范光森,劉朋肖,吳秋華,富志磊,成柳潔,朱宇婷,朱運(yùn)平,楊 然,李秀婷,*
(1.北京食品營(yíng)養(yǎng)與人類健康高精尖創(chuàng)新中心,北京工商大學(xué),北京 100048; 2.北京市食品添加劑工程技術(shù)研究中心,北京工商大學(xué),北京 100048; 3.北京工商大學(xué)食品學(xué)院,北京 100048)
白酒是我國(guó)國(guó)酒,它是借用酒曲這一特殊糖化發(fā)酵劑催化富含淀粉質(zhì)的糧谷發(fā)酵,再經(jīng)蒸餾、貯存和勾調(diào)而成的酒精飲料[1]。在白酒中,乙醇是其主體成分,酒醅中乙醇含量很大程度上決定了白酒的產(chǎn)量,另外,乙醇體積分?jǐn)?shù)還是評(píng)價(jià)白酒品質(zhì)的重要質(zhì)量指標(biāo),與白酒的香氣、口味和風(fēng)格息息相關(guān)[2-3]。眾所周知,微生物,尤其是釀酒酵母的代謝活動(dòng)是白酒釀造中乙醇的重要來源,對(duì)于白酒發(fā)酵速率、產(chǎn)量、風(fēng)味和品質(zhì)具有重要的作用[4-5]。因此,有必要系統(tǒng)探究微生物中的釀酒酵母產(chǎn)乙醇的發(fā)酵條件。
中國(guó)白酒傳統(tǒng)的釀造工藝生產(chǎn)過程更多的局限于手工操作,勞動(dòng)強(qiáng)度大、生產(chǎn)效率低,在勞動(dòng)力成本大幅度提升的今天,有必要在進(jìn)行深入研究的基礎(chǔ)上推進(jìn)機(jī)械化程度的提高,實(shí)現(xiàn)傳統(tǒng)釀造方式向現(xiàn)代化釀造方式轉(zhuǎn)型[6]。在這一過程中,看似機(jī)械化設(shè)備的研制與使用是實(shí)現(xiàn)成功轉(zhuǎn)型的關(guān)鍵,但事實(shí)上,蘊(yùn)含在白酒釀造過程中的內(nèi)在機(jī)制解析才是真正實(shí)現(xiàn)白酒釀造現(xiàn)代化生產(chǎn)的核心,也是更好實(shí)現(xiàn)機(jī)械化設(shè)備應(yīng)用的前提[7]。在這一趨勢(shì)的推動(dòng)下,中國(guó)白酒的釀造已涌現(xiàn)部分現(xiàn)代化釀造方式嘗試的案例,如不銹鋼槽車地面恒溫發(fā)酵系統(tǒng)代替?zhèn)鹘y(tǒng)地缸發(fā)酵,發(fā)酵桶、發(fā)酵池代替?zhèn)鹘y(tǒng)發(fā)酵設(shè)備陶缸或窖池[8]。在機(jī)械化程度提升的過程中,釀造方式也發(fā)生了微妙的變化,嚴(yán)格地講,是微生物釀造微環(huán)境發(fā)生了改變。在采用地上釀造方式代替地下釀造方式轉(zhuǎn)變中,較為突出的微環(huán)境變化便是釀酒過程中氧氣的含量。那么,隨之帶來的是釀造所用微生物特性也必須隨之改變,由較為嚴(yán)格的厭氧環(huán)境轉(zhuǎn)變?yōu)槲⒀趸蛴醒醐h(huán)境。為適應(yīng)白酒釀造環(huán)境的變化,選育獲得在有氧條件下高產(chǎn)乙醇的酵母,并對(duì)其產(chǎn)乙醇發(fā)酵條件進(jìn)行研究成為首要的工作。這一工作的開展將會(huì)改善我國(guó)白酒生產(chǎn)工藝,適應(yīng)現(xiàn)代化釀造方式,促進(jìn)中國(guó)白酒的現(xiàn)代化釀造發(fā)展[9]。前期,本研究團(tuán)隊(duì)從白酒釀造用大曲中篩選獲得一株在有氧環(huán)境下高產(chǎn)乙醇的釀酒酵母YF1914,但尚未對(duì)其產(chǎn)乙醇發(fā)酵條件進(jìn)行系統(tǒng)研究[10]。因此,本文將通過單因素實(shí)驗(yàn)優(yōu)化其在有氧環(huán)境下高產(chǎn)乙醇的發(fā)酵條件,并對(duì)其產(chǎn)香特性進(jìn)行了研究,為未來白酒生產(chǎn)方式變革提供理論依據(jù)。
