謝 希, 陳 琛, 林 杰, 湯宏霞, 秦旭平, 李 潔△
(1南華大學附屬郴州醫(yī)院,郴州市第一人民醫(yī)院,湖南郴州423000;2南華大學藥物藥理研究所,湖南衡陽421001)
弱氧化修飾低密度脂蛋白(minimally modified low-density lipoprotein,mmLDL)是指載脂蛋白B結構完整、氧化程度輕微的低密度脂蛋白(low-density lipoprotein,LDL),它可以促進單核細胞與內皮細胞黏附;促進血管平滑肌細胞遷移和增殖;促進氧化型低密度脂蛋白(oxidized low-density lipoprotein,oxLDL)形成,從而促進泡沫細胞的產生[1-3];可以損傷內皮細胞導致免疫細胞浸潤到血管壁,隨后發(fā)生脂質沉積和炎癥反應[4],產生活性氧簇(reactive oxygen species,ROS)和炎性細胞因子。這一系列反應促進動脈粥樣硬化的形成。
p38 MAPK是動脈粥樣硬化過程中一種常見的炎癥通路[5],參與炎癥信號傳導,調控細胞黏附分子,調節(jié)白細胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)、腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、IL-6等炎癥介質的產生[6],增強血管對血管內皮生長因子和ROS的敏感性,激活NF-κB通路,NF-κB是MAPK通路下游一個核內轉錄因子,具有明顯的增殖、抗凋亡和促炎作用,NF-κB途徑的激活在炎癥過程中起重要作用[7-8]。在IL-6家族中,IL-6是主要的促炎細胞因子,IL-6信號通路包括糖蛋白130/膜結合IL-6受體通路和糖蛋白130/可溶性IL-6受體通路,分別稱為經典信號和反式信號[9]。有研究表明,細胞內MAPK信號通路在調節(jié)血管內皮素受體表達中起重要作用[10]。
內皮素(endothelin,ET)系統(tǒng)是由受體及其配體組成,是調節(jié)血管張力和血壓的重要部分,在心血管發(fā)病機制中的發(fā)揮重要作用。受體調節(jié)是通過改變受體密度和(或)親和力及靶細胞敏感性來維持組織內穩(wěn)態(tài)的一個重要因素[11]。ET-1是體內最強的血管收縮劑之一,并且引起的收縮作用持久。內皮素受體分為A型(ETA受體)和B型(ETB受體)兩種亞型。ETA受體在血管平滑肌細胞(vascular smooth muscle cells,VSMCs)上表達,主要調節(jié)血管收縮和細胞增殖[12],并與MAPK通路的激活有關[10]。ETB受體分為ETB1和ETB2兩類:ETB1受體位于內皮細胞,通過誘導前列環(huán)素I2(prostacyclin I2,PGI2)和一氧化氮(nitric oxide,NO)的釋放起血管舒張作用;ETB2受體表達于VSMCs并介導血管收縮反應。在正常生理條件下,ETB2受體基本不表達,不引起收縮效應[13],而在病理條件下,如缺血性心臟?。?4]、肺動脈高壓[15]和動脈粥樣硬化患者[12,16-17],血管平滑肌 ETB2受體表達明顯增加,并且介導血管收縮作用明顯增強。一般情況下我們說的ETB受體指的是ETB2受體。未見文獻報道m(xù)mLDL對在體動物動脈ETA受體的作用,但我們已經發(fā)現(xiàn)小鼠尾靜脈注射mmLDL可以上調腸系膜動脈 ETB受體[1,3]。本研究首次考察小鼠尾靜脈注射mmLDL是否通過激活p38 MAPK通路上調腸系膜動脈VSMCs中的ETA受體和ETB受體,以及mmLDL對IL-6的影響。
4℃條件下,將0.2 g/L的LDL置于加入了1 μmol/L FeSO4的PBS液體中氧化96 h,最后使用0.25 mmol/L EDTA終止該反應即可生成mmLDL[1,18]。將mmLDL產物使用硫代巴比妥酸反應物(thiobarbituric acid reactive substance,TBARS)法和瓊脂糖凝膠電泳法進行鑒定。TBARS法檢測結果顯示,丙二醛樣結構的濃度為(10.95±0.08)μmol/(g LDL);0.8%的瓊脂糖凝膠電泳結果顯示,mmLDL的電泳遷移率是LDL的(1.67±0.01)倍。制備好的mmLDL于4℃冰箱避光保存,2周內用完。
