莊 飛, 梁 廣, 錢建暢, 鄭 超
(溫州醫(yī)科大學(xué) 1第二臨床醫(yī)學(xué)院, 2附屬第二醫(yī)院, 3藥學(xué)院, 浙江 溫州 325035)
糖尿病是常見的內(nèi)分泌與代謝性疾病,在全國乃至全世界范圍內(nèi)的發(fā)病人群日益增多[1],糖尿病所導(dǎo)致的各種急慢性并發(fā)癥,特別是心血管并發(fā)癥被認為是糖尿病患者致殘和死亡的主要原因[2]。糖尿病心肌病(diabetic cardiomyopathy, DCM)的疾病特征是糖尿病所致的心肌結(jié)構(gòu)及心臟功能改變,包括心室肥厚、心肌纖維化以及心功能下降,甚至心力衰竭等[3-4]。因此尋求一種新的藥物,并進一步探索有效的治療方案,具有重要的意義。蓽茇酰胺(piperlongumine,PL)是中藥蓽茇中提取的有效成分,具有抗炎和抗氧化等多種藥理學(xué)作用[5],目前多用于抗乳腺癌和前列腺癌等腫瘤的研究[6-8],然而對于糖尿病并發(fā)癥的涉及較少,其效果及機制并不明確。本研究通過高糖刺激的大鼠心肌 H9C2細胞模型以及鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)誘導(dǎo)的1型糖尿病(type 1 diabetes mellitus, T1DM)小鼠模型,探究PL是否能夠緩解DCM的發(fā)生發(fā)展。
心肌H9C2細胞購自上海生物化學(xué)與細胞生物學(xué)研究所。SPF級C57BL/6小鼠,雄性,5~6周齡,20~22 g,購自上海斯萊克實驗動物有限責任公司,許可證編號為SCXK(浙)2015-0009。
蓽茇酰胺購自瀚香生物科技公司,用0.1%二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide, DMSO)溶解,配制成20 mmol/L的母液貯存;STZ和MTT購自Sigma-Aldrich;DMEM培養(yǎng)基、含EDTA的胰酶和胎牛血清購自Gibco;RIPA裂解液和HE染色試劑盒購自碧云天生物技術(shù)公司;抗轉(zhuǎn)化生長因子β(transforming growth factor-beta,TGF-β)及Ⅳ型膠原蛋白(collagen IV)兔源性 I 抗購自Abcam;抗GAPDH兔源性 I 抗購自杭州賢至生物科技有限公司;過氧化物酶標記山羊抗兔IgG(H+L)購自翊圣公司;肌酸激酶同工酶MB(creatine kinase isoenzyme MB,CK-MB)試劑盒及乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)試劑盒購自南京建成公司;TRIzol和逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購自TaKaRa。所用引物由上海吉凱基因技術(shù)有限公司根據(jù)設(shè)計合成,見表1。
表1 引物序列
3.1 細胞培養(yǎng) H9C2細胞培養(yǎng)于含有10%胎牛血清,1×105U/L青霉素和100 mg/L鏈霉素的DMEM(含1 g/L D-glucose)的細胞培養(yǎng)液中,37 ℃、5% CO2的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),隔天換液。待細胞密度生長至70%~80%即可進行實驗。
3.2 MTT法檢測細胞活力 將生長到指數(shù)生長期的H9C2細胞以每孔5 000個接種于96孔板,待細胞貼壁后,加入不同濃度梯度的PL孵育48 h。隨后加入MTT,在恒溫培養(yǎng)箱中繼續(xù)孵育4~6 h,棄去培養(yǎng)基,加入150 μL DMSO,用酶標儀檢測各孔490 nm的吸光度(A)值。細胞相對活力用與對照組細胞吸光度的比值來表示,以此計算出PL的半數(shù)抑制濃度(IC50)。
3.3 qPCR實驗 用TRIzol變性破碎細胞,依次用氯仿、異丙醇以及無水乙醇分離提純總RNA。參照二步法逆轉(zhuǎn)錄試劑盒操作說明書進行逆轉(zhuǎn)錄,獲得cDNA,進行qPCR。qPCR體系為10 μL:cDNA模板1 μL,上、下游引物各 0.25 μL,SYBR 溶液5.25 μL,超純水3.25 μL。反應(yīng)條件為:95 ℃ 3 min;95 ℃ 7 s、55 ℃ 10 s、72 ℃ 15 s,重復(fù) 40 個循環(huán)。以β-actin 作為內(nèi)參照進行結(jié)果分析,用2-ΔΔCt計算相應(yīng)mRNA的相對表達量。
3.4 Western blot實驗 取藥物處理后細胞,加入PMSF、蛋白磷酸酶抑制劑及RIPA裂解液冰上裂解,收集細胞裂解液,4 ℃、12 000 r/min離心10 min收集蛋白,并用考馬斯亮藍法進行蛋白定量。用SDS-PAGE分離不同分子量的蛋白,電轉(zhuǎn)到PDVF膜上,室溫下用TBST配制的脫脂牛乳封閉1.5 h。加入 I 抗4 ℃搖床孵育過夜,用TBST洗膜3次,每次5 min后室溫 II 抗孵育1 h,用ECL化學(xué)發(fā)光劑在凝膠成像系統(tǒng)上顯影。