釀酒酵母YF1914 本實(shí)驗(yàn)室自行篩選和保存;乙醇、二辛醇 購(gòu)自Sigma公司;葡萄糖、酵母粉、蛋白胨、大豆蛋白胨、瓊脂粉、硫酸銨、磷酸二氫鉀和硫酸鎂等試劑 均為國(guó)產(chǎn)生物或分析純?cè)噭?YPD培養(yǎng)基(g/L) 葡萄糖20、蛋白胨20、酵母粉10、瓊脂粉20,115 ℃滅菌20 min;乙醇發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L) 葡萄糖200、酵母浸粉10、蛋白胨20、硫酸銨1、磷酸二氫鉀1、硫酸鎂1,蒸餾水定容,pH自然,115 ℃滅菌20 min(培養(yǎng)基中酵母浸粉和胰蛋白胨各自濃度分別與各自產(chǎn)品標(biāo)識(shí)中的有效氮量的乘積之和為該培養(yǎng)基的有效氮濃度);高粱 購(gòu)自山東臨沂沂南地區(qū)。
YQX-SG46-280S高壓蒸汽滅菌器 上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;BCN-1360型生物潔凈工作臺(tái) 北京東聯(lián)哈爾儀器公司;電子天平、pH計(jì) 賽多利斯科學(xué)儀器有限公司;LHS-100CL恒溫恒濕培養(yǎng)箱 上海一恒儀器設(shè)備有限公司;TU-19紫外-可見分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;Microfuge 2R離心機(jī) 北京田林恒泰科技有限公司;1260series高效液相色譜儀 Agilent 科技有限公司;TSQTM8000 evo三重四級(jí)桿氣質(zhì)聯(lián)用儀 美國(guó)Thermo Fisher Scientific。
1.2.1 乙醇發(fā)酵條件優(yōu)化 將實(shí)驗(yàn)室保存于甘油管中的釀酒酵母YF1914接種于YPD液體培養(yǎng)基中(50 mL裝于250 mL三角瓶),30 ℃、120 r/min培養(yǎng)活化24 h,然后接入乙醇發(fā)酵培養(yǎng)基中培養(yǎng)。采用step-by-step單因素優(yōu)化方法,按照表1中所列因素依次進(jìn)行考察優(yōu)化其產(chǎn)乙醇發(fā)酵條件。
表1 優(yōu)化酵母發(fā)酵產(chǎn)乙醇條件參數(shù)Table 1 Experimental parameters for optimal ethyl alcohol production
1.2.2 酵母發(fā)酵產(chǎn)香 將酵母YF1914在YPD液體培養(yǎng)基(固體YPD培養(yǎng)基中不添加瓊脂)中活化,以1%的接種量接種于高粱浸出液培養(yǎng)基中,在30 ℃下,120 r/min培養(yǎng)32 h。發(fā)酵液于4 ℃、10000 r/min離心10 min,取上清液采用頂空固相微萃取-氣質(zhì)聯(lián)用法(SPME-GC-MS)檢測(cè)該酵母所產(chǎn)揮發(fā)性香氣成分。高粱浸出液培養(yǎng)基的制備參照之前文獻(xiàn)[11]進(jìn)行,具體操作如下:稱取250 g高粱粉碎至100目以下后,與水1∶4混合,待煮沸后,保持90 ℃條件下加入耐高溫α-淀粉酶液化1 h,冷卻,加入糖化酶于60 ℃下糖化2 h。糖化后,室溫條件下,轉(zhuǎn)速為10000 r/min,離心10 min,取上清,采用4層紗布進(jìn)行過濾,得到濾液,將浸出液的糖度調(diào)至10 °Brix,分裝于三角瓶中,115 ℃滅菌20 min。
1.2.3 酵母生物量和發(fā)酵液pH測(cè)定 酵母生物量采用分光光度計(jì)于560 nm處測(cè)定吸光值計(jì)算,發(fā)酵液pH利用pH計(jì)測(cè)定。
1.2.4 高效液相色譜法測(cè)定乙醇和葡萄糖含量 發(fā)酵液于室溫條件下,10000 r/min 離心10 min,獲得上清液,上清液用0.22 μm 水系濾膜過濾,參照Sun[12]文獻(xiàn)進(jìn)行高效液相色譜檢測(cè)乙醇和葡萄糖。具體方法的參數(shù)為:BioRad Aminex HPX-87H(300 mm×7.8 mm);0.01 mol/L H2SO4,流速0.5 mL/min;柱溫25 ℃,進(jìn)樣量20 μL,外標(biāo)法定量。
