覃信梅 盧永彬 江祈貴 黃章平 黃夕洋
摘要:肌醇半乳糖苷合成酶基因與植物光合產(chǎn)物運(yùn)輸、種子耐脫水性、抵御生物與非生物脅迫和自我保護(hù)等生理生化過(guò)程密切相關(guān)?;诖听X報(bào)春苣苔(Primulina spinulosa)轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù),獲得(鑒定)1個(gè)肌醇半乳糖苷合成酶基因。序列分析結(jié)果表明,該基因全長(zhǎng)1 347 bp(GenBank登錄號(hào)為MG521418),開(kāi)放閱讀框(ORF)為1 008 bp,共編碼335個(gè)氨基酸。進(jìn)一步基于氨基酸序列的分析表明,該基因編碼的蛋白質(zhì)分子量為38.05 ku,理論等電點(diǎn)為5.09,為親水性蛋白,含有1個(gè)與糖基轉(zhuǎn)移酶家族蛋白相同的保守結(jié)構(gòu)域;刺齒報(bào)春苣苔的肌醇半乳糖苷合成酶基因與同科的旋蒴苣苔(Boea hygrometrica,F(xiàn)J222452)的相似性高達(dá)90%,兩者在系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)上聚為1支。研究結(jié)果為進(jìn)一步研究刺齒報(bào)春苣苔的肌醇半乳糖苷合成酶基因的分子結(jié)構(gòu)和功能奠定了基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞:刺齒報(bào)春苣苔;肌醇半乳糖苷合成酶基因;基因序列分析;信號(hào)肽
中圖分類號(hào): S184文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號(hào):1002-1302(2019)08-0056-04
肌醇半乳糖苷合成酶(galactinol synthase,簡(jiǎn)稱GolS)是糖基轉(zhuǎn)移酶家族的一個(gè)亞家族,能催化半乳糖和肌醇反應(yīng)合成肌醇半乳糖苷,為棉子糖系列寡糖的合成提供半乳糖基。棉子糖系列寡糖(raffinose family oligosaccharides,簡(jiǎn)稱RFOs)主要包括棉子糖、水蘇糖、毛蕊草糖等,是高等植物中重要的可溶性小分子滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)[1]。當(dāng)植物受到環(huán)境脅迫時(shí),可以快速合成并積累不同種類的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)來(lái)維持植物細(xì)胞內(nèi)正常的生理機(jī)能,調(diào)節(jié)植物以適應(yīng)環(huán)境脅迫,使植物免受脅迫傷害。一些體內(nèi)不含棉子糖系列寡糖或其含量極低的植物,在受到干旱、高鹽和低溫等逆境脅迫后,棉子糖系列寡糖會(huì)迅速積累,植株的抗逆性也隨之增強(qiáng)。
肌醇半乳糖苷合成酶是植物體內(nèi)棉子糖系列寡糖合成起始的關(guān)鍵酶,調(diào)控著植物體內(nèi)棉子糖系列寡糖的積累[2]。目前已有研究表明,GolS基因在一些植物受到逆境脅迫后表達(dá)量上升,從而參與響應(yīng)逆境脅迫,如水稻(Oryza sativa)2個(gè)GolS基因在干旱、鹽處理下的表達(dá)量大幅度上調(diào),其中1個(gè)還可以積極響應(yīng)冷脅迫[3]。目前研究者已經(jīng)從擬南芥(Arabidopsis thaliana)中分離出7個(gè)GolS基因,其中AtGolS1、AtGolS2由干旱、鹽脅迫誘導(dǎo),AtGolS2基因在擬南芥中的超表達(dá)提高了肌醇半乳糖苷、棉子糖的含量,并增強(qiáng)了植物的抗旱能力,而AtGolS3受到低溫脅迫誘導(dǎo)[4-5]??Х龋–offea arabica)中有3個(gè)GolS類基因,CaGolS2的表達(dá)量在干旱、鹽脅迫下上調(diào),CaGolS3的表達(dá)量在干旱脅迫下上調(diào),而CaGolS1能夠參與調(diào)控植物響應(yīng)干旱、低溫及鹽脅迫[6]。