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艾灸足三里對化療后骨髓抑制小鼠Notch信號通路的影響

2020-03-13 09:07梁花花王亞軍
關(guān)鍵詞:造模艾灸骨髓

葉 強,高 彤,梁花花,王亞軍

(甘肅中醫(yī)藥大學(xué)針灸推拿系,蘭州 730000)

目前在臨床上化療是手術(shù)、放療等的輔助療法,同時也是某些癌癥患者的主要療法?;煂δ[瘤的增殖、復(fù)發(fā)、轉(zhuǎn)移具有顯著的抑制效果,可明顯改善臨床結(jié)局。但是由于非靶向化療藥物缺乏對細胞識別的特異性,使其對正常體細胞具有明顯的毒性,這其中尤以化療藥物的骨髓抑制作用導(dǎo)致的免疫抑制毒性最為突出。

中醫(yī)在降低化療藥物毒性方面取得了較好效果。張志民等[1]發(fā)現(xiàn),通過在化療期間給予患者中醫(yī)扶正培本法治療,可以使急性白血病患者的胃腸道反應(yīng)、骨髓抑制、肝功能損害、腎功能損害的發(fā)生率明顯降低,周圍血常規(guī)明顯升高。另外還發(fā)現(xiàn),正茂扶正顆粒[2]、黃芪注射液[3]、參麥注射液[4]、健脾益腎補血法[5]等多種中藥單體或復(fù)方均可降低化療藥物對正常細胞的毒性,提高免疫力,緩解化療副作用。大量基礎(chǔ)研究[6-8]發(fā)現(xiàn),艾灸對于化療藥物的骨髓抑制同樣具有明顯的改善作用。足三里是中醫(yī)降低化療藥物細胞毒性,改善骨髓抑制最常用的穴位[9-10],艾灸足三里已被證實在基礎(chǔ)或臨床均可有效降低化療的毒副作用[11-12],但其分子機制尚不清楚。本研究將在小鼠體內(nèi)建造骨髓抑制模型,通過艾灸足三里觀察其對骨髓抑制的治療作用,并通過現(xiàn)代分子生物學(xué)的方法,初步探索其治療機制,為臨床應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。

1 材料

1.1 動物及分組

所有無特定病原體SPF級雄性C57BL/6 J小鼠,體質(zhì)量16~22 g,6~8周齡,購自北京華阜康生物科技股份有限公司,許可證號SCXK(京)2014-0008;Lewis肺癌荷瘤小鼠購自北京華阜康生物科技股份有限公司,許可證號SCXK(京)2014-0008。所有小鼠均在25 ℃、12 h/12 h的光照周期下自然飲食飲水飼養(yǎng),并在實驗前均適應(yīng)性飼養(yǎng)1周。

1.2 試劑及儀器

環(huán)磷酰胺(CTX)(上海華聯(lián)制藥有限公司,060310);艾條(李時珍醫(yī)藥集團有限公司);4%多聚甲醛(北京Solarbio生物科技有限公司,P1110);兔鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化物酶(SP)免疫組化試劑盒(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,SP9001);蘇木素伊紅染液試劑盒(北京Solarbio生物科技有限公司,G1120);RIPA裂解液(上海碧云天生物技術(shù)有限公司,P0013B);兔抗CBF-1/Suppressor of hairless/Lag(CSL);多克隆抗體(英國Abcam公司,ab229866);兔抗Jagged1多克隆抗體(北京博奧森生物技術(shù)有限公司,bs-1448R);兔抗Jagged2多克隆抗體(北京博奧森生物技術(shù)有限公司,bs-4244R);兔抗Notch1多克隆抗體(北京博奧森生物技術(shù)有限公司,bs-1335R);兔抗Notch2多克隆抗體(北京博奧森生物技術(shù)有限公司,bs-21663R);兔抗Nocth3多克隆抗體(北京博奧森生物技術(shù)有限公司,bs-1812R);Trizol(大連Takara生物技術(shù)有限公司,9109);逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(大連Takara生物技術(shù)有限公司,RR047 A);實時熒光定量PCR(rtPCR)試劑盒(大連Takara生物技術(shù)有限公司,RR820 A);Leica切片機(德國Leica公司,RM2235);電泳儀(美國Bio-Rad公司,PROTEAN);PCR擴增儀(美國Bio-Rad公司,T100);實時熒光定量PCR儀(美國Appliedbiosystems公司,StepOnePlus)。