1.2.5 頂空固相微萃取-氣質(zhì)聯(lián)用法測(cè)定揮發(fā)性成分 參照范光森等[13]的方法,具體如下:發(fā)酵液裝入頂空瓶中于50 ℃平衡30 min,將預(yù)處理好的50/30 μm DVB/CAR/PDMS萃取頭插入頂空瓶中吸附30 min,然后移入氣相色譜的高溫氣化室解吸5 min,進(jìn)行氣質(zhì)分析;毛細(xì)管色譜柱為DB-FFAP(60 m×250 μm×0.25 μm),自動(dòng)進(jìn)樣,分流比為10∶1,進(jìn)樣口溫度為250 ℃,檢測(cè)器溫度250 ℃,載氣為氦氣,流速為1 mL/min,程序升溫50 ℃,保留2 min,以8 ℃/min的速率升至120 ℃,保留2 min,再以10 ℃/min升至200 ℃,穩(wěn)定5 min,最后以5 ℃/min升至250 ℃,穩(wěn)定20 min;EI電離源,電子能量70 eV,掃描范圍10~500 u,離子源溫度250 ℃,接口溫度250 ℃;通過質(zhì)譜解析與NIST 11譜庫(kù)和文獻(xiàn)保留指數(shù)比對(duì)確定各化合物結(jié)構(gòu),并采用二辛醇作為內(nèi)標(biāo)進(jìn)行內(nèi)標(biāo)半定量法計(jì)算各化合物的含量。
每組試驗(yàn)進(jìn)行三個(gè)平行,采用SPSS 17.0對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行差異顯著性檢驗(yàn)分析,利用Excel 2016和Origin 9.0繪圖軟件處理試驗(yàn)數(shù)據(jù)。
由圖1可以看出,隨著葡萄糖初始濃度的增加,乙醇濃度先增加后降低,當(dāng)葡萄糖初始濃度為350 g/L時(shí),乙醇濃度最大,為102.5 g/L。葡萄糖是酵母生長(zhǎng)繁殖及轉(zhuǎn)化為乙醇的動(dòng)力能源,在其濃度較低時(shí),酵母生長(zhǎng)繁殖受到底物濃度不足的影響,乙醇產(chǎn)量不高,因此會(huì)隨著葡萄糖初始濃度的增加,乙醇產(chǎn)量不斷增加;而當(dāng)乙醇濃度較高時(shí)(大于350 g/L),雖然前期研究結(jié)果表明該菌株能夠耐受質(zhì)量分?jǐn)?shù)為80%的葡萄糖,但高濃度的葡萄糖形成的高滲透壓會(huì)對(duì)酵母正常生長(zhǎng)和繁殖造成較大的影響,從而造成乙醇產(chǎn)量下降[10]。曹宇龍等[14]研究表明葡萄糖初始濃度為286.5 g/L時(shí)乙醇發(fā)酵結(jié)果較為理想;伍保龍等[15]研究結(jié)果顯示葡萄糖濃度為320 g/L時(shí)乙醇產(chǎn)量最高,這與本文研究結(jié)果較近。不同的酵母具有不同的葡萄糖耐受性,因此發(fā)酵產(chǎn)乙醇所需的最佳葡萄糖初始濃度也會(huì)有所差異。針對(duì)本文研究的酵母YF1914,其最佳產(chǎn)乙醇的葡萄糖初始濃度為350 g/L。
圖1 葡萄糖濃度對(duì)酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇的影響Fig.1 Effect of glucose concentration on ethyl alcohol production from yeast strain YF1914注:含有相同的字母表示采用Tukey test檢驗(yàn)時(shí) 組間沒有顯著差異(p>0.05), 不同字母表示有顯著差異(p<0.05);圖2~圖9同。
氮源是酵母生長(zhǎng)繁殖所需的重要營(yíng)養(yǎng)源,不同的氮源種類對(duì)酵母生長(zhǎng)、產(chǎn)物形成及其它生理機(jī)能的影響不同[16]。由圖2可以看出,在促進(jìn)酵母發(fā)酵產(chǎn)乙醇方面,有機(jī)氮源明顯優(yōu)于無機(jī)氮源,并且在相同有效氮濃度下(41.6 g/L),以酵母浸粉為唯一氮源時(shí),乙醇產(chǎn)量最高,達(dá)到111.7 g/L,與初始培養(yǎng)基復(fù)合氮源(酵母浸粉和蛋白胨)條件下的乙醇產(chǎn)量沒有顯著性差異。這可能是酵母浸粉中含有酵母生長(zhǎng)所需要的微量元素及生長(zhǎng)因子,能有效縮短酵母的遲滯期,快速大量合成胞內(nèi)RNA,快速轉(zhuǎn)錄和表達(dá)與氮源代謝、乙醇發(fā)酵相關(guān)的基因[17]??紤]到成本問題,后續(xù)試驗(yàn)都以添加單一氮源酵母浸粉進(jìn)行。