在楊樹(shù)(Populus)的9個(gè)GolS基因中,PtrGolS2、PtrGolS8受到低溫脅迫的誘導(dǎo),PtrGolS3、PtrGolS4和PtrGolS6受到鹽脅迫的誘導(dǎo),而所有PtrGolS基因都參與到楊樹(shù)植株對(duì)干旱脅迫的應(yīng)答中[7-8]。木薯(Manihot esculenta)中有7個(gè)GolS類基因,其中MeGolS1、MeGolS5受到干旱誘導(dǎo),表達(dá)量明顯上調(diào),能更迅速地積極響應(yīng)干旱脅迫[9]。在甘藍(lán)型油菜[10-11]、小鹽芥[12]和日本黃連[13]等植物中也存在類似的生理現(xiàn)象??梢?jiàn)GolS基因在植物抵抗干旱、寒冷等逆境脅迫中起到重要作用。
刺齒報(bào)春苣苔(Primulina spinulosa)是苦苣苔科(Gesneriaceae)報(bào)春苣苔屬多年生草本植物,其葉肉質(zhì)多汁,為我國(guó)廣西西南部所特有。目前,關(guān)于刺齒報(bào)春苣苔的報(bào)道甚少,主要研究集中在其離體快速繁殖方面[14],而對(duì)其功能基因的研究未見(jiàn)報(bào)道。報(bào)春苣苔屬植物一般生長(zhǎng)于陰濕的石灰?guī)r巖壁上或洞穴中,而刺齒報(bào)春苣苔則生長(zhǎng)在陽(yáng)光直射、光禿裸露的石灰?guī)r縫隙中,屬于極端的耐旱種類。為了探討刺齒報(bào)春苣苔的耐旱機(jī)制,筆者對(duì)刺齒報(bào)春苣苔進(jìn)行了轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,通過(guò)同源序列搜索(BLAST)篩選獲得了刺齒報(bào)春苣苔的GolS基因序列,并對(duì)該基因序列及其編碼的蛋白質(zhì)進(jìn)行了分析,旨在為刺齒報(bào)春苣苔耐旱分子機(jī)制的研究提供參考。
1材料與方法
1.1材料
刺齒報(bào)春苣苔試驗(yàn)材料采自廣西扶綏縣渠黎鎮(zhèn)。采集同一居群的3~5個(gè)個(gè)體的頂端嫩葉(長(zhǎng)度<1 cm),采后迅速將其放入液氮中速凍保存。
1.2方法
1.2.1RNA的提取、建庫(kù)和測(cè)序用改良的TRIzol法對(duì)總RNA進(jìn)行提取[15],由北京諾禾致源生物信息科技有限公司對(duì)檢測(cè)合格的RNA進(jìn)行建庫(kù)和測(cè)序。用帶有Oligo(dT)的磁珠富集mRNA,隨后加入fragmentation buffer(片斷化緩沖液)將mRNA打斷成短片段,以mRNA為模板,用六堿基隨機(jī)引物(randomhexamers)合成一鏈cDNA,然后加入緩沖液、dNTPs和DNA polymerase Ⅰ(DNA聚合酶Ⅰ)、RNase H(核糖核酸酶H)合成二鏈cDNA,再用AMPure XP beads純化雙鏈cDNA。將純化的雙鏈cDNA先進(jìn)行末端修復(fù)、加A尾并連接測(cè)序接頭,再用AMPure XP beads進(jìn)行片段大小的選擇,最后進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并用AMPure XP beads純化PCR產(chǎn)物,得到最終的文庫(kù)。文庫(kù)構(gòu)建完成后,先用Qubit 2.0進(jìn)行初步定量,稀釋文庫(kù)至1.5 ng/μL,隨后使用Agilent 2100對(duì)文庫(kù)的insert size(插入片段大?。┻M(jìn)行檢測(cè),insert size符合預(yù)期后,使用Q-PCR(定量PCR)方法對(duì)文庫(kù)的有效濃度進(jìn)行準(zhǔn)確定量(文庫(kù)的有效濃度應(yīng)>2 nmol/L),以保證文庫(kù)質(zhì)量。最后用IlluminaHiSeqTM 2500對(duì)制備好的文庫(kù)進(jìn)行測(cè)序。