2 方法

2.1 動物模型分組及其建立

32只雄性SPF級無特定病原體C57BL/6J小鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,按照隨機數(shù)字表法分為正常組、空白組、模型組和治療組每組8只。骨髓抑制模型的建立[13]:無菌條件下剝離Lewis肺癌鼠瘤塊制成勻漿,調(diào)整至細胞濃度1 ×107/L,取0.2 ml 接種于每只C57BL/6 J小鼠腋下。接種第7 天選擇腫瘤大小相似的荷瘤鼠,腹腔注射 CTX 100 mg·kg-1·d-1,連續(xù)3 d,制成骨髓抑制模型。

2.2 取穴方法

根據(jù)華興邦等[14]研究,小鼠“足三里”位于腓骨小頭下約 5 mm 處,后肢膝關(guān)節(jié)后外側(cè)。

2.3 分組與治療

荷瘤鼠隨機分為空白組、模型組、治療組,另設(shè)模擬接種的正常組,每組各8只。其中正常組在相同位置接種相同體積但無腫瘤細胞的磷酸鹽緩沖液(PBS),模型組腹腔注射CTX制成骨髓抑制模型,灌服生理鹽水0.4 ml/d,連續(xù)5 d;治療組腹腔注射 CTX 造模,灌服生理鹽水0.4 ml/d,同時將艾條點燃后,高度固定在距離穴位皮膚 2 cm 處,時間為3 min,每日治療1次,連續(xù)治療5 d;空白組與正常組每天陪同抓取、固定不治療。

2.4 一般狀況觀察

在整個實驗過程中,每天記錄各組小鼠體質(zhì)量、飲食、大小便、活動、精神狀況及外觀變化等。

2.5 血常規(guī)檢測

各組小鼠在造模前后與治療期間共8 d時間內(nèi)每天早上 7∶30經(jīng)尾靜脈取血10 μL,置于事先加好 390 μL 3%冰乙酸稀釋液的試管中,用以檢測外周白細胞計數(shù)。

2.6 取材

治療5 d后,各組8只小鼠脫頸處死,在放置干冰的超凈工作臺上取兩側(cè)股骨,剔凈骨頭后用生理鹽水沖洗,在75%乙醇中浸泡2 min后再用生理鹽水沖洗,一側(cè)股骨立即放入4%多聚甲醛中固定并脫鈣;另一側(cè)股骨再用無RNase的生理鹽水沖洗后,在無RNase的環(huán)境下用無RNase的PBS沖出其中的骨髓細胞,將所得細胞分成2份,分別于2000rpm離心5 min后,立即提取RNA和蛋白質(zhì)。

2.7 HE病理檢測

將充分固定和脫鈣的股骨做石蠟切片后,石蠟切片經(jīng)過二甲苯脫蠟、梯度酒精水化后放入蘇木素染色,隨后0.5%鹽酸乙醇分化,自來水沖洗返藍。再用95%乙醇浸泡后伊紅染色30 s,經(jīng)梯度酒精和二甲苯脫水,中性樹膠封片、拍照。