圖2 氮源種類對(duì)酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇的影響Fig.2 Effect of different nitrogen sources on ethyl alcohol production from yeast strain YF1914
由圖3可以看出,酵母浸粉濃度對(duì)酵母發(fā)酵產(chǎn)乙醇具有一定的影響,隨著濃度的增加,乙醇產(chǎn)量先增加后降低,之后有輕微的波動(dòng)。當(dāng)酵母浸粉濃度為原乙醇發(fā)酵培養(yǎng)基有效氮濃度下(41.6 g/L,原乙醇發(fā)酵培養(yǎng)基有效氮濃度與酵母浸粉產(chǎn)品標(biāo)識(shí)有效氮量的比值),乙醇產(chǎn)量最高為113.5 g/L。在氮源缺乏的情況下,細(xì)胞中的蛋白質(zhì)及ATP含量較低,對(duì)酵母發(fā)酵乙醇的能力產(chǎn)生影響;氮源濃度過高,則會(huì)造成菌體生長(zhǎng)過于旺盛,造成局部或階段性供氧不足,引起提前衰亡[18-19]。因此,選擇41.6 g/L為后續(xù)酵母浸粉的添加量。
圖3 酵母浸粉濃度對(duì)酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇的影響Fig.3 Effect of concentration of yeast extract on ethyl alcohol production from yeast strain YF1914
pH不僅對(duì)酵母生長(zhǎng)產(chǎn)生影響,而且也會(huì)對(duì)其代謝通路進(jìn)行調(diào)控[20]。通過優(yōu)化培養(yǎng)基初始pH發(fā)現(xiàn),隨著初始pH的升高,酵母發(fā)酵產(chǎn)乙醇能力不斷增加,當(dāng)初始pH為5~7時(shí),酵母發(fā)酵產(chǎn)乙醇最高,這與酵母本身生長(zhǎng)最適pH范圍一致,這表明pH主要是通過影響酵母的生長(zhǎng)速率調(diào)控乙醇產(chǎn)量(圖4)。為后續(xù)試驗(yàn)的準(zhǔn)確性和一致性,后續(xù)發(fā)酵所用培養(yǎng)基的pH統(tǒng)一調(diào)整為自然pH,即pH為5.8進(jìn)行。
圖4 pH對(duì)酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇的影響Fig.4 Effect of pH on ethyl alcohol production from yeast strain YF1914
溫度主要是通過影響酵母體內(nèi)生物酶的活性來調(diào)控生長(zhǎng)和代謝活性。由圖5可以看出在30~36 ℃之間培養(yǎng)時(shí),酵母YF1914發(fā)酵產(chǎn)乙醇較高,這與該酵母具有較寬廣的最適溫度有關(guān),酵母YF1914這一特點(diǎn)正適應(yīng)了白酒釀造過程中溫度變化范圍大的特征,其這一特點(diǎn)可能正是長(zhǎng)期處于白酒釀造發(fā)酵體系中選育的結(jié)果??紤]到釀酒酵母一般生長(zhǎng)溫度及其發(fā)酵產(chǎn)乙醇溫度,后續(xù)試驗(yàn)選擇30 ℃進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng)。
圖5 溫度對(duì)酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇的影響Fig.5 Effect of temperature on ethyl alcohol production from yeast strain YF1914