3.5 動物實驗 C57BL/6小鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后隨機分為空白對照(control)組(n=6)和T1DM組(n≥18)。T1DM組腹腔注射STZ 50 mg/kg(用檸檬酸鈉緩沖液配置,pH 4.5),每天1次,連用5 d,1周后血糖≥12 mmol/L認為造模成功。將T1DM小鼠隨機分為T1DM組(n=6)、T1DM+PL (2.5 mg/kg)組(n=6)及T1DM+PL (5 mg/kg)組(n=6)。后兩組的小鼠在造模成功后隔天腹腔注射相應(yīng)劑量PL連續(xù)13周,control組及T1DM組不作特殊處理。每組小鼠每2周監(jiān)測體重及血糖變化。第13周行超聲心動圖檢測。
13周末,小鼠用4%水合氯醛麻醉后處理,取心臟,4%多聚甲醛固定,石蠟包埋,每組取3個組織,切成5 μm切片,用于HE染色以及天狼星紅染色;取血清,按照試劑盒說明書用于檢測CK-MB以及LDH血清學(xué)指標。
應(yīng)用SPSS 22.0以及GraphPad Prism 7軟件進行數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析以及作圖。所有數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,兩組間比較采用成組t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用SNK-q檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
心肌H9C2細胞用不同濃度的PL作用48 h,根據(jù)MTT實驗結(jié)果得出PL的半數(shù)抑制濃度為35.05 μmol/L,見圖1,因此我們選取1、2.5和5 μmol/L的濃度進行下一步實驗。
Figure 1. The IC50of PL for the viability of H9C2 cells.
圖1 PL影響H9C2細胞生長的半數(shù)抑制濃度
1.1 PL可抑制高糖誘導(dǎo)的H9C2細胞炎癥因子的水平 將生長至對數(shù)生長期的H9C2細胞接種于6孔板中,上述濃度PL預(yù)處理1 h后,加入終濃度為33 mmol/L的葡萄糖溶液,繼續(xù)培養(yǎng)24 h,收集細胞提取RNA進行qPCR。結(jié)果顯示高糖(high glucose,HG)組較空白組炎癥因子TNF-α 和 IL-6的mRNA水平顯著升高(P<0.01),PL處理后TNF-α和IL-6的mRNA水平較HG組均有所下降,并呈劑量依賴性,見圖2。在充分考慮藥物毒性的前提下,為了讓實驗結(jié)果更加明確,在后續(xù)實驗中,我們選取2.5 μmol/L和5 μmol/L 2個濃度的PL。
Figure 2. PL attenuated HG-induced cardiac inflammation in the H9C2 cells. The mRNA expression of TNF-α and IL-6 was detected by qPCR. Mean±SD.n=3.**P<0.01vscontrol group;#P<0.05,##P<0.01vsHG group.
圖2 PL可抑制高糖誘導(dǎo)的H9C2細胞炎癥因子的mRNA水平
1.2 PL可減輕高糖誘導(dǎo)的H9C2細胞纖維化 將H9C2細胞用不同濃度PL預(yù)處理后,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,收集蛋白。結(jié)果顯示,高糖可增加纖維化標志蛋白TGF-β及collagen IV的表達(P<0.01),PL處理后表達下降,并呈劑量依賴性(P<0.01),見圖3。
Figure 3. PL alleviated HG-induced cardiac fibrosis. The protein levels of collagen IV and TGF-β were determined by Western blot. Mean±SD.n=3.**P<0.01vscontrol group;#P<0.05,##P<0.01vsHG group.
圖3 PL可減輕高糖誘導(dǎo)的H9C2細胞纖維化的蛋白表達
PL給藥過程中并不影響糖尿病小鼠的血糖,見圖4。HE染色顯示T1DM組心肌排列紊亂,細胞肥大,PL可逆轉(zhuǎn)此變化,見圖5。
Figure 4. PL didn’t change the weight and blood glucose (BG) levels in STZ-induced T1DM mice. Mean±SD.n=5.