LDL、ETB受體激動劑角蝰毒素6c(sarafotoxin 6c,S6c)、二甲亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)和BQ-788購于Sigma;抗ETA受體抗體、抗ETB受體抗體、抗p38 MAPK抗體、抗NF-κB p65抗體、抗p-NF-κBp65抗體、辣根過氧化物酶標記的GAPDH單克隆抗體、抗IL-6抗體及辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔和山羊抗小鼠IgG購于Pierce Biotechnology;ET-1購于Enzo;抗p-p38 MAPK抗體購于Cell Signaling Technology;Tween 20和IL-6 ELISA試劑盒購于Proteintech Biotechnology;小鼠oxLDL ELISA試劑盒購于北京誠林生物科技有限公司;SB 203580購于Med-Chem Express,需用DMSO初溶。
DMT 620微血管張力測定儀(Danish Myo Technology A/S);SZ51立體顯微鏡(OLYMPUS);顯微手術解剖工具(World Precision Instruments);優(yōu)普純水機(成都優(yōu)普純水設備有限公司);電泳/蛋白轉印系統(tǒng)(大連競邁生物科技有限公司);SW-CJ-2FD型雙人單面凈化工作臺(蘇州凈化設備有限公司);WX3000P實時熒光定量PCR儀(Stratagene);Image Gauge 4.0(Fuji Photo Film)。
8~12周齡的SPF級昆明小鼠共140只,體重25~30 g,雌雄均可,購買于湖南斯萊克景達實驗動物有限公司,實驗動物許可證號為SCXK(湘)2016-0002。適應性喂養(yǎng)7 d后用于實驗研究。
動物隨機分為正常對照(生理鹽水,normal saline,NS)組(尾靜脈注射NS)、mmLDL組(尾靜脈注射 mmLDL)、mmLDL+SB 203580組(尾靜脈注射mmLDL及腹腔注射p38 MAPK通路抑制劑SB 203580)、LDL組(尾靜脈注射 LDL)和 mmLDL+DMSO組(尾靜脈注射mmLDL及腹腔注射DMSO)。NS組、mmLDL組和mmLDL+SB 203580組每組各40只;LDL組和mmLDL+DMSO組每組各10只。mmLDL 按照 1 mg/kg[3,19]的劑量連續(xù) 4 d 進行尾靜脈注射,共8次,每隔12 h一次,于96 h采用眼球取血法采血后將小鼠頸椎脫臼處死。以相同方式給小鼠尾靜脈注射NS作為正常對照組。為考察p38 MAPK炎癥通路是否參與mmLDL對小鼠腸系膜動脈ET受體表達的影響,在每日第一次小鼠尾靜脈注射mmLDL的前2 h,腹腔注射p38 MAPK抑制劑SB 203580溶液,劑量為25 mg/kg[20-21],每隔24 h一次;另設置溶劑對照組(mmLDL+DMSO組)。
5.1 血管收縮功能檢測 小鼠處死后,即刻取出其腸系膜動脈組織并浸入預冷至4℃的Na+-Krebs溶液(成分:無水CaCl21.5 mmol/L,NaCl 119 mmol/L,葡萄糖 5.5 mmol/L,KCl 4.6 mmol/L,NaH2PO41.2 mmol/L,NaHCO315 mmol/L,MgCl21.2 mmol/L)。在立體顯微鏡下將所需動脈周圍組織快速剝離干凈,為了去除血管內皮影響,使用0.1%的TritonX-100液灌注血管10 s,隨后用Na+-Krebs溶液反復沖洗血管多次,再用20μmol/L 5-羥色胺刺激血管預收縮;最后加入10μmol/L乙酰膽堿進行檢驗,若所引起的舒張率<10%,則表明血管內皮去除完全。用顯微手術剪將去內皮的腸系膜動脈剪成1.5~2 mm的血管環(huán),每個血管環(huán)中穿入兩根半徑為20μm金屬絲,浸入37℃DMT恒溫浴槽中,金屬絲兩端分別與張力微調裝置和換能器相連接。張力換能器與電腦PowerLab系統(tǒng)相連,記錄血管張力變化。通過微調裝置將血管環(huán)靜息張力調整在1.5 mN左右,每隔15 min更換一次Na+-Krebs溶液,如此平衡1.5 h后2次使用K+-Krebs液(成分:KCl 63.5 mmol/L,無水CaCl21.5 mmol/L,NaCl 60 mmol/L,葡 萄 糖 5.5 mmol/L,NaH2PO41.2 mmol/L,NaHCO315 mmol/L,MgCl21.2 mmol/L)檢查血管環(huán)活性,當2次測得K+-Krebs溶液所引起的血管環(huán)收縮張力均大于1 mN,并且兩次收縮幅度差<10%即說明血管環(huán)合格,可繼續(xù)后續(xù)實驗。在浴槽中加入相應的試劑:S6c可以特異性激動ETB受體,引起ETB受體介導的血管收縮反應;現(xiàn)無ETA特異性激動劑,研究ETA受體介導的收縮時,先將1μmol/L的S6c誘導ETB受體產生最大收縮,保持S6c與浴槽內血管環(huán)接觸1 h,收縮曲線逐漸下降,至基線水平,并保持穩(wěn)定,即認為ETB受體完全脫敏[22-23],此時加入ET-1,將只激動 ETA受體。為了檢查ETB受體是否完全脫敏,在使用S6c后,加入選擇性ETB受體拮抗劑BQ-788(0.1μmol/L),再加入ET-1介導血管收縮反應,結果顯示加入或不加入BQ-788,ET-1介導的血管收縮量效曲線幾乎重疊,說明ETB受體完全脫敏[22-23]。