1.2.2序列分析和系統(tǒng)樹(shù)構(gòu)建在GenBank公共數(shù)據(jù)庫(kù)中下載苦苣苔科旋蒴苣苔(Boea hygrometrica)的GolS基因(登錄號(hào):FJ222452),使用Bioedit中的local BLAST功能,以測(cè)序獲得的刺齒報(bào)春苣苔轉(zhuǎn)錄組為搜索庫(kù),找出刺齒報(bào)春苣苔的GolS類基因。用DNAman、Finder、TMPRED、SWISS-MODEL、NetPhos 2.0、SignaIP 4.1等軟件進(jìn)行序列的開(kāi)放閱讀框(ORF)、編碼氨基酸、編碼蛋白的理化性質(zhì)分析。將篩選到的刺齒報(bào)春苣苔GolS基因序列在GenBank中進(jìn)行BLAST搜索,找到與之高度相似的同源序列,并下載11種植物的同源序列,基于該基因翻譯的氨基酸序列,用DNAman軟件進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)的構(gòu)建,構(gòu)建方法參考文獻(xiàn)[16]。
2結(jié)果與分析
2.1基因的生物信息學(xué)分析
在本研究測(cè)序獲得的P. spinulosa轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫(kù)中(測(cè)序深度約為6G),筆者只篩選到1個(gè)GolS基因,該基因序列全長(zhǎng)1 347 bp(GenBank登錄號(hào)為MG521418),使用美國(guó)國(guó)立生物技術(shù)信息中心(NCBI)網(wǎng)站上的NCBI ORF Finder和生物信息學(xué)軟件DNAman對(duì)該基因序列進(jìn)行分析,結(jié)果表明,該序列包含1個(gè)1 008 bp的開(kāi)放閱讀框,編碼335個(gè)氨基酸。
2.2編碼蛋白質(zhì)的分析和疏水性預(yù)測(cè)
通過(guò)DNAman軟件分析得出,本研究中GolS基因編碼的蛋白質(zhì)分子量為38.05 ku, 等電點(diǎn)(pI)為5.09。從蛋白質(zhì)序列的疏水性分析結(jié)果可以看出,GolS基因編碼的肽鏈中疏水值最大約為3.66,最小值約為-2.86,平均值是-0.18,屬于親水性蛋白。
用在線分析軟件(http://www.expasy.org/tools/protparam.html)進(jìn)行分析可知,該蛋白質(zhì)帶負(fù)電荷的氨基酸[天冬氨酸(Asp)+谷氨酸(Glu)]總數(shù)為41個(gè),帶正電荷的氨基酸[精氨酸(Arg)+賴氨酸(Lys)]總數(shù)為29個(gè),分子式為C1 733H2 618N434O498S17,不穩(wěn)定系數(shù)為 36.65,屬于穩(wěn)定性蛋白質(zhì)。
2.3功能結(jié)構(gòu)域的分析
將編碼的氨基酸序列用NCBI的Conserved Domain Architecture Retrieval Tool進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)該蛋白質(zhì)具有1個(gè)與糖基轉(zhuǎn)移酶家族(glycosyltransferases superfamily)蛋白相同的保守活性位點(diǎn)[JP3](conserved active sites,簡(jiǎn)稱CAS)結(jié)構(gòu)域。
2.4跨膜預(yù)測(cè)
用跨膜蛋白數(shù)據(jù)庫(kù)TMbase(http://ch.embnet.org/software/TMPRED_form. html)預(yù)測(cè)GolS蛋白的跨膜區(qū)域。從可以看出,該蛋白不存在跨膜結(jié)構(gòu)蛋白,為膜內(nèi)蛋白。
2.5蛋白質(zhì)的磷酸化預(yù)測(cè)
通過(guò)在線蛋白磷酸化位點(diǎn)分析軟件NetPhos 2.0 Server對(duì)GolS基因編碼的蛋白進(jìn)行預(yù)測(cè),結(jié)果表明,該多肽鏈中預(yù)測(cè)分值在0.5以上的可能的磷酸化位點(diǎn)共有13個(gè)。其中,絲氨酸(Ser)可能的磷酸化位點(diǎn)共有3個(gè),分別位于肽鏈的18、22、203位;蘇氨酸(Thr)可能的磷酸化位點(diǎn)共有3個(gè),分別位于肽鏈的218、276、335位;酪氨酸(Tyr)可能的磷酸化位點(diǎn)共有7個(gè),分別位于肽鏈的42、105、125、190、205、234、298位。
2.6糖基化位點(diǎn)和信號(hào)肽的分析