2.8 免疫組化檢測骨髓組織中CSL、Jagged1、Jagged2蛋白的變化

將充分固定和脫鈣的股骨做石蠟切片后,按照1.2.5下過程對石蠟切片進行脫蠟水化,然后將水化的切片放入10mM的pH6.0枸櫞酸鈉溶液中進行微波-酸修復(fù),PBS洗滌3次,滴加3%過氧化氫消除內(nèi)源性過氧化物酶,PBS洗滌,山羊血清37 ℃封閉10 min傾去勿洗,滴加一抗(稀釋比例)4 ℃孵育過夜,PBS洗滌,滴加生物素標記的二抗37 ℃孵育30 min,PBS洗滌,滴加辣根過氧化物酶(HRP)標記的鏈霉素37 ℃孵育30 min,PBS洗滌,滴加二氨基聯(lián)苯胺(DAB)反應(yīng)液顯色適宜,自來水沖洗,蘇木素復(fù)染,鹽酸酒精分化,梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片,顯微鏡拍照,采用ImageProPlus軟件對陽性顆粒進行測量。

2.9 Western bloting實驗檢測骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3信號通路相關(guān)蛋白

骨髓細胞計數(shù)離心后,每1×106-7個細胞加入含有1mM苯甲基磺酰氟(PMSF)的RIPA裂解液500 μL,在冰上裂解30 min,13000rpm離心15 min,取上清10 μL進行蛋白定量。另外上清加入5×上樣緩沖液,100 ℃水浴5 min,依次經(jīng)過SDS-PAGE凝膠電泳、轉(zhuǎn)膜、5%脫脂牛奶封閉,4 ℃孵育一抗過夜,室溫孵育二抗2 h后,增強化學(xué)發(fā)光法(ECL)顯色,自動曝光儀進行曝光、拍照,半定量分析條帶。

2.10 RT-PCR實驗檢測骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3信號通路相關(guān)mRNA

在無RNase條件下骨髓細胞計數(shù)離心后,每1×106-7個細胞加入Trizol 500 μL,充分裂解細胞后,12000rpm離心5 min取上清,加入氯仿混勻后室溫靜置5 min,12000rpm離心5 min,取上層水相,加入等體積的異丙醇,室溫靜置5 min;12000rpm離心10 min,管底可見微量RNA沉淀;棄去上清,加入75%乙醇1 mL,懸浮沉淀;12000rpm離心10 min,棄上清,室溫干燥10 min;用20 μL 焦碳酸二乙酯(DEPC)水溶解RNA;然后依次經(jīng)過逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)、實時熒光定量PCR,對RNA進行定量分析。

實時熒光定量PCR的程序如下:Step1:95 ℃ 30 s;Step2:95 ℃ 5s,60 ℃ 30 s;step3:GOTO step2,共計45 個循環(huán)數(shù)。

表1 引物序列

2.11 統(tǒng)計學(xué)方法

3 結(jié)果

3.1 行為學(xué)觀察

正常組與空白組從造模到治療結(jié)束,小鼠體質(zhì)量增加 1~3 g 不等,精神佳,毛發(fā)稠密,毛色光澤,飲食飲水正常,大小便正常,動作靈活,對外界刺激反應(yīng)靈敏;模型組小鼠從造模到治療結(jié)束,小鼠體質(zhì)量下降 1~3 g 不等,精神差,毛發(fā)稀疏,毛色暗淡無光,大便溏,個別小鼠有血便,進食飲水量減少,行動遲緩,多鼠扎堆,對外界刺激反應(yīng)降低;艾灸組小鼠造模后出現(xiàn)體質(zhì)量下降 1~3 g不等,精神差,毛色暗淡無光,進食飲水量減少,行動遲緩等情況;治療5 d后體質(zhì)量基本維持在原基數(shù)水平,皮毛尚有光澤,進食飲水量正常,大便正常,無扎堆情況,活動基本正常,對外界刺激反應(yīng)尚可,較模型組有所改善。

3.2 各組小鼠血液中白細胞數(shù)目變化

表2示,正常組及空白組在造模前后的整個過程中,外周血白細胞數(shù)目未發(fā)生顯著性變化;模型組和艾灸組小鼠在造模前白細胞數(shù)目正常,第1次造模后第2天起二者外周血白細胞數(shù)目顯著減少(P<0.05),并隨造模時間的增加和造模次數(shù)的增多,白細胞數(shù)目逐漸顯著下降(P<0.05)。

