生長(zhǎng)。因此，真菌和細(xì)菌的分離從1×10-6，1×10-7，1×10-8的稀釋液平板中挑選進(jìn)行涂板培養(yǎng)。

取馬鈴薯葡萄糖培養(yǎng)基平板10個(gè)，每個(gè)平板十字型劃分為4塊，分別編號(hào)Z1-20，X1-20。按照濃度梯度，從1×10-6，1×10-7，1×10-8的菌落平板中選取適宜菌落，用接種環(huán)蘸取菌落劃于馬鈴薯培養(yǎng)基對(duì)應(yīng)標(biāo)記區(qū)域，將培養(yǎng)出的菌株用于后續(xù)細(xì)菌和真菌菌株的DNA序列分析。

2.2 細(xì)菌菌株DNA序列分析

2.2.1 細(xì)菌菌株16S rDNA序列克隆 從圖1可以看出，在預(yù)期的1 500 bp附近檢測(cè)出陽性條帶，說明大部分細(xì)菌16S rDNA序列克隆成功。2.2.2 細(xì)菌菌株DNA序列比對(duì)結(jié)果及種類分布 通過對(duì)細(xì)菌序列進(jìn)行拼接后利用BLAST在線比對(duì)其同源性，結(jié)果如表1和表2所示，分離獲得測(cè)序正確21個(gè)樣品，其相似性均≥97%，覆蓋率均≥98%，鑒定出3門5綱7目10科13種細(xì)菌。其中，厚壁菌門（Firmicutes）共鑒定出4種細(xì)菌，分屬于芽孢桿菌屬（Bacillus）和解硫胺素芽孢桿菌屬（Aneurinibacillus），分別鑒定出1種和3種細(xì)菌；變形菌門（Proteobacteria）共鑒定出6種細(xì)菌，分屬于短波單胞菌屬（Brevundimonas）、蒼白桿菌屬（Ochrobactrum）、草螺菌屬（Herbaspirillum）、近伯克氏菌屬（Paraburkholderia）、寡養(yǎng)單胞菌屬（Stenotrophomonas）、沙雷氏菌屬（Serratia）；放線菌門（Actinobacteria）鑒定出3種細(xì)菌，分屬于谷氨酸菌屬（Glutamicibacter）、微桿菌屬（Microbacterium）、原小單孢菌屬（Promicromonospora）。21個(gè)樣品中，米氏硫胺素芽孢桿菌（A.migulanus）最多，有4個(gè)，其次草螺菌（H. sp.）和嗜麥芽寡養(yǎng)單胞菌（S. maltophilia）分別有3個(gè)，解硫胺素芽孢桿菌（Aneurinibacillus sp.）有2個(gè)，其他種均只有1個(gè)。

2.3 真菌菌株DNA序列分析

2.3.1 真菌菌株rDNA ITS序列克隆 由圖2可知，在預(yù)期的750 bp附近能檢測(cè)出陽性條帶，說明真菌rDNA ITS 序列克隆成功。

2.3.2 真菌菌株rDNA ITS序列比對(duì)結(jié)果及真菌種類分布 真菌rDNA ITS 測(cè)序及比對(duì)結(jié)果通過對(duì)真菌序列進(jìn)行拼接后利用 BLAST 在線比對(duì)其同源性，結(jié)果如表3和表4，共測(cè)序正確9個(gè)樣本，其相似性和覆蓋率均為100%，鑒定出1門（子囊菌門）2綱2科3屬5種真菌。其中，青霉菌屬（Penicillium）中有3種，曲霉屬（Aspergillus）和短梗霉屬（Aureobasidium）各1種。9個(gè)樣本中，青霉菌（P. sp.）和出芽短梗霉（A. pullulans）出現(xiàn)的樣本數(shù)最多，分別有3個(gè)，產(chǎn)黃青霉（A. fumigatus）、桔青霉菌（P. citrinum）和薩氏曲霉（A. sydowii）均只有1個(gè)樣本。