5.2 ELISA檢測小鼠血清中oxLDL和IL-6的表達小鼠眼球取血后,室溫自然凝固25 min,3 000 r/min離心20 min,收集上清液,于-80℃保存,如保存過程中出現(xiàn)沉淀,應再次離心。oxLDL和IL-6血清濃度采用小鼠ELISA試劑盒測定。嚴格按廠家說明書進行操作,于酶標儀上讀取吸光度,繪制標準曲線,根據(jù)相應標準曲線計算樣品中oxLDL和IL-6含量。
5.3 RT-qPCR檢測小鼠腸系膜動脈組織的mRNA含量 提取腸系膜動脈組織的總mRNA并檢測其密度。兩步法逆轉錄合成cDNA。cDNA第1條鏈的合成采用20μL反應體系,轉錄程序為:25℃10 min,42℃ 60 min,65℃ 15 min。50μL qPCR體系的反應程序為:95℃ 5 min變性;94℃ 20 s,55℃ 20 s,72℃30 s,40個循環(huán)。反應結束后采用分離曲線分析法以確定PCR產物的特異性。mRNA定量分析采用PCR循環(huán)閾值(CT)比較法,以GAPDH為內參照,計算ETA受體、ETB受體和IL-6的mRNA相對表達量。特異性引物序列見表1。
表1 引物序列Table 1.Sequences of the primers for RT-qPCR
5.4 Western bolt法檢測小鼠腸系膜動脈組織中的目的蛋白含量 每個樣本由3根腸系膜動脈組成,取研磨篩至冰上,將預處理好的血管環(huán)段加入組織裂解液和蛋白酶抑制劑,于研磨篩上充分研磨后12 000 r/min離心30 min,仔細收集上清液,使用BCA蛋白分析試劑盒進行蛋白定量。加入1/4蛋白液體積的buffer(5×),100℃水浴10 min使蛋白變性;提取的蛋白用SDS-PAGE進行分離并轉移到PVDF膜上,5%脫脂牛奶封閉,分別將I抗(抗ETA受體、ETB受體、p38 MAPK、p-p38 MAPK、NF-κB p65、p-NF-κBp65、IL-6和GAPDH抗體)均按1∶1 000稀釋,4℃過夜,II抗為辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔和山羊抗小鼠IgG(1∶5 000稀釋)。圖像經Image Gauge 4.0分析,并且均采用自身灰度值校正,以目的基因的條帶灰度與管家基因的灰度比值表示蛋白的表達水平。
實驗數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標準誤(mean±SEM)表示,血管環(huán)收縮曲線均通過累加激動劑獲得,其收縮值以相對63.5 mmol/L K+預收縮的百分比表示。用Emax(最大收縮百分率)和pEC50(血管達最大收縮效應的50%時相應激動劑摩爾濃度的負對數(shù))來描述血管收縮功能。采用Pearson線性相關分析評估IL-6血清水平與ETB受體和ETA受體介導的血管最大收縮功能之間的聯(lián)系。Student'st檢驗用于兩組數(shù)據(jù)之間的比較;單因素方差分析(one-way ANOVA)和Dunnett事后檢驗比較兩組以上數(shù)據(jù);雙因素方差分析和Bonferroni事后檢驗用于比較2條曲線在相同濃度處產生的收縮值之間的差異。統(tǒng)計分析及作圖使用Prism 5.0軟件。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
經Triton X-100處理過的血管環(huán)由乙酰膽堿引起的舒張率<5%,表明實驗血管內皮去除完全。mmLDL組、mmLDL+SB 203580組、mmLDL+DMSO組、NS組和LDL組實驗血管環(huán)在K+-Krebs液刺激下均明顯收縮,各組收縮張力分別為(4.33±0.38)mN、(4.00±0.28) mN、(4.01±0.27) mN、(4.41±0.34)mN和(4.14±0.31)mN(P>0.05)。
ELISA結果顯示,mmLDL組和NS組血清中oxLDL 的 濃 度 分 別 為(116.95±2.853)μg/L 和(117.52±3.788)μg/L(P>0.05),排除oxLDL對實驗結果的影響,見圖1。
