李 輝,趙 亮,李建貴,張 磊 ,董樹(shù)清,孫振榮,邱洪燈
(1.中國(guó)科學(xué)院 蘭州化學(xué)物理研究所,甘肅 蘭州 730000;2.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué),新疆 烏魯木齊 830052;3.新疆紅果果農(nóng)林科技有限公司,新疆 烏魯木齊 830052)
環(huán)磷酸腺苷(cyclic Adenosine-3,5-Mono Phosphate,cAMP),是核苷酸的衍生物[1],分子式C10H12N5O6P.1980年Cyong等[2]首次發(fā)現(xiàn)紅棗含有動(dòng)物體內(nèi)存在的環(huán)磷酸腺苷.作為“第二信使”的環(huán)磷酸腺苷是有機(jī)體中廣泛存在的一種重要的生理活性物質(zhì),參與多種生理生化過(guò)程的調(diào)節(jié).現(xiàn)代醫(yī)學(xué)證明外源性環(huán)磷酸腺苷具有改善心肌缺氧、擴(kuò)張冠脈、增強(qiáng)心肌收縮力、增加心排血量等作用,可用于心絞痛、急性心肌梗死的輔助治療[3-4].世界各國(guó)研究人員對(duì)cAMP進(jìn)行了大量的研究, 結(jié)果表明cAMP在很多領(lǐng)域具有重要作用[5-6].
據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道,紅棗中含有多種豐富的化學(xué)物質(zhì), 如含多糖、蛋白質(zhì)、脂肪、碳水化合物、維生素、有機(jī)酸和多種微量元素[7-9].同時(shí),紅棗中cAMP的含量也是已知植物中最高的,是向日葵、煙草、大米、松樹(shù)、生菜等其他植物的1 000倍甚至數(shù)萬(wàn)倍左右[10-12].cAMP也是紅棗中最重要的生物活性物質(zhì)之一, 但是不同品種的紅棗,其含量差異較大.隨著紅棗綜合利用和農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)化的發(fā)展以及醫(yī)療和保健行業(yè)對(duì)cAMP 的需求,從紅棗中提取cAMP受到了越來(lái)越多的關(guān)注[13].高效液相色譜(HPLC)因高效的分離能力被認(rèn)為是最有效的分離技術(shù)之一[14].因此,采用HPLC法測(cè)定紅棗中cAMP的含量的比較準(zhǔn)確有效,具有開(kāi)發(fā)價(jià)值[15-17].目前,雖然已有對(duì)紅棗中環(huán)磷酸腺苷的成分結(jié)構(gòu)及含量的報(bào)道[18-19],但對(duì)我國(guó)紅棗主產(chǎn)地北方地區(qū),不同區(qū)域不同品種紅棗中cAMP含量的測(cè)定和比較工作未見(jiàn)報(bào)道.
因此,本文以我國(guó)北方不同產(chǎn)地不同品種16種紅棗為研究對(duì)象,應(yīng)用HPLC法測(cè)定其cAMP含量并對(duì)不同地區(qū)不同品種作比較.該方法提取工藝簡(jiǎn)單,數(shù)據(jù)準(zhǔn)確可靠,可以為我國(guó)北方地區(qū)紅棗深加工品種篩選提供參考依據(jù),有助于紅棗高值化利用和推動(dòng)地方經(jīng)濟(jì)發(fā)展.
儀器:高效液相色譜儀(包含Waters 515HPLC Pump , Waters 996二極管陣列檢測(cè)器, N-3000 雙通道色譜工作站);超聲波振蕩器(KQ5200型);DF-101S集熱式恒溫加熱磁力攪拌器;調(diào)溫型電熱套(MH-5000型);旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(RE-52C型);電熱鼓風(fēng)干燥箱;臺(tái)式高速離心機(jī)(TG16-WS型);電子秤(FA1004型).
試劑:紅棗樣品為市售,產(chǎn)地分別來(lái)自甘肅、新疆、寧夏、山東,陜西、遼寧等地.甲醇(色譜純,山東禹王和天下新材料有限公司),冰醋酸(利安隆博華(天津)醫(yī)藥化學(xué)公司),環(huán)磷酸腺苷標(biāo)準(zhǔn)品(純度99.5%),工業(yè)乙醇,去離子水(Molresearch 1010a 10L/H型).
1.2.1 方法與結(jié)果
紅棗中cAMP含量的測(cè)定方法:將各種紅棗樣品烘干、粉碎,在最優(yōu)條件下進(jìn)行提取,以提取液中cAMP的質(zhì)量和紅棗干粉質(zhì)量之比作cAMP含量測(cè)定指標(biāo)進(jìn)行[3].