不同種齡的酵母對(duì)外界環(huán)境適應(yīng)能力不同,因此會(huì)影響到酵母發(fā)酵產(chǎn)物生成的速率和產(chǎn)量。由圖6可以看出,接入不同種齡的釀酒酵母所產(chǎn)乙醇有所差異,處于延緩期以及對(duì)數(shù)前期的種子液(0~12 h),由于細(xì)胞處于適應(yīng)環(huán)境狀態(tài)以及實(shí)際接入的細(xì)胞數(shù)較少,因此將此時(shí)的種子進(jìn)行接種,乙醇產(chǎn)量較低;處于對(duì)數(shù)期中后期的種子液(15~24 h),細(xì)胞已經(jīng)適應(yīng)環(huán)境,并且細(xì)胞數(shù)量相比其它時(shí)期較多,因此此時(shí)的種子發(fā)酵所產(chǎn)乙醇量較高;當(dāng)種子液處于平穩(wěn)期時(shí)(27~36 h),雖然實(shí)際接入細(xì)胞數(shù)量與對(duì)數(shù)中后期時(shí)基本一致,但其細(xì)胞活力相比對(duì)數(shù)期有所下降,因此不利于其發(fā)酵產(chǎn)乙醇??傊?處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中后期的酵母其發(fā)酵產(chǎn)乙醇能力較好,這與絕大多數(shù)微生物接種時(shí)對(duì)菌種菌齡的要求一致[21-22]。為此,本研究選擇培養(yǎng)18 h的酵母作為種子液進(jìn)行接種。
圖6 種齡對(duì)酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇的影響Fig.6 Effect of inoculum age on ethyl alcohol production from yeast strain YF1914
接種量會(huì)直接影響酵母發(fā)酵產(chǎn)乙醇速率,一般來講,接種量少,延緩期長(zhǎng),酵母產(chǎn)乙醇速率低,接種量高,可能會(huì)由于營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)或氧氣不足導(dǎo)致乙醇產(chǎn)量低。通過研究接種量對(duì)酵母YF1914產(chǎn)乙醇的影響發(fā)現(xiàn),隨著接種量的增加,該酵母發(fā)酵乙醇濃度不斷增加,即使在較高接種量條件下,其發(fā)酵產(chǎn)乙醇未受到影響(圖7)。高接種量這一特性為防止污染其它雜菌提供了保障[23]。考慮到接種成本,后續(xù)研究中,以1%的接種量進(jìn)行。
圖7 接種量對(duì)酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇的影響Fig.7 Effect of inoculation amount on ethyl alcohol production from yeast strain YF1914
由圖8可以看出,隨著轉(zhuǎn)速的提高,酵母YF1914發(fā)酵產(chǎn)乙醇濃度不斷增加,當(dāng)轉(zhuǎn)速達(dá)到90~150 r/min時(shí),乙醇濃度差異不大,為酵母YF1914產(chǎn)乙醇較優(yōu)的條件,其中在120 r/min時(shí),產(chǎn)量達(dá)到118.4 g/L,稍高于其它條件,因此選擇120 r/min作為后續(xù)發(fā)酵產(chǎn)乙醇條件。圖9表明,該酵母裝液量在100 mL/250 mL以下時(shí),發(fā)酵產(chǎn)乙醇效果較好,即使裝液量低至25 mL/250 mL時(shí),其乙醇產(chǎn)量仍處于較高水平,其中在裝液量為50 mL/250 mL時(shí),乙醇濃度達(dá)到117.6 g/L,因此后續(xù)以此裝液量進(jìn)行其它條件的考察。酵母YF1914這一特點(diǎn)正好符合本文研究的出發(fā)點(diǎn),即在有氧環(huán)境下高產(chǎn)乙醇,這為將來白酒釀造方式的變革提供有利依據(jù)。溶氧水平對(duì)于酵母發(fā)酵生成乙醇而言有利有弊:一方面微量的溶氧是酵母保持細(xì)胞活性,提高乙醇耐受性必需的;另一方面又會(huì)抑制糖酵解途徑,減少乙醇合成前體物質(zhì),降低乙醇得率[24]。