3 結(jié)論與討論

園林廢棄物中有大量纖維素的存在，自然條件下纖維素中通過締合氫鍵形成致密結(jié)構(gòu)，其外包裹纖維素和半纖維素，很難降解[1]。利用園林廢棄物堆制有機(jī)肥的過程中，堆肥微生物主要有細(xì)菌群落和真菌群落，菌株群落利用園林廢棄物中的有機(jī)物質(zhì)代謝，加快堆制有機(jī)肥腐熟的進(jìn)程[5]。園林廢棄物堆肥材料中，細(xì)菌是數(shù)量最大、分布最廣的微生物類群，不僅能夠快速利用水溶性單糖類物質(zhì)，還具有分解木質(zhì)纖維素的能力，因此，其生物活性在堆腐過程至關(guān)重要[6]。芽孢桿菌屬細(xì)菌是常見的優(yōu)勢(shì)細(xì)菌[7]，本研究中也從園林廢棄物堆肥材料中分離和鑒定出1種芽孢桿菌屬（Bacillus）細(xì)菌和3種解硫胺素芽孢桿菌屬（Aneurinibacillus）細(xì)菌，芽孢桿菌的生長(zhǎng)適溫為50～70 ℃，堆肥高溫階段大量芽孢桿菌可增強(qiáng)對(duì)某些難降解有機(jī)物的分解，提高堆肥效率[8]。本試驗(yàn)還分離和鑒定出3種放線菌門（Actinobacteria）細(xì)菌，堆肥過程中放線菌具有溶解木質(zhì)素，分解纖維素的能力[5]，其中，原小單孢菌（P. thailandica）也是堆肥體系中的優(yōu)勢(shì)菌群。本試驗(yàn)中通過真菌 rDNA ITS 測(cè)序分析發(fā)現(xiàn)，9 株真菌分屬于2綱2目2科3屬5種。其中，青霉屬（Penicillium）的真菌最多，堆體內(nèi)有機(jī)物以木質(zhì)素、纖維素為主，該屬可以分泌大量纖維素酶來有效分解纖維素進(jìn)行利用，其他屬的真菌也均有一定的抗逆及纖維素降解能力，如曲霉屬（Aspergillus）[1]，該屬的菌絲能夠散布在園林廢棄物堆肥材料內(nèi)，通過分泌胞外酶來降解纖維素等有機(jī)物[11]。

本試驗(yàn)僅從園林廢棄物堆肥材料中初步分離和鑒定出了部分堆肥體系細(xì)菌和真菌種類，而不同菌株特性及其降解纖維素和木質(zhì)素能力大小，還有待進(jìn)一步研究。

參考文獻(xiàn)：

[1]孫向陽， 索琳娜， 徐佳， 等. 園林綠化廢棄物處理的現(xiàn)狀及政策[J]. 園林， 2012（2）： 12-17.

[2]白洪志. 降解纖維素菌種篩選及纖維素降解研究[D]. 哈爾濱： 哈爾濱工業(yè)大學(xué)， 2008.

[3]諸葛誠(chéng)祥. 菌糠高效降解菌劑的研發(fā)及其在堆肥中的應(yīng)用[J]. 杭州： 浙江大學(xué)， 2017.

[4]孫一博. 高效纖維素降解菌的篩選鑒定及特性研究[D].哈爾濱： 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)， 2013.

[5]曹曉璐.園林廢棄物制造栽培基質(zhì)過程中微生物的動(dòng)態(tài)變化[D]. 北京： 中國(guó)林業(yè)科學(xué)研究院 ，2014.

[6]王偉東， 王小芬， 樸哲， 等. 堆肥化過程中微生物群落的動(dòng)態(tài)[J].環(huán)境科學(xué)， 2007（11）： 2591-2597.

[7]劉有勝， 楊朝暉， 曾光明， 等. PCR-DGGE技術(shù)對(duì)城市餐廚垃圾堆肥中細(xì)菌種群結(jié)構(gòu)分析[J]. 環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào)， 2007（7）： 1151-1156.

[8]PETER M D， WILLIAM C G. Microbial diversity in hot synthetic compost as revealed by PCR-amplified rRNA sequences from cultivated isolates and extracted DNA[J]. Microbiology ecology， 2001， 35： 207-216.

[9]WANG L，WANG D. Isolation and application of thermophilic and psychrophilic microorganisms in the composting process[J]. Waste and biomass valorization， 2014， 5（3）： 433-440.

[10]劉志恒， 姜成林. 放線菌現(xiàn)代生物學(xué)與生物技術(shù)[M]. 北京： 高等教育出版社， 2004： 210-218.

[11]席北斗， 劉鴻亮， 白慶中， 等. 堆肥中纖維素和木質(zhì)素的生物降解研究現(xiàn)狀[J]. 環(huán)境污染治理技術(shù)與設(shè)備， 2002（3）： 19-23.