(1)
1.2.2 波長(zhǎng)選擇
對(duì)cAMP標(biāo)準(zhǔn)品水溶液進(jìn)行紫外掃描, 結(jié)果如圖1所示.由圖1可見(jiàn),cAMP 在波長(zhǎng)210、254 nm 處吸收最大, 因?yàn)樵?10 nm 以下溶解時(shí),氧有吸收, 干擾較大, 故檢測(cè)波長(zhǎng)選用254 nm.
1.2.3 色譜條件及標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制
色譜柱為Hibar ODS-C18(250 mm×4.6 mm, 5 μm)柱, 流動(dòng)相為甲醇: 2%醋酸(體積比為5∶95), 流速 0.5 mL/min,檢測(cè)器為Waters 996,檢測(cè)溫度為25 ℃,檢測(cè)波長(zhǎng)為254 nm, cAMP標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖如圖2所示.標(biāo)準(zhǔn)曲線如下:精密稱(chēng)取cAMP標(biāo)準(zhǔn)品5.0 mg于50 mL容量瓶中,加入蒸餾水溶解并定容至刻度線,搖勻得0.1 mg /mL儲(chǔ)備液.
稱(chēng)取50 mg環(huán)磷酸腺苷標(biāo)品,溶于50 ml水配成1.0 mg/mL環(huán)磷酸腺苷標(biāo)準(zhǔn)溶液,之后分別配置成0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9和1.0 mg/mL系列標(biāo)準(zhǔn)溶液,進(jìn)行液相色譜檢測(cè)并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(如圖3所示),得到回歸方程為:Y=8.260 8×107C-261 530.2,R2為0.998 2.表明cAMP在 0.1~1.0 mg/mL范圍內(nèi),峰面積與濃度的線性關(guān)系良好.
圖3 cAMP標(biāo)準(zhǔn)曲線圖
1.2.4 樣品處理及檢測(cè)
分別將不同產(chǎn)地的16種紅棗切片,40 ℃干燥48 h,粉碎機(jī)磨成粉狀.準(zhǔn)確稱(chēng)取各種紅棗粉100 g,800 mL 80%乙醇溶液加熱煮沸提取2 h,過(guò)濾得到提取液,然后再加入800 mL 80%乙醇溶液加熱煮沸提取2 h,過(guò)濾得到提取液,所得上清液合并濃縮,以 8 000 r/min離心15 min,取上清液用蒸餾水定容至100 mL刻度處.過(guò) 0.22 μm微孔濾膜,用高效液相色譜法進(jìn)行測(cè)定.
1.2.5 環(huán)磷酸腺苷提取單因素試驗(yàn)
選擇料液比、提取時(shí)間、提取溫度、提取次數(shù)和不同乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)5個(gè)因素進(jìn)行單因素試驗(yàn),以環(huán)磷酸腺苷含量作為環(huán)磷酸腺苷提取效果的評(píng)價(jià)指標(biāo).
(1)料液比對(duì)cAMP提取率影響:以新疆駿棗為試驗(yàn)材料,在加熱提取2 h,乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)80%的條件下,選取1∶2、1∶4、1∶6、1∶8、1∶10 這5個(gè)料液比水平研究對(duì) cAMP 提取率的影響,結(jié)果如圖4所示.由圖4可知,隨著料液比的增加,提取液中cAMP的含量增加,1∶8之后提取率增加幅度不太明顯.因此可選用于料液比為1∶8對(duì)紅棗中環(huán)磷酸腺苷進(jìn)行提取.
圖4 料液比對(duì) cAMP 提取率的影響
(2)提取時(shí)間對(duì)cAMP提取率影響:在料液比1∶8、乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)80% 的條件下,選擇0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 h 5個(gè)加熱提取時(shí)間研究對(duì)cAMP提取率的影響,結(jié)果如圖5所示.由圖5可知,隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng),提取率增加,在2 h時(shí)達(dá)到最大值,之后隨時(shí)間的延長(zhǎng)提取率降低,可能是加熱提取時(shí)間過(guò)長(zhǎng),細(xì)胞中其他物質(zhì)溶出,影響cAMP的提取.因此可選用加熱提取時(shí)間為2 h對(duì)紅棗中環(huán)磷酸腺苷進(jìn)行提取.