圖8 轉(zhuǎn)速對(duì)酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇的影響Fig.8 Effect of agitation speed on ethyl alcohol production from yeast strain YF1914
圖9 裝液量對(duì)酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇的影響Fig.9 Effect of liquid medium volume on ethyl alcohol production from yeast strain YF1914
圖10表明,在靜置發(fā)酵方式下,酵母YF1914發(fā)酵112 h乙醇濃度達(dá)到108.3 g/L,而搖動(dòng)條件下僅需32 h乙醇濃度達(dá)到124.7 g/L。比較兩種發(fā)酵方式的酵母量,很明顯可以看出,在搖動(dòng)培養(yǎng)方式下酵母量明顯高于靜置培養(yǎng)條件下的酵母量。合適的氧氣含量能使菌體維持較長(zhǎng)的活力,并有可能耐受更高濃度的初始糖濃度,減少發(fā)酵周期,提高乙醇得率[24]。與相對(duì)缺氧(靜置方式)條件下相比,在有氧條件(搖動(dòng)方式)下酵母YF1914能夠快速生長(zhǎng)繁殖,通過細(xì)胞量的提高來實(shí)現(xiàn)有氧條件下快速高效地轉(zhuǎn)化葡萄糖生成乙醇的目的。考慮到該菌株后期可以在有氧環(huán)境下高產(chǎn)乙醇,因此對(duì)該環(huán)境下培養(yǎng)過程的理化指標(biāo)的動(dòng)態(tài)變化進(jìn)行了研究。結(jié)果表明(圖11),在有氧環(huán)境下培養(yǎng)時(shí),隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng),葡萄糖濃度快速下降,發(fā)酵32 h后,發(fā)酵培養(yǎng)基中就已經(jīng)幾乎沒有葡萄糖存在,這與該菌株在有氧條件下細(xì)胞量快速生長(zhǎng)趨勢(shì)一致。另外,在發(fā)酵過程中,培養(yǎng)基pH隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)先快速降低后升高,這可能是由于在發(fā)酵前期葡萄糖含量充足,酵母快速生長(zhǎng)并發(fā)酵產(chǎn)生大量酸類物質(zhì),引起pH快速下降,后期葡萄糖消耗完全,營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)不足,酵母開始衰亡,細(xì)胞破裂引起pH稍微升高,這與酵母量及葡萄糖變化規(guī)律一致??梢?在搖動(dòng)條件下,即有氧條件下,該酵母在葡萄糖消耗完全時(shí)(32 h),乙醇產(chǎn)量達(dá)到最高,為124.7 g/L。
圖10 酵母YF1914發(fā)酵合成乙醇?xì)v程Fig.10 Time course of ethyl alcohol production by yeast strain YF1914
圖11 酵母YF1914發(fā)酵過程中 葡萄糖濃度和pH變化情況Fig.11 Glucose concentration and pH changes during the fermentation process of yeast strain YF1914