采用NetNGlyc 1.0對(duì)GolS基因編碼的氨基酸序列進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)有2個(gè)潛在的N-糖基化位點(diǎn),但是糖基化一般發(fā)生在信號(hào)受體蛋白分子上,而用SignaIP 4.1軟件預(yù)測(cè)結(jié)果顯示其沒(méi)有信號(hào)肽,說(shuō)明在體內(nèi)這些預(yù)測(cè)的潛在的N-糖基化位點(diǎn)可能不能真正地被糖基化。
2.7蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)及三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)
用SOPMA軟件對(duì)GolS蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè),如圖6所示,α-螺旋約占37.91%,延伸直鏈約占23.58%,β-轉(zhuǎn)角約占10.15%,無(wú)規(guī)則卷曲約占28.36%,其中α-螺旋為主要結(jié)構(gòu)。
利用SWISS-Model對(duì)刺齒報(bào)春苣苔GolS蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè),結(jié)果表明,GolS蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)含有8個(gè)α-螺旋,6個(gè)β-折疊,其間由無(wú)規(guī)則卷曲連接。
2.8系統(tǒng)發(fā)育分析
刺齒報(bào)春苣苔GolS基因編碼的氨基酸與旋蒴苣苔(Boea hygrometrica,登錄號(hào):FJ222452)GolS基因編碼的氨基酸序列的相似性為90%,在系統(tǒng)樹(shù)上聚為1支。
3討論
已有報(bào)道顯示,旋蒴苣苔中的GolS基因響應(yīng)干旱脅迫,旋蒴苣苔肌醇半乳糖苷合成酶基因BhGolS1的啟動(dòng)子上含有4個(gè)與WRKY轉(zhuǎn)錄因子特異結(jié)合的順式作用元件W-box,已證實(shí)該元件是旋蒴苣苔響應(yīng)干旱脅迫的關(guān)鍵因子[17]。在對(duì)旋蒴苣苔的研究中發(fā)現(xiàn),WRKY轉(zhuǎn)錄因子是通過(guò)ABA(脫落酸)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑來(lái)調(diào)控BhGolS1的表達(dá)以響應(yīng)干旱脅迫的,而[CM(25]且擬南芥中的AtGolS1、AtGolS2[4]和毛果楊中的PtrGolS2、PtrGolS5-7[8]均被證明是受ABA誘導(dǎo)的。本研究通過(guò)轉(zhuǎn)錄組測(cè)序獲得的刺齒報(bào)春苣苔GolS基因和已知的與抗旱相關(guān)的旋蒴苣苔GolS基因的相似性很高,推測(cè)其可能在刺齒報(bào)春苣苔耐旱過(guò)程中起重要作用,但是其作用機(jī)制是否與旋蒴苣苔相似,也受到轉(zhuǎn)錄因子WRKY的調(diào)控,因此可見(jiàn)參與ABA依賴的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑需要深入研究。另外,有研究發(fā)現(xiàn),擬南芥中的GolS基因受到了2類轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控,熱激因子(HSFs)可以激活A(yù)tGolS1的表達(dá)[18],DREB1A/CBF3可以激活A(yù)tGolS3的表達(dá)和增強(qiáng)抗旱耐凍性[4]。至于刺齒報(bào)春苣苔的GolS基因否也受到不同轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控,其具體機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。
參考文獻(xiàn):
[1]李芳,汪曉峰. 植物中棉子糖系列寡糖代謝及其調(diào)控關(guān)鍵酶研究進(jìn)展[J]. 西北植物學(xué)報(bào),2008,28(4):852-859.