圖4 PL不改變STZ造模的1型糖尿病小鼠的血糖和體重
超聲心動圖提示,在造模(T1DM)組,室間隔厚度較正常(control)組增加(P<0.01),PL給藥后可以減輕室壁增厚(P<0.01)。功能性指標如射血分數(shù)(ejection fraction,EF)也反映出相同特征,T1DM組小鼠的射血分數(shù)低于control組,PL可增加糖尿病心肌病小鼠的射血分數(shù)(P<0.01),從而改善心功能,見表2。
2.1 PL緩解糖尿病心肌病小鼠心肌損傷 心肌損傷的血清學(xué)指標如CK-MB及LDH在T1DM組小鼠中升高,然而使用PL可以使CK-MB及LDH均明顯下降(P<0.01),見圖6。
2.2 PL緩解糖尿病心肌病小鼠的心肌纖維化 天狼星紅染色所示,T1DM組膠原纖維較control組增多,在應(yīng)用PL后,膠原纖維較造模組明顯減少,見圖5。
糖尿病心肌病是指發(fā)生于糖尿病患者,不能用高血壓性心臟病、冠狀動脈粥樣硬化性心臟病及其它心臟病變來解釋的心肌疾病,包括心肌結(jié)構(gòu)以及心臟功能的改變[9-10]。研究表明,多種因素參與了糖尿病心血管并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展,如慢性炎性、氧化應(yīng)激、細胞凋亡、胰島素抵抗和內(nèi)皮細胞功能失調(diào)等等[11-13],相互交織共同作用,造成了心臟損害。炎癥,特別是慢性炎癥在糖尿病并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮著重要作用。長期糖尿病導(dǎo)致的高糖環(huán)境可導(dǎo)致炎癥因子如TNF-α和IL-6等在體內(nèi)釋放增多,反復(fù)長期慢性炎癥刺激,導(dǎo)致心肌細胞肥大、凋亡,心肌間質(zhì)纖維化等改變,可能是糖尿病心肌病結(jié)構(gòu)和功能異常的主要原因[14]。
Figure 5. PL alleviated disorder of basic structure (HE staining, ×200) and cardiac fibrosis (Sirius red staining, ×200) in the diabetic cardiomyopathy mice.
圖5 PL可緩解糖尿病心肌病小鼠的心肌結(jié)構(gòu)紊亂及纖維化等病理變化
表2 心臟超聲心動圖測量數(shù)據(jù)
IVSd: diastolic interventricular septal thickness; FS: fraction shortening; EF: ejection fraction; ICT: isovolumic contraction time; Et: ejection time; IRT: isovolumic relaxation time.**P<0.01vscontrol group;#P<0.05,##P<0.01vsT1DM group.
Figure 6. PL mitigated myocardial injury in T1DM mice. Serum CK-MB and serum LDH were examined. Mean±SD.n=5.**P<0.01vscontrol group;##P<0.01vsT1DM group.
圖6 PL可降低血清心肌損傷指標肌酸激酶同工酶和乳酸脫氫酶水平
蓽茇酰胺是從胡椒科植物蓽茇的果穗中分離出的生物堿天然產(chǎn)物[15],具有抑制腫瘤、抗炎和抗氧化等多種生物學(xué)活性[5]。已有研究成果表明,PL通過抑制NF-κB磷酸化從而緩解炎癥反應(yīng),同時,下調(diào)MAPKs的活性可成為PL抗炎的另一可能機制[16]。本研究表明,PL可以減少高糖環(huán)境下炎癥因子的表達,從而緩解高糖環(huán)境下的心肌細胞的纖維化;在STZ誘導(dǎo)的1型糖尿病小鼠模型中,PL可降低心肌損傷指標CK-MB和LDH水平,改善心臟功能,減輕心肌纖維化。抑制炎癥因子的釋放,可能是PL緩解糖尿病心肌病的主要機制。
本研究證實,高糖誘導(dǎo)的慢性炎癥可以促進糖尿病心肌病的發(fā)生發(fā)展,PL可以抑制炎癥因子的釋放,我們可以推測PL對糖尿病心肌病可以產(chǎn)生保護性作用。但本研究并未涉及更深層次的機制,具體機制有待進一步探索。
綜上所述,本項研究揭示了,PL通過其抗炎作用緩解心肌纖維化和心肌損傷,從而對糖尿病心肌病小鼠的心肌產(chǎn)生保護性作用。因此,PL可能成為糖尿病心肌病的潛在治療藥物,抑制炎癥可能成為治療糖尿病心肌病的潛在靶點。