Figure 1.Serumlevels of oxLDL.Mean±SEM.n=8.圖1 mmLDL組和NS組小鼠血清oxLDL濃度
DMT實驗結果顯示,mmLDL組S6c誘導ETB受體介導的收縮功能呈濃度依賴性增強,血管收縮量效曲線明顯左移,Emax由NS組的(5.85±1.04)%升高為mmLDL組的(127.51±9.99)%(P<0.01),而pEC50(8.11±0.24和8.00±0.04)無顯著差異(P>0.05);腹腔注射SB 203580后,S6c誘導的收縮血管的量效曲線右移明顯,Emax[(37.42±4.96)%]較mmLDL組明顯降低(P<0.01),pEC50(7.86±0.06)有所降低,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),見圖2A。
RT-qPCR實驗結果顯示,mmLDL組ETB受體的mRNA水平較NS組的1.01±0.05上升為2.19±0.10(P<0.01);使用SB 203580后,ETB受體的mRNA水平降為1.29±0.08(P<0.01),見圖 2B。Western bolt實驗結果顯示,mmLDL組ETB受體的蛋白水平從0.35±0.02 上升為 1.01±0.02(P<0.01);腹腔注射SB 203580后,ETB受體的蛋白水平降為0.55±0.01(P<0.01),見圖2C。
Figure 2.The p38 MAPK inhibitor SB 203580 inhibited mmLDL-induced increases in ETB receptor function and expression in mouse mesenteric artery.A:inhibitory effect of SB 203580 on mmLDL-induced blood vessel contraction mediated by ETB receptor(n=8);B:inhibitory effect of SB 203580 on mmLDL-induced up-regulation of ETB receptor mRNA expression(n=6);C:inhibitory effect of SB 203580 on mmLDL-induced up-regulation of ETB receptor protein expression(n=4).Conc.:concentraion;M:mol/L.Mean±SEM.**P<0.01 vs NSgroup;##P<0.01 vs mmLDL group.圖2 p38 MAPK抑制劑SB 203580拮抗mmLDL對小鼠腸系膜動脈ETB受體功能及表達的增強作用
DMT實驗結果顯示,mmLDL組ET-1誘導ETA受體介導的收縮功能呈濃度依賴性增強,血管收縮量效曲線明顯左移,Emax由NS組的(145.12±9.55)%升高為mmLDL組的(232.31±22.79)%(P<0.01),而pEC50(8.29±0.07 和 8.20±0.02)無 顯 著差 異(P>0.05);腹 腔 注射 SB 203580后,Emax[(160.34±8.30)%]較 mmLDL組明顯降低(P<0.01),pEC50(8.20±0.06)無明顯變化(P>0.05),見圖3A。
RT-qPCR實驗結果顯示,mmLDL組ETA受體的mRNA水平由NS組的1.01±0.07上升為2.91±0.16(P<0.01);使用SB 203580后,ETA受體的mRNA水平降為1.55±0.05(P<0.01),見圖3B。Western bolt實驗結果顯示,mmLDL組ETA受體的蛋白水平由NS組的0.24±0.04上升為0.94±0.03(P<0.01);腹腔注射SB 203580后,ETA受體的蛋白水平降為0.54±0.04(P<0.01),見圖3C。
ELISA實驗結果顯示,mmLDL組血清的IL-6濃度從 NS組的(238.9±12.44)ng/L上升至(433.6±10.96)ng/L(P<0.01);使用SB 203580后,IL-6的血清濃度降為(330.2±12.15)ng/L(P<0.01),見圖4A。
RT-PCR實驗結果顯示,mmLDL組IL-6的mRNA水平從 NS組的 1.02±0.08上升至 4.11±0.35(P<0.01);使用SB 203580后,IL-6的mRNA水平降為1.97±0.17(P<0.01),見圖4B。Western blot實驗結果顯示,尾靜脈注射mmLDL后IL-6的蛋白水平從NS組的 0.29±0.04上升至 0.97±0.08(P<0.01);使用SB 203580后,IL-6蛋白水平降為 0.48±0.03(P<0.01),見圖4C。