表2示,正常組、空白組及模型組在治療前后的整個過程中,外周血白細胞數(shù)目未發(fā)生顯著性變化,其中正常組、空白組小鼠保持在正常范圍內(nèi),模型組小鼠保持在低水平范圍內(nèi);艾灸組小鼠在治療前白細胞數(shù)目很少,隨治療時間的增加白細胞數(shù)目逐漸顯著升高,至第5天時已達到正常水平(P<0.05)。

表2 CTX造模前后及治療前后各組小鼠外周血白細胞計數(shù)變化比較

3.3 各組小鼠骨髓病理變化

正常組和空白組骨髓組織結(jié)構(gòu)保持完整,骨髓細胞均一分布;模型組小鼠骨髓組織的結(jié)構(gòu)遭到破壞,骨髓細胞分布紊亂,細胞密度減少;治療組小鼠骨髓組織結(jié)構(gòu)恢復(fù)正常,骨髓細胞密度上升,結(jié)構(gòu)完整(見圖1)。

圖1 各組小鼠骨髓病理變化比較(×200)

3.4 各組小鼠骨髓組織中CSL、Jagged1、Jagged2蛋白的變化

圖2示,正常組和空白組小鼠骨髓組織中CSL、Jagged1、Jagged2蛋白變化無差異。與空白組小鼠比較,模型組小鼠骨髓組織中CSL、Jagged1、Jagged2蛋白表達均顯著降低(P<0.05);與模型組小鼠比較,艾灸組小鼠骨髓組織中CSL、Jagged1、Jagged2蛋白表達均顯著升高(P<0.05)。

注:A.CSL、Jagged1、Jagged2的免疫組化圖;B.各蛋白表達量的半定量統(tǒng)計數(shù)據(jù);與空白組比較:**P<0.01;與模型組比較: ##P<0.01圖2 各組小鼠骨髓組織中CSL、Jagged1、Jagged2蛋白變化比較(×200)

3.5 各組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3蛋白的變化

正常組和空白組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3蛋白變化無差異。與空白組小鼠比較,模型組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3蛋白表達均顯著降低(P<0.05);圖3示,與模型組小鼠比較,艾灸組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3蛋白表達均顯著升高(P<0.05)。

注:A.Western bloting蛋白條帶;B.蛋白條帶的統(tǒng)計分析,與空白組比較:**P<0.01;與模型組比較:#P<0.05,##P<0.01圖3 各組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3蛋白變化比較

3.6 各組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3 mRNA的變化

圖4示,正常組和空白組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3 mRNA變化無差異。與空白組小鼠比較,模型組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3 mRNA表達均顯著降低(P<0.05);與模型組小鼠比較,艾灸組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3 mRNA表達均顯著升高(P<0.05)。

注:與空白組比較:*P<0.05,**P<0.01;與模型組比較:#P<0.05,##P<0.01圖4 各組小鼠骨髓組織中Notch1、Notch2、Notch3 mRNA變化比較