采用SPME-GC-MS法對(duì)酵母YF1914發(fā)酵產(chǎn)生的揮發(fā)性風(fēng)味成分進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果如表2。由表2可以看出,酵母YF1914能夠產(chǎn)生35種風(fēng)味物質(zhì),其中包括醇類13種、酯類11種、醛類2種、酮類1種、烷烴類3種、烯類1種、酚類2種、呋喃類1種和酸類1種,該酵母所產(chǎn)這些風(fēng)味物質(zhì)對(duì)于其在白酒釀造過程中的應(yīng)用及提高和豐富白酒風(fēng)味具有一定的意義。酵母YF1914所產(chǎn)異丁醇和異戊醇都是高級(jí)醇,雖然含量過多對(duì)酒的感官存在一定的副作用,但在合理的濃度范圍內(nèi)卻是白酒中醇甜和助香劑的主要物質(zhì),也是形成香味物質(zhì)的前驅(qū)物質(zhì)[25]。雖尚無明確的研究表明高級(jí)醇含量發(fā)揮醇甜和助香作用的濃度,但依據(jù)白酒相關(guān)的現(xiàn)有國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定的含量要求(<30 mg/L)可以初步推斷其發(fā)揮以上作用的濃度應(yīng)<30 mg/L[26]。2,3-丁二醇是酵母發(fā)酵糖類物質(zhì)產(chǎn)生的,具有增加酒的甜味作用,是當(dāng)前白酒甜感的重要風(fēng)味來源[27]。酵母YF1914所產(chǎn)的芳樟醇是一種萜烯類化合物,不僅具有一定的藥理作用,而且還賦予白酒濃青帶甜的木青香,該風(fēng)味物質(zhì)多在玫瑰香型葡萄酒中發(fā)現(xiàn),在白酒中鮮有報(bào)道[28]。3-甲硫基丙醇存在于多種酒飲料中,具有洋蔥、甜的肉及肉湯的氣味,并且被定為芝麻香型白酒的特征風(fēng)味物質(zhì),對(duì)白酒品質(zhì)具有重要的影響,該酵母能夠發(fā)酵產(chǎn)3-甲硫基丙醇,對(duì)提高白酒焙烤香具有重要的作用[29]。(R)-(+)-β-香茅醇和香葉醇是單萜醇類物質(zhì),是啤酒酒花香氣的重要成分,對(duì)啤酒香氣質(zhì)量產(chǎn)生直接影響,在白酒中也較少有報(bào)道,而該酵母發(fā)酵能夠產(chǎn)生這兩種風(fēng)味物質(zhì),不僅提高白酒香氣,在白酒釀造中有較好的應(yīng)用前景,在啤酒釀造中也具有應(yīng)用潛力[30]。酵母YF1914具有突出的β-苯乙醇生產(chǎn)能力,而β-苯乙醇能夠賦予白酒淡雅玫瑰香味[31]。該酵母還能產(chǎn)生具有保健功效的成分反式-橙花叔醇、紅沒藥醇、對(duì)羥基苯乙醇、金合歡烯等[32-35]。具有清新的果香與酒香的乙酸乙酯是清香型、老白干香型和米香型等香型白酒的特征風(fēng)味物質(zhì),而乙酸苯乙酯則具有舒適的花香,2-甲基丁酸-2-苯乙酯具有一定的茶香味,這些酯類化合物能夠提高白酒的香味,由表2可見該酵母具有一定的產(chǎn)酯增香能力[36-38]。另外,該酵母還能夠產(chǎn)生具有油脂香的3-羥基-2-丁酮[33]。綜上可見,該酵母不僅具有在有氧條件下高產(chǎn)乙醇特點(diǎn),還具有突出的產(chǎn)香特性。
表2 酵母YF1914發(fā)酵液中揮發(fā)性成分組成及含量(g/L)Table 2 Composition and content of volatile components of yeast strains YF1914 in the fermentation broth(g/L)
本研究對(duì)一株釀酒酵母YF1914在有氧環(huán)境下產(chǎn)乙醇的發(fā)酵條件進(jìn)行了優(yōu)化,為未來因白酒釀造方式改變帶來的微環(huán)境變化提供適合的釀造菌株及發(fā)酵參數(shù)。本文在原有基礎(chǔ)的乙醇發(fā)酵條件下(硫酸銨1 g/L、磷酸二氫鉀1 g/L、硫酸鎂1 g/L),通過單因素實(shí)驗(yàn)優(yōu)化,最終確定該酵母產(chǎn)乙醇的最佳條件為:葡萄糖350 g/L,酵母浸粉41.6 g/L,初始pH5.8,接種量1%,裝液量50 mL/250 mL,在30 ℃、120 r/min條件下培養(yǎng)32 h。在該條件下酵母YF1914合成乙醇高達(dá)124.7 g/L,并且該酵母液體發(fā)酵能夠產(chǎn)生較多的呈香風(fēng)味物質(zhì),這一結(jié)果為未來白酒實(shí)現(xiàn)有氧發(fā)酵的釀造方式提供數(shù)據(jù)參考。