[2]Keller F,Pharr D M. Metabolism of carbohydrates in sinks and sources:galactosyl-sucrose oligosaccharides[M]//Photoassimilate Distribution in Plants and Crops:Source-Sink Relationships. New York:Marcel Dekker,1996:157-183.
[3]Sengupta S,Mukherjee S,Parween S,et al. Galactinol synthase across evolutionary diverse taxa:functional preference for higher plants?[J]. FEBS Letters,2012,586(10):1488-1496.
[4]Taji T,Ohsumi C,Iuchi S,et al. Important roles of drought‐and cold‐inducible genes for galactinol synthase in stress tolerance in Arabidopsis thaliana[J]. The Plant Journal,2002,29(4):417-426.
[5]Nishizawa A,Yabuta Y,Shigeoka S. Galactinol and raffinose constitute a novel function to protect plants from oxidative damage[J]. Plant physiology,2008,147(3):1251-1263.
[6]Dos Santos T B,Budzinski I G F,Marur C J,et al. Expression of three galactinol synthase isoforms in Coffeaarabica L. and accumulation of raffinose and stachyose in response to abiotic stresses[J]. Plant Physiology and Biochemistry,2011,49(4):441-448.
[7]Unda F,Canam T,Preston L,et al. Isolation and characterization of galactinol synthases from hybrid poplar[J]. Journal of experimental botany,2011,63(5):2059-2069.
[8]Zhou J,Yang Y,Yu J,et al. Responses of Populus trichocarpa galactinol synthase genes to abiotic stresses[J]. Journal of plant research,2014,127(2):347-358.
[9]范潔. 木薯肌醇半乳糖苷合成酶基因MeGolS5的抗旱功能研究[D]. 海南:海南大學(xué),2015:46-49.
[10]卓加金. 油菜GolS基因的克隆、表達(dá)分析及種子脫水耐性的研究[D]. 北京:北京林業(yè)大學(xué),2009:17-34.
[11]Li X,Zhuo J J,Jing Y,et al. Expression of a GALACTINOL SYNTHASE gene is positively associated with desiccation tolerance of Brassica napus seeds during development[J]. Journal of plant physiology,2011,168(15):1761-1770.
[12]Wang Z I,Li P H,F(xiàn)redricksen M,et al. Expressed sequence tags from Thellungiella halophila,a new model to study plant salt-tolerance[J]. Plant Science,2004,166(3):609-616.
[13]Takanashi K,Shitan N,Sugiyama A,et al. Galactinol synthase gene of Coptis japonica is involved in berberinetolerance[J]. Bioscience,Biotechnology,and Biochemistry,2008,72(2):398-405.
[14]湯正輝,陳維倫,石雷,等. 刺齒報(bào)春苣苔苣苔的離體快速繁殖[J]. 植物生理學(xué)通訊,2004,40(2):211.
[15]Bariola P A,Howard C J,Taylor C B,et al. The Arabidopsis thaliana ribonuclease gene RNA1 is tightly controlled in response to phosphate limitation[J]. The Plant Journal,1994,6(5):673-685.
[16]杜玉杰. 構(gòu)建分子系統(tǒng)樹(shù)的簡(jiǎn)易方法[J]. 生物學(xué)通報(bào),2013,48(4):4-6.
[17]Wang Z,Zhu Y,Wang L L,et al. A WRKY transcription factorparticipates in dehydrationtolerance in Boeahygrometricaby binding to the W-box elements of the galactinol synthase (BhGolS1)promoter[J]. Planta,2009,230(6):1155-1166.
[18]Panikulangara T J,Eggers-Schumacher G,Wunderlich M,et al. Galactinol synthase1. A novel heat shock factor target gene responsible for heat-induced synthesis of raffinose family oligosaccharides in Arabidopsis[J]. Plant physiology,2004,136(2):3148-3158.