4 討論

根據(jù)2018年全球腫瘤年報[15],2018年全球新增1800萬癌癥病例及960萬癌癥死亡病例中,中國新增病例數(shù)占380.4萬例,死亡病例數(shù)占229.6萬例,發(fā)病率、死亡率均為全球第一。在治療方面,手術(shù)、放療和化療等傳統(tǒng)腫瘤療法是我國臨床及患者的首要選擇。大部分化療藥物是基于腫瘤細胞與正常體細胞之間的增殖差異研發(fā)的,通過抑制細胞的DNA合成,阻止腫瘤快速增殖,誘導(dǎo)腫瘤細胞凋亡。成年人的大部分體細胞均處于非增殖狀態(tài)或緩慢增殖狀態(tài),化療藥物對其具有較低的抑制毒性,但是骨髓細胞及其免疫系統(tǒng)細胞需要時刻保持高速的增殖速度,以面對內(nèi)外環(huán)境引起的免疫反應(yīng),保護機體。因此在化療過程中,化療藥物對骨髓細胞增殖抑制造成的患者免疫抑制,使患者極易發(fā)生感染、出血,影響其癌癥治療和生活質(zhì)量,增加額外的治療成本,甚至威脅生命,因此降低化療藥物的骨髓抑制毒性對患者具有重大意義。本研究發(fā)現(xiàn),在小鼠體上采用艾灸足三里穴位的療法,可有效升高由于化療藥物CTX所導(dǎo)致的減少血液白細胞數(shù)目,逆轉(zhuǎn)改善化療藥物所造成的骨髓組織破壞,解除CTX對骨髓的抑制作用。與前人研究結(jié)果一致。

但是艾灸足三里改善化療藥物的骨髓抑制分子機制目前尚不清楚,相關(guān)研究比較少。研究發(fā)現(xiàn),Notch信號通路與骨髓的造血功能密切相關(guān),在造血細胞發(fā)育的不同階段,Notch 通路可影響其生存、增殖及分化,包括造血干細胞的自我更新及分化[16];在T 祖細胞進入胸腺發(fā)育的過程中,均有 Notch 信號通路的參與[17],且 Notch 信號通路可促進 T細胞的發(fā)育,抑制B細胞發(fā)育[18];現(xiàn)在更多的研究發(fā)現(xiàn),腫瘤性疾病與Notch 信號通路的活化密切關(guān)系[19],因此本研究將基于Nocth信號通路,研究艾灸足三里改善化療藥物骨髓抑制的分子機制。

Notch信號通路由Notch受體(Notch1、Notch2、Notch3、Notch4)、Notch配體(Delta-like 1,3,4,Jagged1和Jagged2)、CSL DNA結(jié)合蛋白及其他效應(yīng)物和Notch的調(diào)節(jié)分子等組成。Notch信號的產(chǎn)生是通過相鄰細胞的Notch配體與受體相互作用實現(xiàn)的。Notch蛋白經(jīng)過3次剪切,由胞內(nèi)段(NICD)釋放入胞質(zhì),并進入細胞核與轉(zhuǎn)錄因子CSL結(jié)合,形成NICD/CSL轉(zhuǎn)錄激活復(fù)合體,從而激活HES、HEY、HERP等堿性-螺旋-環(huán)-螺旋(basichelix-loop- helix,bHLH)轉(zhuǎn)錄抑制因子家族的靶基因,發(fā)揮生物學(xué)作用。本研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)化療藥物CTX干預(yù)后,在蛋白水平上小鼠骨髓組織中CSL、Jagged1、Jagged2、Notch1、Notch2、Notch3蛋白表達均受到抑制,同時在mRNA水平Notch1、Notch2、Notch3的表達同樣顯著下降。但是經(jīng)過艾灸足三里治療后,骨髓抑制模型小鼠骨髓組織中表達或激活被抑制的CSL、Jagged1、Jagged2、Notch1、Notch2、Notch3蛋白均解除了抑制,表達水平均顯著升高,在mRNA水平Notch1、Notch2、Notch3的表達同樣顯著上升。以上提示,艾灸足三里可激活骨髓抑制模型中被抑制的Notch信號通路,這可能與其減輕化療藥物骨髓抑制密切相關(guān),但具體分子機制還需進一步研究。

綜上可知,CTX可降低骨髓組織中Notch信號通路的激活程度,產(chǎn)生骨髓抑制。艾灸足三里可導(dǎo)致骨髓抑制模型的骨髓組織中Notch信號通路相關(guān)蛋白的表達升高,激活Notch信號通路,治療或緩解化療藥物導(dǎo)致的骨髓抑制,但其具體分子機制仍需進一步研究。

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