Pearson相關分析結果顯示,IL-6的血清濃度與ETB受體和ETA受體介導的血管收縮Emax值之間均存在正相關(r=0.87,P<0.05;r=0.97,P<0.01),見圖4D、E。
Figure 3.The p38 MAPK inhibitor SB 203580 inhibited mmLDL-induced increases in ETA receptor function and expression in mouse mesenteric artery.A:inhibitory effect of SB 203580 on mmLDL-induced blood vessel contraction mediated by ETA receptor(n=8);B:inhibitory effect of SB 203580 on mmLDL-induced up-regulation of ETA receptor mRNA expression(n=6);C:inhibitory effect of SB 203580 on mmLDL-induced up-regulation of ETA receptor protein expression(n=4).Conc.:concentraion;M:mol/L.Mean±SEM.**P<0.01 vs NSgroup;##P<0.01 vs mmLDL group.圖3 p38 MAPK抑制劑SB 203580拮抗mmLDL引起的小鼠腸系膜動脈ETA受體功能及表達增強
Western blot實驗結果顯示,mmLDL組p-p38 MAPK和p-NF-κB的蛋白水平分別由NS組的0.12±0.02和 0.16±0.03上升為 0.57±0.06和 1.02±0.03(P<0.01);使用SB 203580后,p-p38 MAPK和p-NF-κB 的蛋白水平分別降為 0.32±0.04和 0.50±0.05(P<0.01),見圖5。
mmLDL作為重要的心血管疾病危險因子,在動脈粥樣硬化初期起重要的作用,但其具體機制尚不明確。本課題組在體外研究中采用器官培養(yǎng)方法,發(fā)現(xiàn)mmLDL與大鼠冠狀動脈共同培養(yǎng),可以上調ETA受體和ETB受體[22,24],mmLDL 與大鼠腦基底動脈共同培養(yǎng),可以上調ETB受體[25];小鼠在體實驗發(fā)現(xiàn)mmLDL可以通過ERK1/2途徑,增加TNF-α和IL-1β水平,增加小鼠腸系膜ETB受體和α1受體介導的血管收縮功能及表達[2-3];小鼠在體實驗發(fā)現(xiàn)mmLDL可以通過PI3K/Akt途徑,增加小鼠腸系膜ETB受體介導的血管收縮功能及表達[1]。本研究通過小鼠在體實驗研究發(fā)現(xiàn)p38 MAPK炎癥通路參與mmLDL誘導上調小鼠腸系膜動脈ETA受體和ETB受體,增加炎癥因子IL-6血清濃度及血管壁的表達。
VSMCs內ETA受體和ETB受體的表達異常與心血管疾病的發(fā)生發(fā)展密切相關。ETA受體和ETB受體的上調可致血管收縮增強并減少血液流動,促進VSMCs的增殖和遷移,參與動脈粥樣硬化過程并導致心血管相關疾?。?3,26-28]。有研究表明,大鼠暴露于二手煙環(huán)境中,可激活ERK1/2途徑,誘導增加腦基底動脈和冠狀動脈ETA受體和ETB受體介導的血管收縮功能及表達[17,29],從而增加缺血性腦卒中、冠狀動脈粥樣硬化等疾病的風險。還有報道指出,通過體外器官培養(yǎng),PM2.5可以增強大鼠支氣管ET受體介導的收縮功能及表達,MEK1/2和p38通路參與ETB受體上調,JNK和p38通路參與ETA受體的上調,從而增加肺動脈高壓等疾病風險[30]。本研究發(fā)現(xiàn),通過小鼠尾靜脈注射mmLDL,可以增強ETA受體和ETB受體介導的血管收縮功能,提高腸系膜動脈ETA受體和ETB受體的mRNA和蛋白表達。實驗結果顯示,mmLDL+DMSO組和mmLDL組血管收縮的量效曲線幾乎重疊,排除了DMSO對本實驗結果的影響;LDL組血管收縮的量效曲線雖略高于NS組,但兩組間的差異無統(tǒng)計學顯著性,排除了LDL對本實驗結果的影響;使用K+-Krebs液考察血管的收縮功能,K+-Krebs液在mmLDL組、mmLDL+SB 203580組、mmLDL+DMSO組和NS組引起的血管收縮反應均大于1 mN,且各組間差異沒有統(tǒng)計學顯著性,排除了實驗操作對血管收縮功能的影響。我們同時也檢測血壓,發(fā)現(xiàn)此時血壓不受影響。