圖5 提取時(shí)間對(duì) cAMP 提取率的影響
(3)提取溫度對(duì)cAMP提取率影響:在料液比1∶8、加熱提取時(shí)間2 h、乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)80%的條件下,選取20、40、60、80、100 ℃ 5個(gè)提取溫度,研究對(duì) cAMP 提取率的影響,結(jié)果如圖6所示.由圖6可以看出,隨著加熱溫度的升高,cAMP的含量也逐漸增大.溫度超過(guò)80 ℃,達(dá)到100 ℃ 煮沸提取時(shí),紅棗細(xì)胞壁破碎煮爛以后隨著其他可溶性成分增加,cAMP提取率降低且煮爛后續(xù)分離難度隨之增加,因此選擇以80 ℃為最佳的環(huán)磷酸腺苷提取溫度.
圖6 溫度對(duì) cAMP 提取率的影響
(4)提取次數(shù)對(duì)cAMP提取率影響:在料液比1∶8、加熱提取時(shí)間2 h、乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)80%、加熱溫度為80 ℃的條件下,進(jìn)行4次提取,研究對(duì) cAMP 提取率的影響,結(jié)果如圖7所示.由圖7可以看出,隨著提取次數(shù)的增加,cAMP的含量先逐漸增大后減小.因?yàn)殡S著提取次數(shù)的增加,cAMP的含量隨之減少,紅棗中其他可溶性部分繼續(xù)溶出,影響對(duì)cAMP提取,考慮到能源損耗以及cAMP含量的影響選擇提取次數(shù)為2次.
圖7 提取次數(shù)對(duì) cAMP 提取率的影響
(5)不同乙醇濃度對(duì)cAMP提取率影響:在料液比1∶8、加熱提取時(shí)間2 h、2次提取、加熱溫度為80 ℃條件下,選取乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%、20%、40%、60% 和80%,研究5個(gè)不同濃度梯度對(duì) cAMP 提取率的影響,結(jié)果如圖8所示.由圖8可以看出,隨著提取次數(shù)的增加,cAMP的含量先逐漸增大后減小.因?yàn)樵诩円掖继崛r(shí)環(huán)磷酸腺苷溶解性降低且其他脂溶性溶解質(zhì)溶出,cAMP的含量隨之減少,影響對(duì)cAMP提取,因此選擇最佳乙醇提取質(zhì)量分?jǐn)?shù)為80%.
圖8 不同乙醇質(zhì)量分?jǐn)?shù)對(duì) cAMP 提取率的影響
取質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL的cAMP標(biāo)準(zhǔn)液20 μL,自動(dòng)進(jìn)樣,采用HPLC測(cè)定其cAMP 含量.平行測(cè)定6次,計(jì)算平均值和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為0.63%,結(jié)果如表1所列,表明該法精密度良好.
表1 精密度試驗(yàn)
同一批次樣品溶液6份, 分別按照上述色譜條件測(cè)定, 以峰面積與濃度的比值計(jì)算, 得到cAMP的RSD為1.6%,結(jié)果如表2所列.
表2 重現(xiàn)性試驗(yàn)
取已知含量的新疆駿棗樣品溶液 6 份各10 mL, 精密加入等量cAMP標(biāo)準(zhǔn)品, 分別吸取1.0 mL定容到10 mL量瓶中, 經(jīng)0.22 μm濾膜過(guò)濾后, 進(jìn)樣檢測(cè).測(cè)得平均回收率為102.1%,結(jié)果如表3所列.
采用高效液相色譜測(cè)定16種紅棗中的cAMP的含量,其中新疆駿棗的液相色譜圖如圖9所示,另外我國(guó)北方16種棗中cAMP的含量如表4所列.
表3 回收率試驗(yàn)
圖9 新疆駿棗中cAMP 含量測(cè)定
表4 北方16種紅棗中cAMP含量
采用HPLC 法分析紅棗中含量極微的 cAMP,準(zhǔn)確度高,精確度好.通過(guò)研究新疆駿棗及我國(guó)北方地區(qū)共16種紅棗的cAMP含量,建立了HPLC法分析紅棗中cAMP 含量方案.在供試樣品中,測(cè)得新疆駿棗cAMP 的質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高(372 μg/g),并對(duì)我國(guó)北方16種紅棗的cAMP 含量進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)新疆紅棗具有種類(lèi)豐富且cAMP含量高的特點(diǎn),非常有利于cAMP的開(kāi)發(fā)利用.該方法操作簡(jiǎn)便靈敏度高、準(zhǔn)確性和重現(xiàn)性好, 可作為大棗的質(zhì)量控制方法,且對(duì)紅棗進(jìn)行深加工、帶動(dòng)當(dāng)?shù)亟?jīng)濟(jì)起到積極的作用.