Figure 4.The p38 MAPK inhibitor SB 203580 inhibited mmLDL-induced increases in mouse serum and mesenteric artery IL-6 levels.A:inhibitory effect of SB 203580 on mmLDL-induced increase in serum IL-6 level(n=8);B:inhibitory effect of SB 203580 on mmLDL-induced up-regulation of IL-6 mRNA expression(n=6);C:inhibitory effect of SB 203580 on mmLDL-induced up-regulation of IL-6 protein expression(n=4);D:the positive linear correlation between the serum IL-6 level and the maximum S6c-induced contraction responses(n=8);E:the positive linear correlation between the serum IL-6 level and the maximum ET-1-induced contraction responses(n=8).Mean±SEM.**P<0.01 vs NS group;##P<0.01 vs mmLDL group.圖4 p38 MAPK抑制劑SB 203580拮抗mmLDL誘導的小鼠血清及腸系膜動脈IL-6水平升高
Figure 5.The p38 MAPK inhibitor SB 203580 inhibited mmLDL-induced increases in p-p38 MAPK(A)and p-NF-κB(B)protein levels in mouse mesenteric artery.Mean±SEM.n=4.**P<0.01 vs NSgroup;##P<0.01 vs mmLDL group.圖5 p38 MAPK抑制劑SB 203580拮抗mmLDL上調的小鼠腸系膜動脈中p-p38 MAPK和p-NF-κB的蛋白水平
SB 203580是p38 MAPK選擇性抑制劑[14]。有研究表明,SB 203580可以預防I型糖尿病動物模型中的糖尿病心肌病,通過抑制p38 MAPK途徑降低TNF-α、IL-1β和IL-6水平,減輕心肌炎癥反應,改善心臟功能[7];SB 203580可以預防肺動脈高壓的發(fā)展,通過抑制p38 MAPK途徑降低關鍵炎癥介質IL-6水平,逆轉肺血管重構[5]。早期本課題組發(fā)現(xiàn)NF-κB信號轉導途徑參與了mmLDL誘導上調離體VSMCs ETB受體[24]。本研究通過給小鼠腹腔注射p38 MAPK通路選擇性抑制劑SB 203580,抑制了mmLDL增加p-p38 MAPK和p-NF-κB蛋白水平,表現(xiàn)為p-p38 MAPK以及p-NF-κB蛋白條帶灰度值較mmLDL組明顯減弱;表明尾靜脈注射mmLDL激活了p38 MAPK通路及下游NF-κB轉錄因子。
細胞炎癥因子IL-6參與慢性炎癥疾病病理生理過程,如肺動脈高壓[5]、糖尿?。?1]、動脈粥樣硬化[32]。IL-6可分泌于白細胞、成纖維細胞、脂肪細胞、角質形成細胞和內皮細胞被感染的情況下,并可以被IL-1β或TNF-α等細胞因子誘導[9]。IL-6調節(jié)下丘腦-垂體-腎上腺軸,參與單核細胞趨化、血管生成和膠原積累,影響細胞增殖、分化、遷移和存活[33],加速動脈粥樣硬化進程。在本研究中,我們發(fā)現(xiàn)尾靜脈注射mmLDL明顯增加IL-6的mRNA水平、蛋白水平和血清濃度。Pearson相關分析結果顯示,血清IL-6水平升高與ETA受體和ETB受體介導的最大收縮百分率呈正相關,表明尾靜脈注射mmLDL可誘導炎癥反應,炎癥反應可能參與了mmLDL上調ETA受體和ETB受體的過程。而SB 203580顯著抑制了此作用,表明p38 MAPK通路參與mmLDL上調ETA受體、ETB受體和IL-6表達的過程。
綜上所述,mmLDL激活p38 MAPK信號通路及下游的NF-κB轉錄因子,可以增加腸系膜動脈ETA受體和ETB受體表達,增強ETA受體和ETB受體介導的血管收縮功能,增加IL-6血清濃度及血管壁表達,并且血清IL-6水平升高與ETA受體和ETB受體介導的最大收縮百分率呈正相關。了解這一點,可為心血管疾病診斷及治療提供新的靶點。